生理科学实验期末复习思考题

1、-. z.生理科学实验期末复习思考题实验一 医学动物实验的根本知识与根本技术 1什么是“实验动物？高质量的实验动物应具备哪些特性？答：“实验动物是指供生物医学实验而科学育种、繁殖和饲养的动物。高质量的实验动物应具备较好的遗传均一性、对外来刺激的敏感性和实验的再现性。备注：生理学教材P72常用实验动物有哪几种？各有何特点？答：1青蛙和蟾蜍：青蛙的心脏在离体情况下还可以保持较长时间的节律性和坐骨神经对各种刺激敏感。2小鼠：小鼠繁殖周期很短，产仔多生长快，温驯易捉，操作方便，又能复制出多种疾病模型，适用于需要大数动物的实验。如药物的筛选，半数致死量等。3大鼠：有小鼠的的优点，可以用于胃排空，胃酸分泌

2、，水肿，休克等方面的研究。4豚鼠：性情温顺，胆小易惊，对周围的环境变化敏感，选用于过敏实验如抗组胺药和平喘药的实验5家兔：性情温驯便于静脉给药、灌胃、和取血，是医学上最常用的动物，如用于心血管、呼吸、泌尿等方面的研究(6)猫：因为猫的循环系统兴旺，血管较坚韧，血压比家兔稳定，故多用于血压的实验。(7)犬：犬的嗅觉较敏感，对外界适应能力强，血液、循环、消化和神经3常用药物浓度的表示方法有几种？分别举一例说明。 答：药物浓度是指一定量的液体或固体药物制剂中所含主药的份量。常要的药物浓度表示方法有三种。百分浓度：按照每100份溶液或固体药物制剂中所含药物的分数来表示的浓度简写为%常用的百分浓度表示方

3、法有：1重量/容量w/v表示一容量的药物中所含固体药物的重量，通常为每100ml溶液中所含药物的克数。如5%葡萄糖溶液即表示每100ml溶液中含有固体葡萄糖5g，这种方法最常用，一般不加特别的注明的表示方法就是以这种方法表示的。2重量/重量w/w表示一定重量的药物制剂中所含固体药物的重量，通常表示为每100g药物制剂中含药物的克数。这种方法适用于固体药物制剂浓度的表示。如10%氧化辛表示每100g软膏中含有固体氧化锌10g。3容量/容量v/v表示一定容量的药液中含有的液体药物的毫升数，这种方法适用于液体药物制剂浓度的表示，如消毒用的75%酒精溶液即指每100ml溶液中含无水乙醇75ml相当于w

4、/w法表示的70%酒精比例浓度：常用于表示稀溶液的浓度。如1：5000的高锰酸钾溶液是指5000毫升溶液中含有高锰酸钾1g4摩尔浓度：指每升溶液中所含溶质的摩尔数没摩尔数相当于每以克为单位的该药物分子的分子量。如0.1mol/lL的氯化钠溶液表示1000ml溶液中含有NaCl5.84g！4最简单的生理溶液是什么？生理溶液在配制时应注意哪些问题？答：最简单的生理溶液0.9%恒温动物或0.65%变温动物的氯化钠溶液，又称生理盐水。生理溶液在配制时要注意：不宜长久放置，一般临用时配制。葡萄糖配制时确保固体药物的枯燥，必要时可进展烘干。如需要有NaHCO3或NaHPO4,同时需要参加,则前两种可先参加

5、完全溶解稀释前方可边搅拌边参加CaCl2，否者会产生沉淀对配成的生理溶液还要测定其PH林格液为7.2，洛克液7.37.45常用的局部麻醉药及其用量如何？答：常用的局部麻醉药是盐酸普鲁卡因溶液。其用量根据手术*围的大小和麻醉深度而定，每个手术野1-3ml，注射后1-3min内就产生麻醉作用，维持30-40in。备注：生理学教材P166注射麻醉可采用哪些方法？常用哪些麻醉药物？其用量及作用特点如何？动物麻醉应注意哪些事项？答：1注射麻醉可采用静脉注射、肌内注射、腹腔注射、皮下注射。2常用麻醉药物有：3%的戊巴比妥钠溶液和20%的乌拉坦氨基甲酸乙酯溶液。戊巴比妥钠麻醉作用稳定，麻醉时间适中，一般动物

6、麻醉均可用。乌拉坦对呼吸的抑制作用小，麻醉作用较弱，持续时间较长，也可以选用，但乌拉坦对肝和骨髓有毒性，只是用于急性实验。具体用药物用量如下实验动物给药途径戊巴比妥钠mg/kg乌拉坦mg/kg小鼠i.v35-i.p45-i.m-1350大鼠i.v25-i.p45780i.m-1350家兔i.v30750-1000i.p40-50750-10003麻醉考前须知：1、静脉注射麻醉药物是应缓慢，同时观察肌肉紧*度、角膜反射和皮肤夹捏的反响，当这些活动明显减弱或消失时，应立即停顿注射。静脉麻醉的给药浓度要适中，不宜过高，以免麻醉过快出现动物死亡，但也不能过低，以减少注入溶液的量。2、麻醉时必须保持动物

7、气道通畅。一旦出现麻醉过深的情况，应立即采取人工呼吸抢救。3、对于麻醉动物应注意保温。动物体温过低会影响实验结果的准确性 7动物编号最常用哪种方法？染色法常用哪些染料染色？如何对小鼠作110号的标记？ 生理科学实验教程P188常用生理溶液有哪些？说明其主要用途。溶液名称用途溶液名称用途等*氯化钠溶液变温蛙类，蛇类等*氯化钠溶液恒温犬，兔，鼠林格液蛙类器官，组织拜氏液离体蛙心洛克液哺乳动物的心脏，子宫蒂罗德液哺乳动物的小肠平滑肌豚鼠支气液豚鼠支气管大鼠子宫液大鼠子宫克氏液哺乳动物各种组织9实验动物用药剂量的换算方法有哪些？如何计算？答：主要换算方法有两种1、按单位体重换算用药剂量的方法：A种动物

