膜片钳技术(研究生平台课)课件

1、膜片钳技术讲座 哈尔滨医科大学生理学教研室 李玉荣 在一书的序言中写道： 通常，一篇非常专业的科技论文公开发表后，若被其他的论文引用数次，其作者就会感到欣慰；假如被别的作者引用十次以上，就可称得上是一篇好论文；要是有幸被引用几十上百次，甚至几百次，那它无疑是一篇高质量杰作，通常发表在权威的专业期刊或者是著名的科学杂志上，如“Nature” ，“ Science”， “ Cell”和“ Neuron”等。 然而，你是否知道？有一篇论文，它的作者当时还不太有名，刊登的杂志也不算顶级，可是论文发表20年来，已神话般地被世界各地的科技工作者引用了一万二千余次，遍及生物医学的众多领域，而且近年来还在以平

2、均每年约一千多篇的速度继续被引用，它就是由Hamill，Marty，Neher，Sakmann和Sigworth等五人于1981年发表在欧洲生理学杂志（Pflugers Archiv.）上的著名论文。在此之前五年，身为德国科学家的Neher和Sakmann共同发明了膜片钳技术（1976），并于15年后共同荣获1991年诺贝尔 生理学或医学奖。膜片钳技术的作用和影响由此可见一斑。生物电现象研究简史18世纪末，意大利医生和生理学家Galvani首先在生物体(蛙)发现了生物电现象。1902年，Bernstein提出了细胞生物电产生的膜学说。1936年，英国剑桥Young描述了头足软体动物枪乌贼支配其

3、外套膜肌的巨大轴突直径可达1mm。1939年，Hodgkin和Huxley 把枪乌贼巨轴突用于细胞内膜电位的记录，首次记录到膜两侧的静息电位。这一工作的意义在于实验测定的静息电位与根据细胞膜内外钾浓度经Nernst公式计算的钾平衡电位非常接近，从而有力地支持了Bernstein关于静息状态下细胞膜对钾离子有选择性通透的膜学说。1955年，Hodgkin和Keens在研究神经轴突膜对钾离子通透性时发现，放射性钾跨轴突膜的运动很像是通过许多狭窄孔洞的运动，并提出了“通道”（channel）的概念。细胞膜对离子通道的通透性（膜电导）的直接测定是从应用电压钳（voltage clamp）技术以后开始的

4、。 电压钳技术是1949年Cole及Marmont设计的，后经Hodgkin、Huxley 和Katz等加以改进，并成功地应用于枪乌贼巨轴突动作电位期间离子电流的研究。 他们直接测定了膜电流并分析了电流的离子成分，推算出动作电位期间钠电导和钾电导的变化。极大的推动离子通道的研究工作，其中的基本概念至今仍被沿用。鉴于Hodgkin、Huxley 和Eccles对通道研究的突出贡献，获得1963年诺贝尔医学或生理学奖。A.L.Hodgkin 19141998A.F.Huxley 1917 1972年Katz通过记录神经肌接头终板膜上乙酰胆碱噪声，发现ACh的量子性释放引起的终板电位及微终板电位，指

5、出其与离子通道的电导、开放时间及开放频率的对应关系，获1970年诺贝尔生理学或医学奖。 1976年Neher和Sakmann完成电极与膜之间50M的封接，首次记录到去神经蛙肌纤维膜上的单通道电流，为证实生物膜离子单通道是以全或无规律、随机开放关闭的假说提供了有力依据。 1980年，Neher等利用负压吸引实现了G封接，背景噪声显著减低。 1991年膜片钳技术的创始人Neher和Sakmann荣获诺贝尔医学或生理学奖。Patch clamp Erwin Neher Bert Sakmann 1944 1942一、离子通道的概念二、离子通道的分子结构三、离子通道的分类四、离子通道的研究技术五、膜片

6、钳实验方法六、与膜片钳技术相结合的其它研究 方法一、离子通道的概念 离子通道（ion channels）是细胞上的一种特殊整合蛋白，在脂质双分子层膜上构成具有高度选择性的亲水性孔道，允许适当大小和电荷的离子以被动转运的方式通过。 离子通道是生命活动的基础，无论动物或植物、单细胞生物或多细胞生物的细胞膜上，都有离子通道存在。 离子通道的最基本功能是产生细胞生物电现象，即与细胞的兴奋性直接相关。在此基础上，才进一步派生出神经递质的释放、腺体的分泌、肌肉的运动。因此，离子通道是可兴奋细胞膜上的基本兴奋单元，具有重要的生理功能。 离子通道具有两大共同特征，即离子选择性及门控特性。前者包括通道对离子大小

