结冷胶裂解酶在毕赤酵母中的异源表达及其性质和应用

1、PAGE 14 -结冷胶裂解酶在毕赤酵母中的异源表达及其性质和应用结冷胶是少动鞘氨醇单胞菌所产的多糖，其分子骨架由(13)-D-葡萄糖、(14)-D-葡萄糖醛酸、(14)-D-葡萄糖和(14)-L-鼠李糖线性四糖重复单元按摩尔比1111聚合组成，分子质量达0.51061106Da1-3。结冷胶寡糖可由结冷胶降解得到，具有益生活性4、植物诱导抗病性5、提高免疫活性6等生物学功能，其制备具有重要意义。寡糖一般通过物理、化学、生物(酶)法降解多糖制备，比较3类方法，酶法特异性强，产物均一，是较理想的方法7。目前，缺乏有效降解结冷胶的酶是结冷胶及其寡糖应用的最大障碍。结冷胶裂解酶(EC4.2.2.25

2、,gellanlyase)特异性裂解结冷胶主链的糖苷键，释放非还原端为不饱和葡萄糖醛酸的葡萄糖醛基-葡萄糖基-鼠李糖基-葡萄糖四糖单元8。MIYAKE等9对来自Bacillussp.GL1的结冷胶裂解酶在大肠杆菌中胞内表达，并对其应用进行了研究。通过基因工程技术获得重组的功能蛋白，是进行工业用高效蛋白生产的重要途径10。除大肠杆菌，目前研究比较深入的重组蛋白表达系统还有枯草芽胞杆菌和毕赤酵母(Pichiapastoris)等11。较其他表达系统，毕赤酵母表达宿主遗传性能稳定、表达外源蛋白分泌效率高、产物便于分离纯化、诱导型菌株具有较完善的发酵策略，应用广泛12。在毕赤酵母表达系统中，醇氧化酶A

3、OX1基因强启动子最为常用，受甲醇严格调节，诱导表达外源蛋白，能达到很高的生产水平13。本研究首次应用毕赤酵母构建表达Bacillussp.GL1来源结冷胶裂解酶基因，诱使结冷胶裂解酶胞外分泌，发酵扩大生产。经分离纯化，重组结冷胶裂解酶的酶学性质被测定，并利用其对结冷胶进行降解，这是对获得大量结冷胶裂解酶用于寡糖制备和工业应用的初步探索，为进一步开发利用结冷胶资源，扩大其应用范围提供理论依据。1材料与方法1.1实验材料1.1.1菌株与质粒大肠杆菌JM109、毕赤酵母GS115及分泌型酵母表达载体pPIC9K均购自美国Invitrogen公司，并保藏于糖化学与生物技术教育部重点实验室。1.1.2

4、试剂与仪器限制性核酸内切酶(EcoR、Not和Sal)、DL-10000DNAMarker、SanPrep柱式质粒小量抽提试剂盒和Ezup柱式酵母基因组DNA抽提试剂盒等，大连TaKaRa公司；酵母粉、蛋白胨、甘油和无水甲醇等，国药集团化学试剂有限公司；结冷胶(食品级)，无锡格莱克斯生物科技有限公司。MicroPulser型电转仪、C1000Touch型PCR仪，美国Bio-Rad公司；3K15型高速冷冻离心机，德国Sigma公司；BioFlo115型7L发酵罐，美国NBS公司；ultrafleXtreme型质谱仪，美国BrukerDaltonics公司。1.1.3培养基LB培养基(g/L)：

5、蛋白胨10，酵母粉5，NaCl10，pH7.0(固体培养基加入琼脂粉20g/L)。YPD培养基(g/L)：蛋白胨20，酵母粉10，葡萄糖20(固体培养基加入琼脂粉20g/L)。MD培养基(g/L)：无氨基酵母氮源(yeastnitrogenbase,YNB)13.4，生物素410-5，葡萄糖20，琼脂20。MM培养基：YNB13.4g/L，生物素40g/L，甲醇5mL/L，琼脂20g/L。BMGY培养基：酵母粉10g/L，蛋白胨20g/L，磷酸钾缓冲液100mmol/L、pH6.0，YNB13.4g/L，生物素40g/L，甘油10g/L。BMMY培养基：酵母粉10g/L，蛋白胨20g/L，磷酸