8、每千克体重用药的剂量，如估计B种动物的剂量，换算系数为WB种动物的剂量mg/kgA种动物的剂量mg/kg*换算系数W2、按体外表积换算用药剂量的方法：因不同动物体内的血药浓度与动物的体外表积成平行关系，故按体外表积换算用药剂量较为准确。10小鼠的给药方法有哪几种？如何给药及其考前须知？答：小鼠的给药方法有以下几种：灌胃法、皮下注射、肌内注射、腹腔注射、静脉注射。给药的具体操作方法及考前须知见生科实验教程P272911小鼠的采血方法有哪几种？如何采血及其考前须知？ 答：小鼠的采血方法有：眼眶静脉丛采血；眼眶动、静脉采血；断头采血；尾静脉采血；心脏采血；动、静脉采血。具体实验操作见生科实验教程：P

9、333512实验动物安乐死常用方法有哪些？答：常用的方法：1.颈椎脱臼法2.空气栓塞法3.急性大失血法4.药物致死法5. 断头法安乐死一. 颈椎脱臼法安乐死颈椎脱臼就是用外力将动物颈椎脱臼，使脊髓与脑髓断开，致使实验动物无痛苦死亡。由于其能使实验动物很快丧失意识，减少痛苦，容易操作，动物内脏未受损害等优点被认为是很好的实验动物安乐死方法。颈椎脱臼法常用于小鼠、大鼠、沙鼠、豚鼠、家兔等小型实验动物。1 大、小鼠的颈椎脱臼 (此法是将实验动物的颈椎脱臼，断离脊髓致死，为大、小鼠最常用的处死方法。操作时实验人员用右手抓住鼠尾根部并将其提起，放在鼠笼盖或其他粗糙面上，用左手拇指、食指用力向下按压鼠头及

10、颈部，右手抓住鼠尾根部用力拉向后上方，造成颈椎脱臼，脊髓与脑干断离，实验动物立即死亡。2 豚鼠、仓鼠的颈椎脱臼豚鼠颈椎脱臼的方法是先用左手拇指稳准、迅速地扣住其背部，抓住其肩上方，用手指紧握住颈部，用右手紧握住基两条腿，向后旋转用力拉3 家兔的颈椎脱臼一般需要两人，一人用两手在兔后抓紧其头部，另一人用双手紧紧握住其两条腿，然后同时旋转用力拉二、断头处死法此法适用于鼠类等较小的实验动物。操作时，实验人员用左手按住实验动物的背部，拇指夹住实验动物右腋窝，食指和中指夹住左前肢，右手用剪刀在鼠颈部垂直将鼠头剪断，使实验动物因脑脊髓断离且大量出血死亡。三 药物法根据给药途径的不同可分为吸入法和注射法两种

11、吸入法是将有毒的气体或挥发性麻醉剂让动物经呼吸道吸入体内而致死，常用小动物的安乐死。常用的气体和麻醉剂有CO2 、CO、乙醚、氯仿等。注射法是将药物注入体内，使动物致死。常用于较大的动物如家兔、猫等的安乐死。常用的药物有10%的氯化钾，巴比妥类等麻醉药等。10%的氯化钾的用量约为每只动物1020ML，10%的氯化钾的用量约为麻醉剂量的假设干倍。四、放血处死法此法适用于各种实验动物。具体做法是将实验动物的股动脉、颈动脉、腹主动脉剪断或剪破、刺穿实验动物的心脏放血，导致急性大出血、休克、死亡。小鼠、大鼠可采用摘除眼球，由眼眶动脉放血致死，豚鼠、家兔可采用心脏一次性大量抽血致死。如果已经给动物做了颈

12、动脉或股动脉插管术，则在实验完毕后，先用动脉夹夹住动脉，拔出动脉导管，然后用自来水不断冲洗切口及血液，既可保持血液畅流无阻，又可保持操作台清洁，使实验动物急性大出血死亡。五、空气栓塞处死法处死兔、猫、犬常用此法。向实验动物静脉内注入一定量的空气，形成肺动脉或冠状动脉空气栓塞，或导致心腔内充满气泡，心脏收缩时气泡变小，心脏舒*时气泡变大，从而影响回心血液量和心输出量，引起循环障碍、休克、死亡。空气栓塞处死法注入的空气量，猫和兔为1020ml，犬为70150ml。实验二 一Medlab系统的功能及其根本操作 1.在Medlab系统软件中，“标题栏、“标记栏和“提示栏的主要作用是什么？“*轴显示控制

13、区、“采样控制区和“刺激器控制区的主要作用是什么？ 答：标题栏：显示系统名称或实验名称、存盘文件路径和文件名、界面控制按钮。标记栏：用于添加、编辑实验标志，并可用于实验数据的定位。提示栏：提示相关的操作信息、时钟显示和当前硬盘的可用空间。*轴显示控制区：用于动态显示采样时间，控制*轴方向波形的扩展与压缩，显示标记，调整波形曲线在*轴方向上的位置。采样控制区：用于开场采样、停顿采样及采样存盘的控制。刺激器控制区：用于选择刺激器发出刺激模式，启动刺激开关及刺激参数的实时调整。见生理科学实验教程P42、43页2.在Medlab系统软件中，每个显示通道窗主要由哪三局部组成？各局部的主要功能是什么？ 答

14、：每个每个显示通道窗主要由“通道控制区，波形显示区、显示控制区组成。通道控制区：显示通道号，控制程控放大器的放大倍数、采样曲线的颜色和滤波调节。波形显示区：显示采样曲线。显示控制区：调节和显示曲线参数、Y轴坐标和处理名称等。见生理科学实验教程P43页。3.Medlab系统实验配置的主要工程有哪些？如何正确配置？ 1、主要工程有：实验参数配置、保存实验配置、调用实验配置。2、具体配置步骤见生理科学实验教程44-46页4.Medlab系统软件常处理哪四类Medlab系统文件？ 答：常用生理学、常用药理学、常用病理生理学、常用运动生理学。注：此仅为参考答案5.根本概念含义及作用：采样间隔、放大倍数、

15、上限频率、下限频率时间常数、低通滤波、高通滤波 答：采样间隔：就是选择前、后采样点的间隔时间。采样间隔短，采得的数据量大，占用硬盘的空间大，后处理不易。采样间隔长，快信号不能重现。意义采样频率是信号频率的5-10倍。放大倍数：根据信号的强弱选择适宜的放大倍数。用鼠标点击相应通道的“通道控制区中的“放大，即可选择适宜的放大倍数。上限频率：实验中对通道选择的大体原则是：第一通道的最小放大倍数为50倍，上限频率为10kHZ，第二通道和第四通道最小放大倍数分别为50倍与5倍，上限频率为1kHz，第三通道的最小放大倍数是5倍，上限频率为100Hz。低通滤波：允许小于此频率的信号通过高通滤波：语序大于此频