7、的选择性及电荷选择性，在一定条件下，某一种离子只能通过与其相应的通道跨膜扩散，各离子通道在不同状态下，对相应的离子的通透性不同，如安静时神经细胞膜离子通道对K+的通透性比Na+大100倍，而神经兴奋时，对Na+通透性又比K+大1020倍，表明了通道对离子的选择性的差异 。 离子通道的另一特征是离子通道的门控特性，离子通道一般都具有相应的闸门，通道闸门的开启和关闭过程称为门控（gating）。正常情况下，通道大多处于关闭状态，只有在特定的条件下，通道的闸门才能开启，引起离子的跨膜转运。 一般认为，不同信号控制其开放和关闭，通道可表现为三种状态，正常情况下，通道处于备用状态，在外界因素作用下，通道

8、允许某种或某些离子顺浓度差和电位差通过膜，相当于通道开放，称为激活（activation）。通道的失活（inactivation）是与通道关闭不完全相同的功能状态。 二、离子通道的分子结构 随着生物物理学和分子生物学的迅速发展，新的研究技术的应用，特别是膜片钳片技术与分子克隆、基因突变和异体表达等技术的结合，使徘徊多年的离子通道研究迅速进入到分子、亚分子水平，人们已有能力从分子水平来确定通道的分子结构和解释离子通道的孔道特性。 电压门控离子通道的基本结构 经纯化、克隆和测定表明，离子通道蛋白是由多个亚基构成的复合体。电压门控离子通道由、等亚基构成，但不同的离子通道的组成略有差异，如钠通道由、1

9、和2亚基组成，钙通道由1、2、和亚基组成，钾通道由和亚基组成等。 在各亚基中，亚基是构成离子通道的主要功能单位，而其它亚基则只起调节作用。 亚基是一条跨膜多肽，由18002000个氨基酸组成。它包括四个跨膜功能区（），每个功能区含有约300个氨基酸，组成的6个螺旋区段（S1S6）,除S4为亲水性跨膜螺旋片段外，其余5个均为疏水性跨膜螺旋片段。在膜外侧面有连接糖基的部位和毒素的结合位点；在膜内侧则有蛋白激酶的磷酸化位点。位于S5和S6间的一段氨基酸序列部分贯穿膜内，是形成亲水性孔道而使离子选择性通过的部分称为孔道区（pore region）或P区，四个功能区围绕一个中心对称排列，P区在内组成孔道

10、内壁。S4肽段含有一些带正电荷的氨基酸残基（如精、赖氨酸），对膜电位的变化敏感，起电压感受器的作用。 当膜去极化时，每一个功能区的S4肽段做螺旋运动而使正电荷移出产生微弱而短暂的门控电流，导致通道构象变化。当四个功能区S4肽段均发生这种构象变化时，则通道便处于激活开放状态，因此，S4肽段又称为激活闸门（activation gate, m闸门）在通道开放后，很快功能区的S6与功能区的S1之间的肽链构成失活闸门（inactivation gate, h闸门），形成一“活瓣”，将通道内口阻塞，调控通道的失活过程。 钾通道根据分子生物学分类为KV和KIR两大类，分别对应于功能性分类中的外向整流和内向

11、整流钾通道。KV类又分为KV1、KV2、KV3和KV4四组，每组又按发现克隆的次序先后进一步分类，如KV0、KV1.2、KV1.5等。除KV1.4为瞬时外向钾通道（KA）外，其余在功能上都属于或接近于延迟整流钾通道。 在结构上KV类钾通道由4个亚基构成，每个亚基仅有一个功能区，由6个跨膜区段组成。因此，电压门控钾通道的一个亚基相当于钠通道和钙通道的一个跨膜区。 KIR类钾通道不同于KV类和钠、钙通道，其每个亚基只有两个跨膜肽类（M1和M2），其间由H5连接，因M1、M2和H5的序列与KV类的S5、S6相似，所以这两类钾通道可能具有相同的基本孔道结构。由于没有S4样结构，其电压门控机制可能与M2

