食品微生物学检验 克罗诺杆菌属(阪崎肠杆菌)检验_第1页
食品微生物学检验 克罗诺杆菌属(阪崎肠杆菌)检验_第2页
食品微生物学检验 克罗诺杆菌属(阪崎肠杆菌)检验_第3页
食品微生物学检验 克罗诺杆菌属(阪崎肠杆菌)检验_第4页
食品微生物学检验 克罗诺杆菌属(阪崎肠杆菌)检验_第5页
已阅读5页,还剩7页未读 继续免费阅读

下载本文档

版权说明:本文档由用户提供并上传,收益归属内容提供方,若内容存在侵权,请进行举报或认领

文档简介

1、 PAGE 12 GB 4789.40-2010食品安全国家标准食品微生物学检验 克罗诺杆菌属(阪崎肠杆菌)检验范围本标准规定了食品中克罗诺杆菌属(Cronobacter spp.)的检验方法。本标准适用于婴幼儿配方食品、乳和乳制品及其原料中克罗诺杆菌属的检验。2 设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下:2.1 恒温培养箱:25 1 ,36 1 ,44 0.5 。2.2 冰箱:2 5 。2.3 恒温水浴箱:44 0.5 。2.4 天平:感量0.1 g。2.5 均质器。2.6 振荡器。2.7 无菌吸管:1 mL(具0.01 mL刻度)、10 mL(具0.1 mL刻度)或

2、微量移液器及吸头。2.8 无菌锥形瓶:容量100 mL、200 mL、2 000 mL。2.9 无菌培养皿:直径90 mm。2.10 pH计或pH比色管或精密pH试纸。2.11 全自动微生物生化鉴定系统。2.12 PCR仪。2.13 荧光PCR仪。2.14 离心机。2.15 紫外凝胶成像仪。2.16 电泳仪2.17 移液器:2L10L、10L100L、20L200L、100L1 000L.3 培养基和试剂3.1 缓冲蛋白胨水(buffer peptone water,BPW):见附录A中A.1。3.2 改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素(modified lauryl sulfate tr

3、yptose broth-vancomycin medium, mLST-Vm):见附录A中A.2。3.3 阪崎肠杆菌显色培养基。3.4 胰蛋白胨大豆琼脂(trypticase soy agar,TSA):见附录A中A.3。3.5 生化鉴定试剂盒。3.6 氧化酶试剂:见附录A中A.4。3.7 L-赖氨酸脱羧酶培养基:见附录A中A.5。3.8 L-鸟氨酸脱羧酶培养基:见附录A中A.6。3.9 L-精氨酸双水解酶培养基:见附录A中A.7。3.10 糖类发酵培养基:见附录A中A.8。3.11 西蒙氏柠檬酸盐培养基:见附录A中A.9。3.12 普通PCR引物CronoF:5-GGGTTGTCTGCGA

4、AAGCGAA-3;CronoR:5-GTCTTCGTGCTGCGAGTTTG-3。3.13 Taq DNA 聚合酶。3.14 荧光PCR引物CronoRTF: 5-GGCGAGCGGCGAATATTAT-3; CronoRTR: 5-CGGGTTTTCCCAGTTGAGATC-33.15 探针:5-FAM-CACCAGTTTTCGGTGCGCCAGC-BHQ-33.16 dNTP:dATP、dTTP、dCTP、dGTP。3.17 Ex Taq DNA聚合酶3.18 10PCR缓冲液。3.19 克罗诺杆菌属质控菌株:ATCC 29544,或等效菌株。3.20 DNA提取试剂:细菌基因组DNA提

5、取试剂盒。3.21 TE缓冲液:10 mmol/L Tris-HCl(pH8.0)、1 mmol/L EDTA(pH8.0)。3.22 琼脂糖:分析纯。3.23 核酸染色剂。3.24 分子量标记:100 bp DNA ladder。3.25 5TBE电泳缓冲液:Tris 54 g、硼酸27.5 g、0.5 mol/L EDTA(pH8.0)20 mL,加蒸馏水至1 000 mL,使用时稀释为0.5TBE电泳缓冲液。3.26 6加样缓冲液。3.27 FastStarUniversal Probe Master(2)第一法 克罗诺杆菌属的检验4 检验程序克罗诺杆菌属检验程序见图1。检样100 g(