16、率的信号通过，用鼠标左键点击相应通道的“通道控制区中的“全通，即可选择适宜的滤波调节。6. 根本操作方法及作用：标准配置、零点设置、在线测量设置零点：用鼠标点击相应通道的“显示控制区中的处理名称处，在弹出的菜单中选择“零点设置，用鼠标左键单击“确定按钮，就完成了零点的设置。标准配置：选择菜单“设置、标准配置，就翻开了medlab系统内设置的标准四通道配置，这是所有实验参数复位，可在此根底上进展各种新的实验参数设置。在线测量：是指在采样的同时对实验结果进展测量在线测量间隔可调。采样时点击快捷工具栏上的“在线测量按钮，在通道右侧的“显示控制区就可以显示实时测量结果。假设要将测量结果记入medlab

17、电子表格，可点击“处理结果入表快捷按钮。假设要远距离观察测量结果，点击“结果提示按钮，可翻开“结果提示窗。点击“结果提示窗按钮，可翻开“在线图表窗，自动将测量结果填入电子表格。7.Medlab系统的三大显示模式记录仪、记忆示波和慢扫示波及其选用原则是什么？答：一，连续记录：用来记录变化较慢，频率较低的生物信号，如血压，呼吸，心电，*力等，记录曲线的方向是由右向左，连续滚动，与传统的二道记录仪一致二，记忆示波：用来记录变化快，频率高的生物信号，如神经干动作电位，心室肌动作电位等，扫面曲线的方向是从左到右，一屏一屏地记录，与传统的示波器一致。三，慢扫示波：这种记录方式非常灵活，可以记录采样频率为1

18、00kHz到20Hz的生物信号，扫描曲线是从左向右，按屏幕刷新，与传统的监护仪一致，当*些实验无法确定用何种显示方式时，可选用这种显示方式。8.“区段测量的操作方法如何？其测量工程“时间、“幅值、“间隔、“峰峰值、“最大值和“最小值的含义是什么？ 二大鼠的根本操作技术 1. 大鼠常用的给药方法有哪些？说明其操作要点及考前须知？ 答：1给药方法：灌胃、皮下注射、肌内注射、腹腔注射、静脉注射2灌胃法 以左手捉持小鼠，使其头部朝上，颈部拉直。右手持配有灌胃针头以16号输血针头磨去针尖后制成的注射器，自口角插入口腔，再从舌面紧沿上腭进入食道。如手法正确，不难成功。假设遇阻力，应退出后再插，不能用力强插

19、，以免刺破食道或误入气管，使动物致死。灌胃的药液量一般为0.10.3ml/10g。试以生理盐水作灌胃练习。3皮下注射 可由两人合作。一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。另一人左手捏起背部皮肤，右手持注射器5号或6号针头，将针头刺入背部皮下。如由一人操作，可按前法捉持小鼠，右手持注射器，针尖从右侧肋缘上穿入皮下，向前推至右前肢腋下部位，将药液推入即可。小鼠皮下注射的药液量一般为0.050.2ml/10g。试以生理盐水进展练习。4肌内注射 可由两人合作。一人左手抓住小鼠头部皮肤，右手拉住鼠尾。另一人持注射器4号或5号针头，将针头刺入后肢外侧部肌肉。如一人单独操作，以左手拇指和食指抓住小鼠头部皮

20、肤，小指、无名指和掌部夹住鼠尾及一侧后肢，右手持注射器刺入后肢肌肉给药。注射器每腿不宜超过0.1ml。试以生理盐水进展练习。5腹腔注射 以左手抓住小鼠，使腹部在上面，头部下倾，右手持注射器5号或6号针头，取30度角将针头从一侧下腹部向头端刺入腹腔。进针部位不宜太高，刺入不能太深，以免伤及内脏。注射量一般为0.10.2ml/10g。试以生理盐水进展练习。6尾静脉注射 将小鼠置特制的固定筒内或倒置的大漏斗、乳钵下，使鼠尾露出在外。用酒精或二甲苯棉球涂擦尾部，或将鼠尾在50热水中浸泡半分钟，使血管扩*。用左手拉住尾尖，从左右两侧尾静脉中，选择一条扩*最明显的尾静脉，右手持注射器4号针头，将针头刺入血

21、管，推入药液。如推注时有阻力，且局部肿胀变白，说明针头没有刺入血管，应拨出后重新穿刺。穿刺血管时宜从鼠尾末端开场，以便失败后可在第一次穿刺点的近心端重新进展。小鼠尾静脉注射的药液量一般为0.10.2ml/10g。试以生理盐水作尾静脉注射练习。2. 大鼠常用的安乐死方法有哪些？答：大鼠常用的安乐死方法:颈椎脱臼法、空气栓塞法、大量放血法、断头法、药物法三利多卡因的抗心律失常作用 3. 根据实验结果，说明氯化钡诱发大鼠室性心律失常的作用机理及其表现如何？ 答：氯化钡能增加浦肯野纤维对钠离子的通透性，促进细胞外钠离子的内流，提高其舒*期自动除极化的速率，从而诱发室性心律失常。表现为室性期前收缩、二联

22、律、室性心动过速、心室纤颤等。备注：见生理科学实验教程140页4. 利多卡因对何种心律失常疗效最好？为什么？ 答：利多卡因属于IB类的抗心律失常的药物，可抑制浦肯野纤维钠离子的内流和促进钾离子的外流，还能减少细胞复极的不均一性，对过速型室性心律失常有良好的对抗作用。5. 如何使用Medlab系统记录大鼠心电图标准导联？如何消除干扰？ 答：1、翻开计算机，启动Medlab生物信号采集处理系统，按课本表8-8进展实验的计算机参数设置，或直接选择利多卡因的抗心律失常作用定制实验。2、将针形电极插入大鼠四肢皮下，红色负极-右前肢，黑色接地-右后肢，黄色正极-左后肢，记录一段大白鼠正常的第二联心电图。备

23、注：见生理科学实验教程140页一动物实验常用手术器械 常用动物实验手术器械有哪些？它们有何特点、用途和用法？ 答：常用动物实验手术器械有：手术刀、手术剪、手术镊、血管钳、持刀钳、组织钳、血管夹、缝合针等手术镊：有有齿和无齿两种，有齿用于夹持较坚韧的组织如皮肤、筋膜、肌健等；无齿镊用于夹持血管、神经、黏膜等。血管钳：直血管钳用于浅部组织的止血和组织别离，弯的用于深部组织的止血和组织别离组织钳：用于夹持皮肤、筋膜或将被切除的组织器官。备注：生理科学实验教程P38-40二家兔实验根本操作方法 家兔常用的给药方法有哪些？说明各方法的用具、给药途径部位、方法和给药量？ 答：家兔的常用的给药方式有；灌胃、

