ELISA灰区地设置及质控方法

1、标准实用ELISA灰区的设置及质控方法ELISA测定的阳性判断值，通常是将大量阴性和阳性人群的测定数据进行统计分析后确定 的，其确定依据为判断结果的假阳性和假阴性率最低。在阳性判断值周围一定范围内之外的测定结果可归为可疑，亦即 ELISA测定的“灰区”。“灰区”的大小可用统计学方法确定。 测定结果处于“灰区”的样本，可通过确认试验或追踪检测来确定到底是阳性还是阴性。”。“灰区”的大小可用统计学方法确定？具体是怎么确定的，。 或者大概粗略的方法计算是怎么样的呢？ ？高手在哪呢ELISA “灰区”是把定量分析的正常值范围引入定性分析而建立的概念。 灰区的设置有二种：(1) C.OX (1±

2、;C) , C为该试剂的批内 C (一般在15-20%间)；(2) C.O±2S, S为实验室做室内质控 ROM So 另外，个人认为：ELISA “灰区”对于不同项目和应用的领域不同，其设置不能一概而论。根据美国疾病控制中心 (CDC对美国Ortho的抗HC检测的ELISA试剂盒进行研究，发现只有 检验Z果S/CO 3.8时，高度预示HC抗体真阳性状态；若检验结果S/CO<3.8,存在较高的假阳性。在血站系统的献血员抗 HC筛查用上述两种灰区的设置方法没有什么不可；如果临床实验室抗HC的灰区也按前者设置，势必存在较多的假阳性，如何设置灰区应该是值得研 究和商榷的。这位老师好，

3、不好意思，本人愚昧，还不是很清楚这两种方法在实际的应用， 可否举一个小例子。比如HBsAg>0.5是阳性，如果测量得吸光度是 0.4的话怎么判断，结果 是阴性，但是是有很明显颜色的。在血站系统这样的血就不敢用，怎么解决呢，我们经常遇到测量阴性但是有颜色的标本，用不同厂家的试剂或是同种试剂重复实验还是一样，又担心存在弱抗体的问题。 怎么解决呢，万分感激国内试剂测HBSAG勺cutoff值一般不会达到 0.5 ,除非不做空白。其cutoff的公式一般为 NC*2.1。我只是举例。别找问题以外的事情来说呀，我等答案等得 着急第三章ELISA技术的质量控制 概述Engall和Perlmann于1

4、971年首先建立了酶联免疫吸附试验(enzymelinked immunosorbentassay,ELISA )。随着科技的发展，ELISA在抗原、抗体、酶、固相载体及包被技术等方面都有较大的进步，其灵敏度和特异性均大大提高。由于该技术具有简便、 快速、经济等特点，因而已被广泛应用于各行业。尽管如此，ELISA在应用过程中仍然存在着许多难点，必须严格控制才能保证检测的质量。ELISA质量保证是一个复杂的过程，许多重要的环节都影响到检测的质量。现分述如下： 一、方法学的影响ELISA测定模式包括以下几种：双抗体夹心法、间接法、双抗原夹心法、IgM抗体捕捉法、竞争抑制法，其中竞争抑制法因受操作时

5、差所引起的不公平竞争等因素的影响，结果重复性较差，质量较难控制。 二、试剂因素 1.试剂的选择 免疫检测的原理均基于抗原抗体反应。由于该反应过程受多种因素的影响，如普遍存在基质效应、交叉反应等，因而检测结果难以溯源，不同方法、不同试剂之间甚至同一试剂不同批 号间结果均缺乏可比性。试剂质量在很大程度上决定了检测的水平，因此在引入新项目之前必须对试剂进行严格的评估。试剂的评估有以下几个步骤：确定开展该项目的必要性；了解该项目现有的检测方法和原理；在了解试剂的组成基础上选择多家试剂盒进行比较， 判断标准首选参考方法或参考物质，其次为临床的满意度及权威机构的报告如各级室间质量评价、CDG艮告等；定期对