6、mL)检样100 g(mL)+BPW稀释液900 mL36 36 1 ,18 h2 h1 mL1 mL + mLST-Vm 10 mL44 44 0.5 ,24 h2 h阪崎肠杆菌显色培养基阪崎肠杆菌显色培养基36 36 1 ,24 h2 h挑取疑似菌落挑取疑似菌落TSATSA25 25 1 ,48 h4 hPCR检测(选作)或荧光PCR检测(选作)挑取黄色菌落PCR检测(选作)或荧光PCR检测(选作)挑取黄色菌落生化鉴定生化鉴定报 告报 告图1 克罗诺杆菌属检验程序5 操作步骤5.1 前增菌和增菌 取检样100 g(mL)加入已预热至44 装有900 mL缓冲蛋白胨水的锥形瓶中,用手缓缓地摇

7、动至充分溶解,36 1 培养18 h2 h。移取1 mL转种于10 mL mLST-Vm肉汤,44 0.5 培养24 h2 h。5.2 分离5.2.1 轻轻混匀mLST-Vm肉汤培养物,各取增菌培养物1环,分别划线接种于两个阪崎肠杆菌显色培养基平板,36 1 培养24 h2 h。5.2.2 挑取1个5个可疑菌落,划线接种于TSA平板。25 1 培养48 h4 h。5.3 鉴定自TSA平板上直接挑取黄色可疑菌落,进行生化鉴定。克罗诺杆菌属的主要生化特征见表1。可选择生化鉴定试剂盒或全自动微生物生化鉴定系统。表1 克罗诺杆菌属的主要生化特征生化试验特 征黄色素产生氧化酶L-赖氨酸脱羧酶L-鸟氨酸脱

8、羧酶()L-精氨酸双水解酶柠檬酸水解()发酵D-山梨醇()L-鼠李糖D-蔗糖D-蜜二糖苦杏仁甙 注:99%阳性;99%阴性;()90%99%阳性;()90%-99%阴性。5.4 PCR法(选作)5.4.1 模板DNA提取从TSA平板选取菌落,按细菌基因组DNA提取试剂盒操作说明书提取模板DNA,所提取的模板DNA溶于50 L TE中。5.4.2 PCR扩增5.4.2.1 反应体系体积为50 L:10PCR缓冲液5 L、上游引物和下游引物(10 mol/L)各2 L、dNTP(10 mmol/L)1 L、TaqDNA聚合酶(5U/L)0.5 L、水38.5 L、模板DNA 1 L。5.4.2.2

9、 反应条件:94预变性5 min,94变性30 s,57退火30 s,72延伸30 s,进行35个循环,72延伸5 min,4下保存。5.4.3 质控检测过程中要设阳性对照、阴性对照和空白对照。分别接种克罗诺杆菌和大肠杆菌到10 mL BHI中,361过夜培养,各取1.5 mL增菌液,离心,提取DNA模板。克罗诺杆菌DNA模板作阳性对照,大肠杆菌DNA模板作阴性对照,空白对照以无菌水作为模板,加样量与样品加样量一致。5.4.4 PCR扩增产物电泳检测用0.5TBE电泳缓冲液配置1.5%琼脂糖电泳凝胶并趁凝胶未凝固时加入溴化乙锭使其最终浓度达到1 g/mL,制胶。在电泳槽中加入电泳缓冲液,使液面

10、没过胶面。将适量PCR扩增产物分别和相应的6加样缓冲液混合,点样,其中一孔加入100 bp DNA ladder。90 V/cm恒压,电泳20 min30 min。紫外凝胶成像仪下观察电泳结果,拍照并记录结果。5.5 PCR结果及判断5.5.1 PCR扩增产物电泳检测结果克罗诺杆菌属PCR扩增产物为282 bp,序列信息参见附录C。5.5.2 对照结果5.5.2.1 阴性对照未出现预期大小的扩增条带。5.5.2.2 空白对照未出现预期大小的扩增条带。5.5.2.3 阳性对照出现预期大小的扩增条带。5.5.2.4 以上指标有一项不符合均视为此次实验无效。5.5.3 结果判定5.5.3.1 待测样

11、品出现预期大小的扩增条带,为阳性结果。5.5.3.2 待测样品未出现预期大小的扩增条带,为阴性结果。5.6 荧光PCR法5.6.1 模板DNA提取从TSA平板选取菌落,按细菌基因组DNA提取试剂盒操作说明书提取模板DNA,所提取的模板DNA溶于50 L TE中。5.6.2 荧光PCR扩增 反应体系总体积为25 L,其中含:上游引物和下游引物(10 mol/L)各0.4 L、FastStartUniversal Probe Master(2)12.5L、探针(10 mol/L)0.2 L、模板DNA 2 L,ddH2O补齐至25 L。反应条件:95预变性10 min,95变性5 s,55退火20