24、皮下注射、腹腔注射、肌内注射、静脉注射灌胃 用具：兔固定盒、14号导尿管 途径：经开口器中央小孔皮下注射 用具：6号针头的注射器途径：背部或腿部的皮下给药量：1-3mL腹腔注射 用具：6号针头的注射器 途径：在距离腹白线左侧1cm处刺入皮下，然后将针头向前推进5-10mm，再以45角穿过腹肌肌内注射 用具：6号针头的注射器 途径：针头与肌肉呈60角刺入大腿部，回抽，无血可注入药液 给药量：不超过1 mL静脉注射 用具：5或6号针头的注射器 途径：耳缘静脉顺血管平行方向深入1cm，备注：生理科学实验教程P31-32简述家兔耳缘静脉注射麻醉的操作方法及其考前须知？ 答：操作方法：操作的部位剪去或把

25、去被毛，用手压迫静脉近心端，适当用手拍弹击穿刺部位，或用水、凡士林涂抹，静脉即显露。操作者以左手轻轻向远端牵拉，以固定皮肤和静脉。右手持注射器，针与皮肤呈一定角度进针，并顺血管平行方向深入约1cm。假设针入血管内，可见回血。此时放松静脉近心端的压迫，左手拇、食指固定紧针柄在皮肤上的位置，右手推药应无阻力，也无漏出，即成功。考前须知：1麻醉剂的用量，除给予常用的剂量外，还应考虑个体对药物耐受性不同，而且体重与所需剂量的关系也并不是绝对成正比的。2. 动物在麻醉期体温下降，要采取保温措施。如随时观察体温变化，可在动物肛门插入体温计。3. 静脉注射必须缓慢，同时观察肌肉紧*性、角膜反射和对皮肤夹捏的

26、反响。当这些反响明显减弱或消失时，立即停顿注射。4. 做慢性实验时，在寒冷的冬季，在注射前应将麻醉剂加热至动物体温水平。5麻醉时必需保持动物气道的通畅。一旦出现麻醉过深的情况，应立即采取人工呼吸等抢救措施。备注：生理科学实验教程P16-17家兔常用的采血方法有哪些？说明各方法的采血部位、方法和特点？ 答：一耳中央动脉采血家兔耳中央有一条较粗，颜色较鲜红的中央动脉，采血时用左手固定兔耳，右手持连有6号针头的注射器，在中央动脉的末端沿动脉平行地向心脏方向刺入动脉，即可抽血。注意不要再近耳根部进针，因为家兔耳根部组织较厚，血管游离，位置较深，易刺透血管造成皮下出血。采血后用棉球压迫止血。二耳缘静脉采

27、血家兔耳缘静脉采血的部位和姿势与耳缘静脉注射一样。固定家兔后，选择静脉较清晰的部位，用酒精棉球涂搽局部，或用手指压迫耳根部，使血管扩*，持连有6号针头注射器沿耳缘静脉向心脏方向刺入，即可采血。也可以用刀片在血管上切一小口，让血液自然流出。采血后用棉球压迫止血。三颈动脉采血当需要大量，定时采血时可选择颈动脉采血。颈动脉采血即做一颈动脉插管，用动脉夹或三通管控制动脉导管的开启与关闭。根据实验的需要可反复取血，方便而准确。缺点是该动物只能利用一次。四心脏采血家兔的心脏采血一般不需要手术，方法比拟简单，所以也较常用。采血时将家兔仰卧位固定，用左手触摸左侧第3-4肋间，选择心脏搏动最明显处，一般在胸骨左

28、缘外3mm处将注射针头垂直刺入第3-4肋间隙。当针头刺入心脏位置正确时，由于心脏搏动的力量，血液会自动进入注射器，也可以抽吸。生理科学教程p35-36家兔常用的安乐死方法有哪些？ 答：一，颈椎脱臼法 二，空气栓塞法 三，大量放血法 四，断头法 五，药物法生理科学教程 P36-37三家兔急性实验常用手术 6举例说明组织切开的部位和大小、采用的执刀方法和考前须知？ 答：组织切开时首先要根据手术目确实定手术切口的部位和大小，如要进展气管插管应选择颈部正中皮肤，上起甲状软骨，下达胸骨上缘，切口长度约3-4cm。股部手术应选择股动脉明显的股三角区，切口长度约4-5cm。下腹部手术应选择耻骨联合上缘0.5

29、cm处，沿腹白线切开腹壁，长度视手术需要而定。长期动物实验选择切口时，还应注意选择易于敷料，导管包扎和固定的部位，防止手术后动物活动时被碰撞，摩擦而脱落。 其次，要根据不同部位的手术切口采用不同的执刀方法。如切开腹部，颈部或股部皮肤，应采用执弓式执刀法。切割短小的切口和一些精细的操作，应采用执笔式执刀法。向上挑开的操作，应采用反挑式执刀法。 切开动物的皮肤前，应先将动物的被毛剪去，剪毛*围略于切口长度。为防止剪伤皮肤，可一手将皮肤撑平，另一只手持剪毛剪平贴于皮肤，逆着被毛的朝向剪，剪下的毛应及时放入盛水的杯中浸湿，以免到处飞扬。切开时用左手拇指和示指撑平皮肤，使切口部位的皮肤拉紧，使其平坦，紧

30、*，固定。刀刃与切开的组织要垂直，以一次性切开为佳。组织要逐层切开，并以按皮肤纹理或各种组织纤维的方向切开为佳。组织的切开还应选择无重要血管及神经横贯的地方，以免损伤血管和神经。生理科学教程 p217组织别离的目的是什么？常用的组织别离方法有哪两种？说明其用法及考前须知？ 答：组织别离的目的在于充分显露深层的组织或血管，便于其它手术操作。组织别离要根据不同部位手术的需要采用不同的别离方法。常用的别离方法有两种，一种是用刀或剪作锐性别离，用割、剪的方式将组织别离，该方法常用于致密组织如皮肤、韧带、筋膜等的别离。一种是用止血钳、手指或刀柄等将组织推开或牵拉开的钝性别离，该方法多用于皮下组织、肌肉筋