6、钾缓冲液100mmol/L、pH6.0，YNB13.4g/L，生物素40g/L，甲醇10mL/L。上述培养基在121灭菌20min或115灭菌30min。1.2实验方法1.2.1重组表达质粒的构建及鉴定选取Bacillussp.GL1来源结冷胶裂解酶基因(GenBankID:AB006853.1)中已报道的功能活性区域(N-terminalgellanlyase,nGL)9，根据毕赤酵母(P.pastorisGS115)的偏好性进行密码子优化后委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成结冷胶裂解酶基因(nGL1)，获得商品重组克隆质粒pUC57-nGL1。根据优化后的基因序列设计引物，分别在引物

7、5和3端分别加上EcoR和Not酶切位点及保护碱基。本研究中PCR扩增体系所用引物如表1所示。表1本研究所用引物Table1Primersusedinthisstudy注：下划线部分为酶切位点，小写部分为保护碱基pUC57-nGL1溶解稀释至一定浓度用EcoR、Not双酶切，经琼脂糖凝胶电泳鉴定、回收、纯化后，进而用T4DNA连接酶连接到经过相同的工具酶线性化载体pPIC9K上，构建重组表达质粒pPIC9K-nGL1(图1)，并转化到E.coliJM109感受态细胞中富集。选取含有氨苄抗性LB平板上阳性克隆子，提取质粒使用EcoR和Not进行单酶切和双酶切及菌落PCR鉴定。图1重组表达质粒构建

8、Fig.1Constructionofrecombinantexpressionplasmid1.2.2重组毕赤酵母的构建及验证鉴定成功的pPIC9K-nGL1经Sal酶切线性化后电转化入P.pastorisGS115染色体DNA中，30培养23d，以得到转化子。采用MD/MM平板点植对照法筛选甲醇快速利用型(Mut+)表型，进一步通过YPD-遗传霉素(G418)平板筛选优良的表达菌株14。随机挑取其单菌落，接种于3mLYPD液体培养基中，30、200r/min过夜培养。以Ezup柱式酵母基因组DNA抽提试剂盒提取酵母基因组DNA为模板，进行PCR扩增，然后1.0%琼脂糖凝胶检测PCR结果。P

9、CR鉴定正确的重组菌经测序验证目的基因整合到酵母基因组中，将测序正确的菌株命名为P.pastorisGS115-pPIC9K-nGL1并于-40甘油管中保藏。1.2.3重组结冷胶裂解酶活性的测定取适量酶液与Tris-HCl缓冲液(50mmol/L，pH7.0)混匀，加入终质量浓度为0.5g/L的底物结冷胶溶液激活反应，涡旋振荡1min，于45水浴反应20min后，煮沸10min灭活。酶活力定义为在1mL上述反应体系条件下，1min转化底物生成1mol还原糖所需的酶量为一个单位U。二硝基水杨酸(3,5-dinitrosalicylicacid，DNS)法测定反应体系中还原糖浓度15。1.2.4重

10、组结冷胶裂解酶的诱导表达与筛选参考Invitrogen公司的毕赤酵母表达系统操作手册16，挑取构建成功的重组毕赤酵母单菌落接种至50mLBMGY培养基中，30、200r/min培养至OD600=2.06.0，4、4000g离心5min收集菌体。用100mLBMMY培养基重悬并稀释至OD600=1.0，进行诱导培养；每隔24h加入无水甲醇至终体积分数为0.5%，发酵120h。发酵结束菌液4、8000g离心5min收集上清液测定酶活力，并用8%SDS检测蛋白质表达情况。1.2.5重组结冷胶裂解酶的分离纯化发酵液上清液于80%饱和硫酸铵盐析沉降，沉淀物复溶后4透析过夜，而后经葡聚糖凝胶Sephade

11、x-G100柱层析17。层析组分加到预先经Tris-HCl缓冲液(0.1mol/L,pH7.0)平衡的DEAE-52纤维素层析柱，用00.8mol/LNaCl溶液(同种缓冲液配制)进行线性梯度洗脱，设置280nm测紫外吸光值，分管收集18得到纯酶液，待处理样品进行SDS分析。1.2.6重组结冷胶裂解酶的酶学性质研究最适反应温度测定。分别在20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70条件下检测结冷胶裂解酶酶活性，设最高酶活力为100%，计算各水平条件下相对酶活力。温度稳定性检测。取等量纯酶液置于45、50、55水浴锅中温育，每隔30min取样，于冰上冷却5min，保持其他反应