12、上带负电荷的氨基酸残基有关。 化学门控离子通道的基本结构 当各种化学物质与化学门控离子通道相应部位结合后，会导致通道蛋白发生构型变化，引起通道开放，产生离子电流。体内这种离子通道的种类很多，主要包括各种神经递质门控离子通道、ATP敏感钾通道和钙依赖性钾通道等。 神经递质门控离子通道又称为离子通道受体，主要有乙酰胆碱门控离子通道、GABA门控离子通道及谷氨酸门控离了通道三大类。 乙酰胆碱门控离子通道 由12 五个亚基组成，呈五边形排列。每个亚基有4个跨膜区段即M14。其中M2跨膜区段中除疏水性氨基酸外，还间断出现少量的丝氨酸和苏氨酸，它们排列在螺旋的一侧，由五个亚基的M2共同构成孔道的内壁。每个

13、亚基的N端和C端都朝向膜外，其中1和2亚基N端的细胞外部分各有一个ACh结合位点，当两个ACh分子与亚基结合后，便引起通道蛋白的构象变化和通道开放，主要引起Na+内流增多。 近来研究表明，一些神经递质也可以通过与膜受体结合后，激活细胞膜内的G蛋白，通过G蛋白亚基或亚基直接调节离子通道的活动。也可以通过G蛋白耦联受体生成第二信使，进而影响离子通道的活性。三、离子通道的分类非门控离子通道 门控离子通道 电压门控性通道化学门控性通道机械门控性通道 1、非门控性离子通道 有些离子通道始终处于开放状态，离子可随时进出细胞，并不受外界信号的明显影响，这些通道称为非门控离子通道。如神经和肌肉细胞在安静状态下

14、静息电位的产生，是由于细胞膜上的离子通道允许K+自由进出细胞，而引起的K+电化学平衡电位，此种K+通道即属于非门控性离子通道。 2、电压门控离子通道 电压门控离子通道（voltage-gated ion channels）的开启或关闭受膜电位的变化决定，具有电压依赖性，同时通道往往还与电位变化的时程有关，即具有时间依赖性。这 类通道在决定细胞的兴奋性、不应期和传导性以及维持细胞正常体积等方面发挥重要作用。电压门控离子通道一般以最容易通过的离子命名，如钠离子通道、钙离子通道及钾离子通道等。 电压门控钠离子通道 钠离子通道（sodium channels，简称钠通道），是选择性地容许Na+跨膜通过

15、的离子通道。根据其对钠通道阻滞剂河豚毒素（tetrodotoxin, TTX）和-食鱼螺毒素（-conotoxin,- CTX）的敏感性不同分为神经类、骨骼肌类和心肌类钠通道三类。 电压门控钙离子通道 钙离子通道（calcium channels，简称钙通道）是选择性容许Ca2+跨膜通过的离子通道。Tsien RW等根据肌细胞和神经元电压门控离子通道对膜电位变化的敏感性，将神经元质膜电压门控钙离子通道分为T（transient）、L（long lasting）及N（neither T, nor L）三种类型，后来应用不同的毒素阻断钙电流的某种特定的成分，在神经元又增加了P（purkinje）、

16、Q和R型，共6型。 电压门控钾离子通道 钾离子通道（potassium channels，简称钾通道）是广泛存在、种类最多、最为复杂的一大类离子通道，仅电压门控钾通道就已克隆出几十种亚型，根据其电流动力学特点可分为延迟外向整流钾通道、瞬时外向钾通道和内向整流钾通道三类。 3、化学门控离子通道 化学门控离子通道（chemically gated ion channels）又称配体门控通道（ligand gated channels）。这一类通道的门控行为主要受其相应配体的控制，配体是包括神经递质、激素等各种激动剂和阻滞剂在内的多种化学因素。当激动剂与化学门控离子通道结合后，会引起通道蛋白构型变化

17、，导致通道开放，产生离子电流。神经递质门控离子通道也称为离子通道型受体，其结构中具有与神经递质特异性结合的位点，当神经递质与其结合位点结合后，将引起通道开放。神经递质门控离子通道主要包括乙酰胆碱门控离子通道、GABA门控离子通道和谷氨酸门控离子通道三大类。 4、机械门控离子通道 机械门控离子通道（mechanically gated ion channels）是由机械牵拉激活的离子通道，主要见于触觉和听觉感受器，如机械刺激作用于虾类牵张感受引起通道开放，出现Na+内流和K+外流，产生感受器电位；声波传入内耳后，引起内耳毛细胞顶端纤毛发生弯曲或偏斜，从而使毛细胞顶端机械门控通道开放，阳离子内流产