31、膜间隙等疏松组织的别离。别离要沿着组织间隙进展，这样易于别离，且出血少，视野干净、清楚。肌肉的别离宜顺应肌纤维方向作钝性别离，假设需要横行切断别离，应在切断处上下端先夹两把止血钳，切断后立即结扎两断端，以防止肌肉中血管出血。神经、血管的别离宜顺应其平行方向别离，要求动作轻柔、细心，切忌横向过分拉扯，以防断裂。8止血方法一般有哪几种？答：一般的止血方法有压迫止血法、钳夹止血法、结扎止血法、药物止血法、烧烙止血法等。 9简述气管插管的目的、主要操作步骤和考前须知？答：在许多动物手术中，为了保持动物的呼吸道通畅，减少死亡率，常作气管插管。气管内插管还可用于气管内给药的治疗研究。家兔、大鼠、小鼠等小动

32、物需要气管插管时，常采用气管切开后插管。以家兔为例，操作方法如下：先将家兔麻醉，仰卧位固定于手术台上，颈部去毛后，用手术刀在颈部自甲状软骨下缘正中线向下作长约3cm5cm的纵行切口，用血管钳或刀柄钝性别离筋膜和左、右胸骨舌骨肌，暴露气管。别离时，不可用力过大，以免损伤血管和气管。别离、止血后，再用组织钳将皮下组织、肌肉组织向颈部两侧拉开，充分显露气管，用血管钳在其下穿一条较粗的棉线备用。在暴露的气管中段第三或第四软骨环上切开气管管径的1/3，用剪刀向头端作一纵向呈倒T形的切口，此时气管内如有血液或分泌物，要用棉球或干纱布揩净，以保证呼吸道通畅，再用镊子夹住T形切口的一角，将适宜口径的气管导管由

33、切口向胸部方向插入气管腔内，用棉线在软骨环之间进展结扎，并将棉线固定于Y形气管导管分叉处，以防气管导管脱落。 0血管插管的目的是什么？简述颈总动脉插管和颈外静脉插管的主要操作步骤和考前须知？ 答：动物实验中往往需要反复采血、给药、输液等，因此要进展血管内插管。血管内插管操作方便，易于固定，通道维持时间长。动物实验中血管内插管最常选用的血管是颈总动脉、颈外静脉、股静脉、股动脉，这些血管分布较表浅，管径比拟大，容易识别。颈总动脉位于气管两侧，其腹面被胸骨舌骨肌和侧面斜行的胸锁乳突肌遮盖。颈部皮肤切开后，别离胸骨舌骨肌和胸锁乳突肌之间的结缔组织，在肌缝下找到呈粉红色的血管，用手指触之有搏动感，即为颈

34、总动脉。别离一段颈总动脉周围的结缔组织，注意勿损伤血管和神经，为了便于插管，颈总动脉应尽量别离得长一些。插管时先在颈总动脉下面穿两根结扎线，一根结扎颈总动脉远心端，一根备用，在离远心端结扎线23cm处，用动脉夹夹住近心端的血管，然后用左手拇指及中指拉住远心端结扎线头，示指从血管背后轻扶血管，右手持锐利的眼科剪，使之与血管呈45度角，在紧靠远心端结扎线处向心一侧，剪开动脉壁管径的1/3最好一次剪成，将导管以其尖端斜面与动脉平行地向心脏方向插入动脉内，用备用结扎线扎紧导管并打结固定，防止导管滑脱，一切就绪，最后再翻开动脉夹。颈总动脉插管主要用于测量颈总动脉血压或取血。动物的颈外静脉较粗大，是头颈部

35、的静脉主干，在颈部两侧皮下表浅部位。切开颈部皮肤后，用手指在皮肤外面向上顶起，即可见到呈暗紫色的颈外静脉，将静脉周围的皮下组织略作钝性别离，即可进展插管。与动脉插管不同的是，静脉插管应先用静脉夹夹住血管的近心端，待血管膨胀后再结扎远心端血管，这样便于剪口。插入方法与颈总动脉插管一样。颈外静脉插管可用于静脉给药、输液和测量中心静脉压。动物股动脉和股静脉最表浅的部位在后肢内侧的股三角区。作皮肤切开前，先用手指在腹股沟下方触摸股动脉搏动，辨明血管走向，局麻或全麻后，再用手术刀以此为中点沿血管行走方向切开皮肤和皮下组织，切口长约4cm5cm，然后将切开、别离的皮肤向外侧拉开，即可见到浅层的缝匠肌和耻骨

36、肌，股动脉、股静脉和股神经在此处同在一个血管神经束内。用血管钳在耻骨肌和缝匠肌交点处轻轻地沿缝匠肌内侧缘向上下别离，并将别离的缝匠肌向外拉开，其下方即可见深筋膜包围着的血管神经束，股静脉位于内侧，股动脉位于中间偏后，股神经位于外侧。用血管钳小心别离血管神经之间的结缔组织，并在需要插管的血管下穿两根结扎线备用。股动脉插管时，先将股动脉远心端用线结扎，再用动脉夹夹住近心端，阻止血流，牵引此线，在贴近远心端结扎处剪开血管，向心插入动脉导管，结扎固定即可。股静脉插管时，方法根本与股动脉插管一样，但因静脉于远心端结扎后静脉塌陷呈细线状，较难插管，可试用静脉充盈插管法，即在股静脉近心端用静脉夹夹住，活动肢

37、体使股静脉充盈，再将股静脉远心端结扎，近心端结扎线打一活扣，待剪口插入导管后，迅速扎紧固定。血管插管前，导管内要根据实验需要充满抗凝溶液或生理盐水，并连接在三通管或其它实验装置上。确认通畅无误后，将导管暂时夹关闭，插入完成后再翻开。1简述输尿管插管的目的、主要操作步骤和考前须知？ 答：动物实验中往往需要反复采血、给药、输液等，因此要进展血管内插管。血管内插管操作方便，易于固定，通道维持时间长。动物实验中血管内插管最常选用的血管是颈总动脉、颈外静脉、股静脉、股动脉，这些血管分布较表浅，管径比拟大，容易识别。颈总动脉位于气管两侧，其腹面被胸骨舌骨肌和侧面斜行的胸锁乳突肌遮盖。颈部皮肤切开后，别离胸