12、条件不变，计算相对酶活力。最适反应pH测定。保持其他反应条件不变，反应体系中加入相同体积的pH值为4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、9.0、9.5的Tris-HCl缓冲液，设最高酶活力为100%，计算相对酶活力。pH稳定性检测。取等量纯酶液用相同体积的pH值为4、5、6、7、8、9、10、11的缓冲溶液悬浮，于4放置12h，保持其他反应条件不变，随后计算相对酶活力。金属离子稳定性检测。在酶反应体系中分别加入0.1mol/LK+、Na+、Ca2+、Mg2+、Al3+、Zn2+、Fe3+、Mn2+，以不加金属离子Tris-HCl缓冲液的酶的活性为100%，计算相对酶活

13、力。1.2.7重组毕赤酵母工程菌的7L发酵罐高密度培养接种重组毕赤酵母单菌落于BMGY培养基，30、200r/min培养24h即得种子液。将2.7LBMGY培养基加入7L发酵罐内，经灭菌处理后调节发酵体系维持在30、pH6.0并稳定2h。随后加入300mL种子液。对发酵罐的通气量和转速进行调节，维持溶氧在20%上下，培养2024h，使得发酵液中的所有甘油被消耗完。此时进入展开甲醇诱导培养阶段，调pH6.0，并处于30条件下。利用同时反馈控制办法进行在线测定19，甲醇质量浓度维持在10g/L。发酵过程中，每间隔6h需要对典型生化指标进行测定和记录，如生物量和结冷胶裂解酶活力。1.2.8重组结冷胶

14、裂解酶的裂解产物分析以低质量浓度0.5g/L的结冷胶溶液为底物进行酶促降解反应，每隔30min取样，用展开剂(正丙醇乙酸水=523，体积比)于Merck薄层板(TLCSilicagel60F254,2020cm)上将产物分离进行薄层色谱法(thin-layerchromatography，TLC)分析。为进一步鉴定降解产物，反应结束后样品经0.22m水系膜过滤器过滤后以2,5-二羟基苯甲酸(2,5-dihydroxybenzoicacid，DHB)为基质，利用基质辅助激光解析电离飞行时间质谱(matrix-assistedlaserdesorption/ionizationtimeofflig

15、htmassspectrometry,MALDI-TOF-MS)在正离子模式下对产物寡糖的质荷比进行分析，以确定结冷胶寡糖的聚合度20。1.3数据处理实验设置3次平行，测定参数取平均值，利用Origin8.5软件绘制图表并进行数据处理分析。2结果与分析2.1重组毕赤酵母的构建及筛选阳性克隆子经菌落PCR验证提取重组质粒并分别使用EcoR和Not进行单酶切和双酶切验证。结果如图2-a，在琼脂糖凝胶上EcoR或Not单酶切的产物大小约12827bp的单条带，EcoR和Not双酶切分别得到3551bp的nGL1片段和9276bp的线性pPIC9K片段，表明重组表达质粒pPIC9K-nGL1构建成功。

16、经电转、筛选，随机选择8株阳性转化子于YPD液体培养基中扩培，然后取适量菌液PCR验证，结果如图2-b，在琼脂糖凝胶3551bp的位置上有明显条带即nGL1片段，表明重组质粒pPIC9K-nGL1已成功电转化入毕赤酵母GS115细胞中，经进一步测序表示基因工程菌重组P.pastorisGS115-pPIC9K-nGL1构建成功。a-重组表达质粒电泳鉴定图(M-Marker；1-Not单切；2-EcoR单切；3-Not和EcoR双切；4-菌落PCR)；b-重组毕赤酵母电泳验证图(M-Marker；18-阳性转化子PCR结果；9-空质菌PCR结果)图2重组毕赤酵母的构建及验证筛选Fig.2Cons

17、tructionandvalidationofrecombinantP.pastoris2.2重组结冷胶裂解酶的诱导表达及鉴定利用ExPASy预测本研究中结冷胶裂解酶分子质量约为125kDa。重组毕赤酵母摇瓶诱导表达并测定酶活力，如图3-a，筛选得到高酶活力菌株P.pastorisGS115-pPIC9K-nGL1.2酶活力为266.4U/L。a-重组结冷胶裂解酶高酶活菌株筛选(18-阳性转化子；9-空质菌)；b-重组结冷胶裂解酶SDS电泳分析(1-空质菌上清液；2、3-重组菌上清；4、5-初步纯化后酶液)图3重组结冷胶裂解酶的诱导表达及鉴定Fig.3Inducedexpressionandi