18、生听觉的感受电位。 5、其它门控离子通道除上述离子通道外，尚发现具有其它门控特性的离子通道存在，如细胞容积敏感的钾通道（Kvo l）在细胞肿胀时通道开放；Na+激活钾通道（KNa）对电压、细胞内ATP浓度及细胞内钙均不敏感，只有细胞内Na+浓度升高到20mmol/L以上时开放。 四、离子通道的研究技术 在进行细胞电生理研究中，最重要的物理学定律是欧姆定律（Ohms Law）。当电流（I）流经一电阻（R）时，会在其两端产生电位差（V），即V=IR。此时，电流与电压的关系（I-V）是一条通过原点的直线，其斜率即为该通道的电导，这是适用于线性系统的欧姆定律，而生物系统并非线性系统，只是应用欧姆定律进

19、行近似的描述。 1、电压钳技术的基本原理电压钳技术是通过一个反馈电路使膜电位保持在指定的水平，当离子通道开放产生跨膜电流，导致膜电位改变时，可通过反馈电路经微电极向胞内注入电流，补充的电流量正好等于跨膜流出的反向离子流，使膜通透性发生改变时膜电位保持不变，此时注入电流的变化就可反应膜电导或膜电流的改变。电压钳技术工作原理如示意图：2、膜片钳技术的基本原理膜片钳技术是在电压钳技术基础上，以记录通过离子通道的离子电流来研究细胞膜上单个（或多个）离子通道分子活动的电生理技术。膜片钳技术可用一根玻璃微电极同时完成膜片（或全细胞）电位的监测、钳制及通道电流的记录。 随着该技术的逐渐完善及应用，目前已成为

20、从功能角度探讨各种生理、病理生理及药物作用机制最直接、最理想的电生理学研究方法，也为多学科探讨生命活动规律、疾病与转归机理及药物作用等细胞和分子水平的研究，开辟了广泛前景。膜片钳技术是用尖端直径12m的玻璃微电极尖端与酶处理干净的细胞膜接触，通过2030cm H2O的负压吸引造成电极尖端与细胞膜形成高阻封接（10100G），使电极尖端下的小块膜片与膜的其它部分在电学上绝缘，并在此基础上固定膜片电位，监测几个m2膜片上13个离子通道活动的方法。 膜片钳技术具有1pA的电流分辨率,10 s 的时间分辨率和1 m2 的空间分辨率，从而使其成为在活体细胞上进行电生理学研究的重要手段。 3、膜片钳记录的

21、模式 根据研究需要及记录膜片的不同，膜片钳记录可形成以下四种基本模式 1.细胞贴附式（cell attached patch） 2.内面向外式（inside-out patch） 3.外面向外式（outside-out patch） 4.全细胞记录式（whole cell recording） 4、膜片钳实验系统的组建 膜片钳实验系统虽然可因研究目的不同而有所区别，但其基本组成是相同的，包括膜片钳放大器和接口，显微镜和视频监视器以及防震台和屏蔽罩等。 视频监视器温度控制系统倒置显微镜探头微操纵器模数转换器膜片钳放大器数据采集及分析软件计算机五、膜片钳实验方法 膜片钳实验方法包括：微电极的制备、

22、细胞标本的制备、高阻封接的形成、离子单通道电流的记录或全细胞记录 1、微电极的制备微电极是用拉制器由玻璃毛细管拉制而成。玻璃微电极的选材和拉制质量直接影响封接电阻及记录时的噪声大小。 （1）选材 膜片钳实验用微电极可根据不同记录模式选用不同的玻璃毛细管拉制。从玻璃毛细管材料方面,可分为软质玻璃和硬质玻璃两类。（2）拉制 膜片钳实验用微电极与细胞外记录和细胞内记录用微电极不同，其尖端较短，锥度较大，尖端直径为15m，充灌林格氏液时阻抗约15M，因此一般采用两步拉制法。第一步将玻璃软化，拉出一个长710mm、直径200400m的杆，第二步再从杆中央以较小电流拉出两根尖端锥度较大的微电极。（3）处理