38、骨舌骨肌和胸锁乳突肌之间的结缔组织，在肌缝下找到呈粉红色的血管，用手指触之有搏动感，即为颈总动脉。别离一段颈总动脉周围的结缔组织，注意勿损伤血管和神经，为了便于插管，颈总动脉应尽量别离得长一些。插管时先在颈总动脉下面穿两根结扎线，一根结扎颈总动脉远心端，一根备用，在离远心端结扎线23cm处，用动脉夹夹住近心端的血管，然后用左手拇指及中指拉住远心端结扎线头，示指从血管背后轻扶血管，右手持锐利的眼科剪，使之与血管呈45度角，在紧靠远心端结扎线处向心一侧，剪开动脉壁管径的1/3最好一次剪成，将导管以其尖端斜面与动脉平行地向心脏方向插入动脉内，用备用结扎线扎紧导管并打结固定，防止导管滑脱，一切就绪，最

39、后再翻开动脉夹。颈总动脉插管主要用于测量颈总动脉血压或取血。动物的颈外静脉较粗大，是头颈部的静脉主干，在颈部两侧皮下表浅部位。切开颈部皮肤后，用手指在皮肤外面向上顶起，即可见到呈暗紫色的颈外静脉，将静脉周围的皮下组织略作钝性别离，即可进展插管。与动脉插管不同的是，静脉插管应先用静脉夹夹住血管的近心端，待血管膨胀后再结扎远心端血管，这样便于剪口。插入方法与颈总动脉插管一样。颈外静脉插管可用于静脉给药、输液和测量中心静脉压。动物股动脉和股静脉最表浅的部位在后肢内侧的股三角区。作皮肤切开前，先用手指在腹股沟下方触摸股动脉搏动，辨明血管走向，局麻或全麻后，再用手术刀以此为中点沿血管行走方向切开皮肤和皮

40、下组织，切口长约4cm5cm，然后将切开、别离的皮肤向外侧拉开，即可见到浅层的缝匠肌和耻骨肌，股动脉、股静脉和股神经在此处同在一个血管神经束内。用血管钳在耻骨肌和缝匠肌交点处轻轻地沿缝匠肌内侧缘向上下别离，并将别离的缝匠肌向外拉开，其下方即可见深筋膜包围着的血管神经束，股静脉位于内侧，股动脉位于中间偏后，股神经位于外侧。用血管钳小心别离血管神经之间的结缔组织，并在需要插管的血管下穿两根结扎线备用。股动脉插管时，先将股动脉远心端用线结扎，再用动脉夹夹住近心端，阻止血流，牵引此线，在贴近远心端结扎处剪开血管，向心插入动脉导管，结扎固定即可。股静脉插管时，方法根本与股动脉插管一样，但因静脉于远心端结

41、扎后静脉塌陷呈细线状，较难插管，可试用静脉充盈插管法，即在股静脉近心端用静脉夹夹住，活动肢体使股静脉充盈，再将股静脉远心端结扎，近心端结扎线打一活扣，待剪口插入导管后，迅速扎紧固定。血管插管前，导管内要根据实验需要充满抗凝溶液或生理盐水，并连接在三通管或其它实验装置上。确认通畅无误后，将导管暂时夹关闭，插入完成后再翻开。2急性动物实验手术中，如何进展切开、别离、止血和插管等手术操作？ 答：备注：生理科学教材P21p253常用的手术缝合方法有哪几种？ 常用的手术缝合方法有：连续缝合结节缝合，褥式缝合，连续缝合，荷包缝合等。连续缝合是将缝线穿过切口两侧边缘即行打结，常用于皮肤、皮下组织、黏膜或筋膜

42、的缝合褥式缝合有垂直和平行两种，为两个相反方向而连接得连续缝合，可将切口边缘外翻，常用于松弛部位的皮肤或血管缝合连续缝合从切口的一段开场，先做以连续缝合，不剪断线，用同以缝线做连续缝合至切口另一端再行打结。在最后打结时，缝合针穿出后应留最后一个结节的另一边作为打结用。常用于腹膜及胃肠道吻合口内层缝合荷包缝合即做环状的浆肌层连续缝合，常用于胃肠小的造口包埋，使之内翻缝合备注：生理科学教材P25p26实验四 1试述引导蛙坐骨神经干复合动作电位的细胞外记录法。据此记录方法说明神经干双相动作电位和单相动作电位的形成原理。答：1、开机，启动medlab生物信号采集处理系统2、将两个引导电极分别与计算机C

43、h1、Ch2通道相连，刺激电极与刺激输出连接，电极另一端插入标本屏蔽盒的对应电极插座。 3、标本放置：将制备好的坐骨神经标本从任氏液中取出，放置于神经屏蔽盒的电极上，注意将神经的近中枢端置于刺激电极上，远中枢端置于引导电极上，放置过程中不要使神经牵拉、折叠、缠绕。 4、刺激器参数设置：在“肌肉神经实验选择实验工程中选择“神经干动作电位引导，单击屏幕左下角“设置刺激器参数放大框，适当调节刺激器参数以获取理想波形。 5、结果记录与计算：当给予阈上刺激，神经干产生动作电位。神经干兴奋传导速度测定：输入两电极距离将自动显示结果。神经兴奋不应期测定：分程控或非程控两种，可任意选择。 6、实验标记：选择编

44、辑菜单中神经干动作电位标记备用，缺乏之添加。实验过程中用鼠标左键选标记，右键做标记。 7、实验完毕时，单击工具栏“按钮，如果你在实验中启动了红色“记录存盘键，此时会弹出一个存盘对话框，提示你给刚刚记录存盘的实验数据输入文件名。 8、数据整理：选择反演数据翻开文件，剪辑典型波形存放在剪辑板，排列整齐，选用50%比例打印，粘贴在实验报告上。原理 神经纤维的动作电位是神经兴奋的客观标志；神经干由很多兴奋性不同的神经纤维组成。神经干动作电位是由许多这种兴奋性不同的单根神经纤维的动作电位综合成的复合性电位变化。因此，不同于单根神经纤维的动作电位，神经干动作电位的电位幅度在一定*围内可随刺激强度的增加而加