12、 s,收集荧光信号,进行40个循环,反应产物4保存。检测过程中要设阳性对照、阴性对照和空白对照。克罗诺杆菌属DNA模板作阳性对照,大肠杆菌DNA模板作阴性对照,空白对照以无菌水作为模板,加样量与样品加样量一致。6 结果与报告6.1 综合菌落形态和生化特征,报告每100 g(mL)样品中检出或未检出克罗诺杆菌属。6.2 检测样本Ct值小于或等于35.0时,报告克罗诺杆菌属筛选阳性;检测样本Ct值大于35.0时且小于40.0时,重复一次,如果Ct值仍小于40,且曲线有明显的对数增长期,可报告克罗诺杆菌属筛选阳性,否则报告克罗诺杆菌属未检出;样本检测不到Ct值时,报告克罗诺杆菌属未检出。 第二法 克

13、罗诺杆菌属的计数7 操作步骤7.1 样品的稀释7.1.1 固体和半固体样品:无菌称取样品100 g、10 g、1 g各三份,加入已预热至44 分别盛有900 mL、90 mL、9 mL BPW中,轻轻振摇使充分溶解,制成1:10样品匀液,置36 1 培养18h2h。分别移取1 mL转种于10 mL mLST-Vm肉汤,44 0.5 培养24h2h。7.1.2 液体样品:以无菌吸管分别取样品100 mL、10 mL、1 mL各三份,加入已预热至44 分别盛有900 mL、90 mL、9 mL BPW中,轻轻振摇使充分混匀,制成1:10样品匀液,置36 1 培养18h2h。分别移取1 mL转种于1

14、0 mL mLST-Vm肉汤,44 0.5 培养24 h2 h。7.2 分离、鉴定同5.2-5.3。8 结果与报告综合菌落形态、生化特征,根据证实为克罗诺杆菌属的阳性管数,查MPN检索表,报告每100 g(mL)样品中克罗诺杆菌属的MPN值(见附录中表B.1)。附 录A培养基和试剂缓冲蛋白胨水(BPW)成分蛋白胨10 .0g氯化钠5.0 g磷酸氢二钠(Na2HPO412H2O)9.0 g磷酸二氢钾1.5 g蒸馏水1 000 mLpH 7.2制法加热搅拌至溶解,调节pH,121 高压灭菌15 min。改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素(Modified lauryl sulfate tryp

15、tose broth-vancomycin medium,mLST-Vm)改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨(mLST)肉汤成分氯化钠34.0 g胰蛋白胨20.0 g乳糖5.0 g磷酸二氢钾2.75 g磷酸氢二钾2.75 g 十二烷基硫酸钠0.1 g蒸馏水1 000 mLpH 6.80.2制法加热搅拌至溶解,调节pH。分装每管10 mL,121 高压灭菌15 min。万古霉素溶液成分万古霉素10.0 mg蒸馏水10.0 mL制法10.0 mg万古霉素溶解于10.0 mL蒸馏水,过滤除菌。万古霉素溶液可以在0 -5 保存15天。改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素(Modified lauryl sul

16、fate tryptose broth-vancomycin medium,mLST-Vm)每10 mL mLST加入万古霉素溶液0.1 mL,混合液中万古霉素的终浓度为10 g/ mL。注意:mLST-Vm必须在24 h之内使用。胰蛋白胨大豆琼脂(TSA) 成分胰蛋白胨15.0 g植物蛋白胨 5.0 g氯化钠5.0 g琼脂15.0 g蒸馏水1 000 mLpH 7.30.2 制法加热搅拌至溶解,煮沸1 min,调节pH,121 高压15 min。氧化酶试剂 成分N,N,N,N-四甲基对苯二胺盐酸盐1.0 g蒸馏水100 mL 制法少量新鲜配制,于冰箱内避光保存,在7 d之内使用。 试验方法用

17、玻璃棒或一次性接种针挑取单个特征性菌落,涂布在氧化酶试剂湿润的滤纸平板上。如果滤纸在10 s中之内未变为紫红色、紫色或深蓝色,则为氧化酶试验阴性,否则即为氧化酶实验阳性。注意:实验中切勿使用镍/铬材料。L-赖氨酸脱羧酶培养基 成分L-赖氨酸盐酸盐(L-lysine monohydrochloride)5.0 g酵母浸膏3.0 g葡萄糖1.0 g溴甲酚紫0.015 g蒸馏水1 000 mLpH 6.80.2 制法将各成分加热溶解,必要时调节pH。每管分装5 mL,121 高压15 min。 实验方法挑取培养物接种于L-赖氨酸脱羧酶培养基,刚好在液体培养基的液面下。30 1 培养24 h2 h,观