18、dentificationofrecombinantgellanlyase用相同方法培养处理空质菌P.pastorisGS115-pPIC9K作为空白对照。分别取适量粗酶液处理进行SDS分析，结果如图3-b，P.pastorisGS115-pPIC9K-nGL1.2上清液与空质菌对照相比在分子质量75和45kDa处均有明显的蛋白表达带。进一步分离纯化重组结冷胶裂解酶，经过SDS电泳检测，所得纯化酶液位置与粗酶液加粗条带一致，大小正确。但所收集组分未分离开，表现为电泳条带无单条存在，分析可能是结冷胶裂解酶发生降解。2.3重组毕赤酵母工程菌的7L发酵罐高密度培养对高酶活力菌株P.pastorisG

19、S115-pPIC9K-nGL1.2进行7L发酵罐高密度培养，结果如图4所示，随着发酵的进行，重组毕赤酵母生物量最高达78.5g/L，结冷胶裂解酶酶活力达954.6U/L，相比于摇瓶表达最高酶活力(266.4U/L)提高了3.58倍。图4重组毕赤酵母7L发酵罐发酵Fig.4RecombinantP.pastorisfermentationin7Lbioreactor2.4结冷胶裂解酶的酶学性质研究2.4.1重组结冷胶裂解酶反应的最适温度及温度稳定性温度影响酶的空间结构。在一定温度范围内，温度升高，酶反应速率提高；高温或低温都会降低酶的催化效率，温度过高甚至引起不可逆的蛋白变性21。研究结果见图

20、5-a，在3050时，重组结冷胶裂解酶相对酶活力超过80%。其中，相对酶活力在45时最高，这与原始菌裂解酶性质一致9。该重组酶温度稳定性结果如图5-b，总体而言，酶活力的降低同保温时间呈正相关关系；45下酶活力降低速度相对较缓，即使放置10h相对酶活力依然大于80%。重组酶对反应温度和保藏温度要求较高，选择合适的条件是提高寡糖产量的基础。2.4.2重组结冷胶裂解酶反应的最适pH及pH稳定性pH的改变影响酶分子中具有催化活性的离子基团解离程度，从而影响酶的催化能力22。由图5-c可知结冷胶裂解酶最适pH7.5，当pH值低于7.5时，酶活力迅速下降，当pH值降低到5.0时相对酶活力几近为0。重组酶

21、在弱碱性条件下容易发挥较大活性，考察重组结冷胶裂解酶的pH稳定性，反应结果如图5-d所示。从图中明显看出结冷胶裂解酶具有较大的耐碱范围，这与其最适反应pH结果一致。当pH值处于7.09.0时，呈现出较为稳定的状态，剩余酶活力高于80%，相比于原始菌稳定性得到了一定提升9。可能原因是毕赤酵母的糖基化功能，提高了重组酶的温度稳定性10。结果表明弱碱环境适合结冷胶裂解酶降解结冷胶。a-最适温度；b-温度稳定性；c-最适pH；d-pH稳定性；e-金属离子稳定性图5重组结冷胶裂解酶酶学性质Fig.5Enzymaticpropertiesofrecombinantgellanlyase2.4.3重组结冷胶

22、裂解酶反应的金属离子稳定性金属离子通过与氨基酸残基结合，影响酶活力22。以不含金属离子的Tris-HCl缓冲液反应体系作为对照，考察不同金属离子(K+、Ca2+、Na+、Mg2+、Al3+、Zn2+、Fe3+、Mn2+)对重组结冷胶裂解酶酶促反应的影响。结果如图5-e，K+、Na+对重组酶酶活力既没有促进作用，也没有明显的抑制作用，影响并不大；Zn2+对重组酶有微弱的促进作用，酶活力为对照组的108.9%；Ca2+、Mg2+、Al3+、Fe3+和Mn2+对重组酶则有着不同程度的抑制作用，其中Al3+抑制作用最强，相对酶活力仅44%。a-结冷胶寡糖TLC分析图(1-葡萄糖标品；2-蔗糖标品；3-环糊精标品；410-30、60、90、120、150、180、0min结冷胶寡糖样品；11-阴性对照组)；b-结冷胶寡糖MALDI-TOF-MS分析图图6结冷胶裂解酶降解产物分析Fig.6Degreeofpolymerizationofgel