45、大。 兴奋部位的膜外电位负于静息部位；当神经冲动通过后，该部位的膜外电位又恢复到静息水平。神经干兴奋过程所发生的这种膜电位变化称神经干动作电位。如果两引导电极置于正常完整的神经干外表，当神经干一端兴奋后，兴奋波先后通过两个引导电极处，可记录到两个方向相反的电位偏转波形，称为双相动作电位。如果两个引导电极之间的神经组织有损伤，兴奋波只通过第一个引导电极，不能传导至第二个引导电极，则只能记录到一个方向的电位偏转波形，称为单相动作电位2实验中互换第2通道引导电极位置后，观察神经干动作电位有何变化？此操作的目的是什么？见于生科实验问题解答7.1的第4题3神经纤维的动作电位是“全或无的,而实验中为什么见

46、到动作电位在一定*围内随刺激强度的增加而增加答：单根神经纤维的动作电位具有“全或无现象，即不管使用何种性质的刺激，只要到达一定的强度，所引起的动作电位的波形和变化过程都是一样的，在刺激强度超过阈刺激以后，即使再增加刺激强度，也不能使使动作电位的幅度进一步加大。而神经干是由许多粗细不等的有髓和无髓神经纤维组成，故神经干动作电位跟单根神经纤维的动作电位不同，它是一种由许多神经纤维动作电位合成的综合性电位变化，是一种复合动作电位。另外，本实验采用的细胞外记录动作电位的方法，与细胞内记录也不同。所以，神经干动作电位的幅度在一定*围内可随刺激强度的增加而增大。备注：生理学教材P76-774神经干双相动作

47、电位的上、下两相幅值是否一样？为什么？见于 生科实验问题解答7.1的第2题5本实验所测出的动作电位传导速度能否代表组成该神经干的单个神经纤维的传导速度？神经纤维的传导速度与哪些因素有关？见于 生科实验问题解答7.1的第3题6简述制备蛙坐骨神经干标本的操作步骤及考前须知。答：制备蛙坐骨神经干标本的操作步骤：破坏脑和脊髓剪去躯干上部及内脏剥皮及别离两侧后肢别离坐骨神经考前须知：制备的蛙坐骨神经干标本应尽可能长些，尽量防止损伤;在别离的过程中要把神经周围的结缔组织取出干净，尽量防止用金属器械碰神经，也不要过度牵拉神经，同时经常滴加林格液，使神经保持湿润。备注：生理学教材P79-81 7本实验应用Me

48、dlab系统记录神经干动作电位时，系统采用什么显示模式？采用什么刺激模式？刺激参数“波宽指什么？调节刺激的“延时参数有何作用？ 答：系统采用示波器的显示模式；采用主周期刺激；刺激参数“波宽指动作电位由r1传到r3所需的时间t=t2t1也可用两个电位峰峰值间的距离测得。其中t1是记录r1，r2电极引导的最大动作电位，测量此时动作电位的潜伏期从刺激伪迹起始点到动作电位的起始点间的时间，t2是记录r3，r4两电极引导的最大动作电位，测量此时动作电位的潜伏期调节刺激的“延时参数有何作用？这个问，不会做备注：生理学教材P788在实验记录中，如何寻找神经干动作电位的阈刺激和最大刺激强度？据此结果可说明神经

49、干动作电位与刺激强度有何关系？为什么？答：启动刺激器，从零开场逐渐增加刺激强度。当强度到达刚能引起微小动作电位时，此强度为阈刺激。继续增加刺激强度，可见双相动作电位随刺激强度的增加而增大，当刺激强度到达一定数值时，神经干动作电位不再随刺激强度的增加而增大，这时的刺激强度称为最大刺激强度。 神经干动作电位在阈刺激和最大刺激强度之间可随刺激强度的增强而增大。实验五 一药物半数致死量LD50的测定实验 什么是LD50和ED50 测定其有何意义 见于生科实验问题解答10.1的第1题什么是治疗指数？评价药物平安性的大小还有哪些指标？见于生科实验问题解答10.1的第2题 普鲁卡因和尼可刹米产生毒性作用的表

50、现及其机理如何 见于生科实验问题解答10.1的第4题本实验采用改良寇氏法和序贯法测定药物半数致死量LD50，说明它们的优缺点？在实验操作时应注意哪些问题？答：改良寇氏法，计算简便，准确性好，又可计算多种参数，缺乏之处是实验所需动物数较多，使应用受到一定的限制。 序贯法，优点是所需动物较少，比拟节省，缺点是必须逐个动物进展实验，实验时间较长，且不能计算其他参数，因此不适用于作用出现较慢和需要获得较多参数的药物。 考前须知：1、要对实验动物进展随机化分组。2、各组药物浓度千万不能搞错，给药剂量要准确。3、注意选择正确的给药位置，进针深浅要一致 对于一种完全陌生的新药,如何测定其ED50和LD50

51、见于生科实验问题解答10.1的第3题二生理科学实验的实验设计 6实验设计的主要任务是什么？它包括哪些要素和原则？ 答：以大量的实验尤其是动物实验为根底，研究正常的、疾病状态下的以及使用药物以后的生物体功能活动变化及其规律。 三大要素：实验对象、处理因素、观察指标。生理科学实验教程P154 三大原则：对照原则、随即原则、重复原则。生理科学实验教程P1567对照有何作用？有哪些对照形式？如何理解这些对照形式？ 答：作用：确定处理因素对观察指标的影响。 对照形式：空白对照：又称正常对照，是指在不加任何处理的“空白条件下或仅给予抚慰剂或抚慰措施进展观察对照；自身对照：是指对照与实验据在同一受试动物身上

52、进展；组间对照：不专门设立对照组，而是几个实验组、几种处理方法之间相互对照； 标准对照：指用标准值或正常值最为对照，或者在所谓标准的条件下进展试验对照。实验对照：指在*种有关的实验条件下进展观察对照。备注：生理科学实验教程P1568随机化的作用是什么？常用随机化的方法有哪些？ 答：作用;1尽量是抽取的样本能够代表总体，减少抽样误差。2使各组样本的条件尽量一致，消除或减少小组间人为的误差，从而使处理因素产生的效应更加客观，便于得到正确的实验结果。 方法：抽签法、随机数字表法、随机化分组表法备注：生理科学实验教程P1579重复的作用是什么？在实验设计时，通常对计量资料和计数资料的样本数有何要求？

53、答：1可以估计抽样误差的大小，因为抽样误差的大小与重复次数成反比。2可以保证实验结果的可重复性再现性3要求：计量资料的样本数每组不应少于5例，以10到20例为好。计数资料的样本则需要每组不小于30例。备注：生理科学实验教程P158实验六 离体蛙类心脏灌注及药物的影响 实验中向蛙心插管中等量换入0.65NaCl溶液，其目的是什么？蛙心的活动会发生什么样的变化？为什么？ 见于生科实验问题解答7.2的第1题在蛙心插管内滴入0.025毒K药物后，蛙心的活动会发生什么样的变化？为什么？ 见于生科实验问题解答7.2的第2题3在蛙心插管内滴入1KCl溶液后，蛙心的活动会发生什么样的变化？为什么？ 答：变化：