23、 微电极拉制成功后，其尖端需进一步处理。这一过程包括涂硅酮树酯（sylgard coating）和热抛光（heat polish）。前者是将硅酮树酯涂于微电极尖端以外部分，然后加热使其烘干固化，达到使浸入浴液中的微电极表面呈疏水性，减小电极内部与溶液之间的电容。热抛光是在显微镜下，将微电极尖端接近热源，使电极尖端表面变得更加宽阔和光滑，同时也使粘涂到电极尖端的Sylgard被烧掉或蒸发。经热抛光处理的微电极可使高阻封接的成功率明显提高。 （4）充灌 微电极使用前要充灌电极内液，电极内液需经0.2m的滤膜或滤纸过滤。充灌时首先将电极尖端浸入电极内液，利用虹吸作用使尖端部分充满液体，然后再从电极尾

24、端充灌。在充灌中应避免电极内出现气泡，如有气泡可使电极尖端向下，轻敲管壁除去。也应避免充灌电极内液太多，否则影响实验噪声基线。 2、细胞标本的制备除脑片膜片钳和盲膜片钳法之外，实验所需标本均为具有生物活性的单个离体细胞，其来源包括急性分离、原代和传代培养的细胞。从理论上来讲，膜片钳实验用的细胞标本可来自体内各种组织细胞，只要细胞表面光滑，能与微电极尖端形成高阻封接即可。但在标本制备上，不同组织细胞间联接牢固程度不同，采用的分离方法也不完全相同。大体上包括冲洗、酶解消化或机械分离及清洗等步骤。3、高阻封接的形成 高阻封接形成与否是记录细胞离子通道电流能否成功的前提，是进行膜片钳实验的关键一步。微

25、电极尖端与细胞膜形成封接的过程，可以采用软件或刺激器发出1mV脉冲电压作用于微电极，造成膜两侧电位差发生变化，产生电极电流，再通过示波器或显示屏，观察电极电流幅度的变化来确定封接程度。在电极未入溶液之前，在显示器或示波器上可见一直线。进行高阻封接时，需注意的是：在微电极未入液之前常施以正压，使电极内有液体从电极尖端流出，防止浴液表面灰尘或溶液中粒子附着于电极尖端，影响高阻封接。电极尖端与细胞膜接触，稍加负压后电流波形变得平坦，此时，如使电极超极化，则有助于加速形成高阻封接。电极入液后封接的成功率与入浴液后的时间呈反比，电极内液中的肽类或蛋白质成分也会有碍于封接形成。 4、离子通道电流的记录 单

26、通道记录 离子单通道电流的记录是膜片钳技术的最大优势，当尖端直径为1m的玻璃微电极与细胞膜形成高阻封接后，电极尖端下的一小块膜片上，仅含有一个或几个离子通道，根据单通道电流的特征，很容易得到对某种离子有选择性通透的单一的离子通道电流。由于单通道电流大小仅为1pA（10-12A）左右，要记录到这一微小电流，除尽量降低膜片钳系统噪声及电极噪声外，良好的高阻封接是获得低噪声记录的先决条件，电阻值愈大，噪声电流愈小。 全细胞记录全细胞记录是膜片钳四种基本模式之一。尽管它记录的是细胞膜多个离子通道开放产生的宏膜电流，但由于该模式既可以对离子通道的性质和分类进行宏观性质的分析，也可以对离子通道的构造、分布

27、与功能进行微观性质的分析。还可以通过测量膜电容对细胞分泌活动进行研究，从而使其成为当前电生理研究中应用最广泛的一种模式。全细胞记录模式可用于测定在某个时间和电压情况下，离子通道电流的大小，观察其电压依赖性特征，如以膜电位为横座标，电流强度为纵座标，则可绘制出电流-电压关系曲线（I-V曲线）。在电流为零时的膜电位被称为反转电位。其大小取决于膜两侧的离子浓度及通道的离子选择性，反映了某种通道的电压依赖性及药物等因素对通道电压依赖性的影响，常作为全细胞记录模式结果分析的指标之一。此外，由于电压门控通道的电压依赖性，在膜电位出现阶梯状改变时，可以记录到一个过渡电流即尾电流（tail current）。