18、察结果。L-赖氨酸脱羧酶试验阳性者,培养基呈紫色,阴性者为黄色。L-鸟氨酸脱羧酶培养基 成分L-鸟氨酸盐酸盐(L-ornithine monohydrochloride)5.0 g酵母浸膏3.0 g葡萄糖1.0 g溴甲酚紫0.015 g蒸馏水1 000 mLpH 6.80.2 制法将各成分加热溶解,必要时调节pH。每管分装5 mL。121 高压15 min。 实验方法挑取培养物接种于L-鸟氨酸脱羧酶培养基,刚好在液体培养基的液面下。30 1 培养24 h2 h,观察结果。L-鸟氨酸脱羧酶试验阳性者,培养基呈紫色,阴性者为黄色。L-精氨酸双水解酶培养基 成分L-精氨酸盐酸盐(L-arginine

19、 monohydrochloride)5.0 g酵母浸膏3.0 g葡萄糖1.0 g溴甲酚紫0.015 g蒸馏水1 000 mLpH 6.80.2 制法将各成分加热溶解,必要时调节pH。每管分装5 mL。121 高压15 min。 实验方法挑取培养物接种于L-精氨酸脱羧酶培养基,刚好在液体培养基的液面下。30 1 培养24 h2 h,观察结果。L-精氨酸脱羧酶试验阳性者,培养基呈紫色,阴性者为黄色。糖类发酵培养基 基础培养基成分酪蛋白(酶消化)10.0 g氯化钠5.0 g酚红0.02 g蒸馏水1 000 mLpH 6.80.2制法将各成分加热溶解,必要时调节pH。每管分装5 mL。121 高压1

20、5 min。 糖类溶液(D-山梨醇、L-鼠李糖、D-蔗糖、D-蜜二糖、苦杏仁甙)成分糖8.0 g蒸馏水100 mL制法分别称取D-山梨醇、L-鼠李糖、D-蔗糖、D-蜜二糖、苦杏仁甙等糖类成分各8 g,溶于100 mL蒸馏水中,过滤除菌,制成80 mg/mL的糖类溶液。 完全培养基成分基础培养基875 mL糖类溶液125 mL制法无菌操作,将每种糖类溶液加入基础培养基,混匀;分装到无菌试管中,每管10 mL。 实验方法挑取培养物接种于各种糖类发酵培养基,刚好在液体培养基的液面下。30 1 培养24 h2 h,观察结果。糖类发酵试验阳性者,培养基呈黄色,阴性者为红色。西蒙氏柠檬酸盐培养基 成分柠檬

21、酸钠2.0 g氯化钠5.0 g磷酸氢二钾1.0 g磷酸二氢铵1.0 g硫酸镁0.2 g溴百里香酚蓝0.08 g琼脂8.018.0g蒸馏水1 000 mLpH 6.80.2 制法将各成分加热溶解,必要时调节pH。每管分装10 mL,121 高压15 min,制成斜面。 实验方法挑取培养物接种于整个培养基斜面,36 1 培养24 h2 h,观察结果。阳性者培养基变为蓝色。附 录B克罗诺杆菌属最可能数(MPN)检索表B.1 克罗诺杆菌属最可能数(MPN)检索表每100 g(mL)检样中克罗诺杆菌属最可能数(MPN)的检索见表B.1。表B.1 克罗诺杆菌属最可能数(MPN)检索表阳性管数MPN95%可信限阳性管数MPN95%可信限100101下限上限100101下限上限0000.3-0.952202.10.454.20010.30.0150.962212.80.879.40100.30.0151.12223.50.879.40110.610.121.82302.90.879.40200.620.121.82313.60.879.40300.940.363.83002.30.469.41000.360.0171.83013.80.87111010.720.131.83026.41.7181021.10.363.83104.30.9181100.740.1323117.51.72011

温馨提示

  • 1. 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。图纸软件为CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.压缩文件请下载最新的WinRAR软件解压。
  • 2. 本站的文档不包含任何第三方提供的附件图纸等,如果需要附件,请联系上传者。文件的所有权益归上传用户所有。
  • 3. 本站RAR压缩包中若带图纸,网页内容里面会有图纸预览,若没有图纸预览就没有图纸。
  • 4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
  • 5. 人人文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对用户上传分享的文档内容本身不做任何修改或编辑,并不能对任何下载内容负责。
  • 6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
  • 7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。

评论

0/150

提交评论