54、兴奋性降低，心肌收缩性减弱，原因：参加1KCl使细胞外的k离子浓度明显增高，则膜电位显著减低。局部钠通道失活，使兴奋性降低；细胞外k离子浓度增高抑制了复极化2期时钙离子内流，使心肌细胞内钙离子浓度降低，心肌收缩性减弱答案仅属参考4在蛙心灌注实验中，氯化钙与肾上腺素的加强心肌收缩作用有何不同？参加氯化钙溶液后，可增加肌钙蛋白对钙的亲和力，使活化横桥数目增多，心肌收缩增强。肾上腺素对心脏的受体有冲动作用，使心肌收缩性增强，心率加快。答案仅属参考5乙酰胆碱对蛙心脏活动有何影响？为什么？答：乙酰胆碱可使心率减慢、传导减慢和心肌收缩力减弱。乙酰胆碱可与心肌细胞M胆碱能受体结合，使腺苷酸环化酶受抑制，因此

55、细胞内AMP浓度降低，肌质网释放钙减少，从而使心肌收缩能力降低。对于窦房结细胞，乙酰胆碱与细胞膜上的M受体结合后，能通过一种GK蛋白激活细胞膜上的一种钾通道k通道，使细胞内流向细胞外，于是最大复极电位变得更负，故自动去极化到达阈电位的时间变长，窦房结的自律性频率降低，心率减慢。 6改变蛙心灌注液的pH值参加酸或碱后，是通过什么原理影响蛙心收缩活动的？ 见于生科实验问题解答7.2的第3题实验七 一有机磷酸脂类中毒及其抢救 家兔有机磷酸酯类中毒有何病症？为什么？ 见于生科实验问题解答9.5的第1题P12阿托品与解磷定分别能缓解有机磷酸酯类中毒的哪些病症？为什么？见于生科实验问题解答9.5的第3题

56、P133有机磷酸酯类中毒者死亡的原因是什么？如何防治？见于生科实验问题解答9.5的第2题 P12二红细胞渗透脆性和化学性溶血实验 4何谓红细胞的渗透脆性和渗透抵抗力？怎样表示？ 答：红细胞在低渗溶液中发生破裂、解体的特性能力称红细胞的渗透脆性红细胞耐受一定浓度的低渗溶液而不发生破裂、解体的特性能力渗透抵抗力用血液红细胞的最大抵抗力表示备注：生理科学实验教程P1015测定红细胞渗透脆性的原理是什么？ 见于生科实验问题解答11.3的第1题 P166何谓红细胞的最小渗透脆性和最大渗透脆性？如何判断？ 见于生科实验问题解答11.3的第6题 P167怎样判断红细胞在低渗溶液中发生的溶血？局部溶血中首先溶

57、解的是什么样的红细胞？ 见于生科实验问题解答11.3的第2、4题 P16产生渗透性溶血和化学性溶血的原理有什么不同？见于生科实验问题解答11.3的第3题 P16实验八 家兔呼吸运动的调节实验 根本概念：肺牵*反射、腹式呼吸、化学感受器、生理无效腔 答：腹式呼吸 ：膈肌舒缩时，腹部随之起伏，以膈肌活动为主的呼吸运动称为腹式呼吸或膈式呼吸肺牵*反射 ：由肺扩*或缩小引起吸气抑制或兴奋的反射，称为肺牵*反射。生理无效腔：解剖无效腔与肺泡无效腔之和成为生理无效腔化学感受器：感受机体内、外环境化学刺激的感受器的总称2动物实验中，造成缺O2和CO2增多时对呼吸运动有何影响？为什么？ 见于生科实验问题解答8

58、.1的第1题 P43动物实验中，静脉注射乳酸对呼吸运动有何影响？ 见于生科实验问题解答第2题 P14动物实验中，使用长管呼吸时对呼吸运动有何影响？为什么？ 见于生科实验问题解答8.1第3题 P55动物实验中，切断家兔双侧迷走神经后对呼吸有何影响？为什么？ 见于生科实验问题解答8.1的第2题 P56切断家兔双侧迷走神经前、后进展打气和抽气操作时，所得实验结果有何不同？为什么？ 实验九 磺胺类药物药动学参数的测定实验 根本概念及其特点：一级动力学消除、零级动力学消除、二室模型、双相指数消除曲线 见于P30-32药动学参数的概念及意义：分布半衰期、消除半衰期、曲线下面积、表观分布容积、血浆去除率答：

59、1分布半衰期：药物浓度效应下降一半所需要的时间。2消除半衰期：指血浆药物浓度下降一半所需要的时间。3曲线下面积：4表观分布容积：5血浆去除率：备注：3、4、5的答案见于生科实验问题解答10.2的第2题 P14。3在磺胺类药物药动学参数测定实验中，加三氯醋酸的目的是什么？为什么要设置标准管？绘制时量曲线有何用途？ 见于生科实验问题解答第3、4题 P14用半对数坐标纸作时量曲线图时应注意哪些问题？ 6简述磺胺类药物药动学参数的测定步骤。 答：1)取家兔1只，称重后固定在手术台上，颈部手术区剪毛，用1%盐酸普鲁卡因局部浸润麻醉，手术后进展气管插管和颈总动脉插管，动脉插管外套三通管以备取血用。2)耳缘

60、静脉注射器0.4%肝素生理盐水1ml/kg.3)准备好离心管理10支，各参加7.5%三氯醋酸溶液2.7ml待用。4)翻开三通管，用一支干净试管取空白血样约1ml,再从中分别精细吸取0.2ml放入1 号管标准管中，充分摇匀，然后快速静脉注射10%磺胺嘧啶钠3ml/kg,于注射后.15.30.45.60.90min时由动脉取血，精细吸取0.2ml血样加到含有2.7ml三氯醋酸溶液的3-10号离心管中,标准管中另入0.1%磺胺嘧啶钠标准液0.1ml,基他各管参加0.1 ml摇匀.5).将上述各管溶液离心5min(3000r/min),然后取上清溶1.5ml,参加0.5ml,摇匀，再参加0.5%麝香草