28、由于全细胞电流是通过每个离子通道电流的总和，而离子通道又随时间的推移呈概率性关闭，因此尾电流的强度也随全细胞电流强度的变化而按指数相关数衰减，测定尾电流强度的变化也可作为结果分析的指标之一。 钠通道在多种细胞尤其是在神经、肌肉等可兴奋细胞中广泛存在。钠通道激活可导致Na+快速内流、细胞去极化，产生动作电位的上升支，因此，钠通道的活性对细胞的功能有重要的影响。钠通道的激活是电压门控的，当细胞膜去极化至-60mV左右时，即可引起膜上大量钠通道激活。产生一迅速激活并迅速失活的内向电流，当去极化至-30 mV左右时达到最大，反转电位为+30 mV左右。当静息膜电位升至-50 mV左右，可使Na+通道完

29、全失活，不能引起钠通道开放。 钠通道电流的测定在参数设计上应使保持电位钳制在-80 mV以下，此时给予不同程度的去极化阶跃电压，则可得到钠电流，由于钠通道激活和失活均很快，因此刺激脉冲波宽常为2050 ms。为证实所测电流为钠电流，常借助于工具药，如河豚素（TTX）用于细胞外液中，可以选择性阻断钠通道。由于神经与心脏中的钠通道亚型不同。心肌钠通道对TTX的敏感度比神经低数百倍。 当膜电位钳制在-80 mV，去极化中还可能引起某些钾通道成分的激活，此时可使用钾通道阻断剂或将电极液中KC1以CsC1取代可起到抑制钾通道激活的作用。 钙通道电流的测定由于电压依赖的钙通道广泛存在于各种组织中，是兴奋时

30、钙内流的主要途径，因此研究电压门控钙通道的调节及药物对其影响是非常重要的。电压门控钙通道又分为L、N、T、P、Q及R等型，其中L型钙通道的电导最大，在心脑血管疾病的治疗中有重要意义，如二氢吡啶类钙拮抗剂就选择地作用于L型钙通道。（1）L型钙通道: 激活的膜电位较高，膜电位钳制在-50 mV以下，这样即较大程度的激活了L型钙通道，又有效的抑制了钠通道的活性;L型钙通道的激活与失活时间较长，往往需几十甚至数百毫秒，因此去极化脉冲的保持时间在200500 ms之间; L型钙通道的最大电流约在0+10 mV;反转电位为+40+50 mV左右。L型钙通道除对二氢吡啶、Verapamil以及硫氮卓酮等钙拮

31、抗剂敏感外，对某些无机离子如Cd2+也很敏感。20M Cd2+就可使钙通道活性抑制90%以上。因此常被用作全细胞膜片钳实验中的工具药。值得注意的是，L型钙通道电流测定时,可随时间产生衰减,即所谓Rundown现象。尽管许多学者进行了大量的研究，但仍不能有效地防止这一现象，严重时在10分钟之内就可使钙电流减少3050%。如不加以矫正，则直接影响结果的可靠性，尤其是给药前后的对比，因此在实验设计中，必须考虑到这一因素，并设立严格的对照组。（2）T型钙通道: 激活所需的膜电位较低,通常为-100-60 mV。此差别常用来与L型钙通道进行鉴别，如将膜电位钳制在-40 mV时，去极化只能得到L型钙电流，

32、因T型通道已被完全抑制。当有钠通道和钾通道拮抗剂存在时，膜电位被钳制在-100 mV时，进行不同程度的去极化，所得到的内向电流可分为两种成分，即低阈值（-50-40 mV）快速失活的T型钙通道电流和高阈值（-100 mV）缓慢失活的L型钙通道电流。 此外，T型钙通道对双氢吡啶类钙拮抗剂均不敏感，Cd2+对其抑制也不明显。（3）N型钙通道则仅存在于神经细胞和突触部位，这种通道激活时，所需的膜电位与T型钙通道相似，范围在-10040mV。此型电流不能被二氢吡啶类钙拮抗剂所抑制，但可被较低浓度的Cd2+所阻断。-conotoxin是其具有相对特异性的拮抗剂。P型通道也仅存在于中枢神经系统中，可被FXT（一种蜘蛛毒素）所阻断，对其它的钙通道阻断剂均不敏感。 钾通道电流的测定钾通道是亚型最多、分布最广的一大类离子通道，现在已知并具有明确功能及动力学特性的钾通道就有十多种，各种钾通道亚型的特征电流不如钠或钙通道