6、检测结果进行追踪反馈直至最终认可该试剂。2.试剂的准备不同批次的ELISA试剂在制作过程中很难保证质量完全一致，即使是通过批批检的项目其检测结果也存在差异，因此必须选择和订购长批号的试剂，并保证保存条件。严格执行这一标准可以避免因试剂批号改变而重新建立质控体系及重新评估试剂的复杂过程，并且能够保证结果的稳定性；对于效期短、使用率低的试剂，应当小量分装，每次使用则取分装部分即可， 避免反复冻融造成试剂的失效。试剂使用前必须平衡至室温，否则会影响检测下限。 未用完的室内质控品及本次不需使用的试剂应密封并及时放回冰箱保存。三、样本因素标本干扰因素包括内源性干扰因素和外源性干扰因素，前者包括类风湿因子

7、、补体、异嗜性抗体、自身抗体、溶菌酶等，后者包括标本溶血、标本被细菌污染、标本贮存时间过长、标 本凝固不全、冷冻标本的反复冻融等。 其中外源性干扰因素是我们在检测过程中可以避免也 是必须避免的因素，而避免内源性因素的干扰则主要通过选择合适的试剂盒。在临床中遇到少见的疑难病例时应当考虑到内源性干扰因素的存在。以下对外源性干扰因素进行简要说 明：1 .标本溶血 要注意避免出现严重溶血。血红蛋白中含有血红素基团，其具有类过氧化物的活性，因此，在以辣根过氧化物酶( horseradish peroxidase,HRP )为标记酶的 ELISA测定 中，如果血清标本中血红蛋白浓度较高， 则其就很容易在温

8、育过程中吸附于固相， 从而与后 面加入的底物反应显色。2 .标本被细菌污染标本的采集及血清分离要注意尽量避免细菌污染。细菌菌体中除可能含有内源酶对测定产生非特异性干扰外，还可能对抗原抗体等蛋白产生分解作用。另外标本在保存中出现浑浊或絮状物时，应离心沉淀后取上清检测。3 .标本贮存时间过长 标本在低温下保存时间过长，IgG可聚合成多聚体，在间接法 ELISA 测定中会导致本底加深、甚至出现假阳性结果。通常情况下血清标本可在28c下保存l周，冷冻保存时间会更长，但对于抗体或抗原含量低的标本而言，则可能会因抗体掉价、抗原分解而出现假阴性结果。4 .标本凝固不全 血液通常在采集后半小时后开始凝固，18

9、24h完全凝固。如果在血液未凝固时即离心分离血清， 则可因纤维蛋白原非特异吸附于微孔而造成假阳性结果。为了缩短标本处理时间，可以在离心前将血液标本置于温箱中温育或者采用带分离胶的采血管或于采 血管中加入适当的促凝剂以加速血清的分离。5 .冷冻保存标本避免反复冻融标本的反复冻融会因其所产生的机械剪切力对标本中的蛋白等分子产生破坏作用，使抗体效价跌落从而引起假阴性结果，所以测抗体的血清标本如需保存作多次检测，宜少量分装冻存。此外，标本在冻存时会因蛋白质局部浓缩，分布不均，因 此重新融解的标本必须混匀，但不要进行剧烈振荡，反复颠倒即可。四、操作因素对ELISA结果的影响ELISA测定一般遵循以下步骤

10、：固相包被一加样品一温育一洗涤一加酶结合物一温育一洗涤 一加底物一温育一显色一终止显色一比色目前各种形式的 ELISA自动分析仪已经进入市场， 如广泛应用于血站系统的微板式全自动酶 免分析仪，其试剂为开放式的，而对于其它类型的仪器，则试剂和仪器往往是配套的。但当 前大部分医学实验室均采用手工操作加仪器测定的方式。ELISA操作步骤复杂，操作不当将引起较大的误差。以下叙述各个步骤中的影响因素。1 .加样加样器是一种比较精密的工具，其在长时间使用时会因机械磨损或者推动杆内附着血痂等原因造成加样不准，尤其是对于样本量较大的临床实验室，因此必须定期对加液器进行维护和校准。每次加不同的标本时均需更换吸嘴

11、，以免发生交叉污染。加样时速度不可太快，避免将标本加在孔壁上部 ，并注意不要溅出或产生气泡。加样时还应当注意操作时差对结果的 影响，操作时差是指加入标本、试剂及混匀时间的差异。 操作时差在每个实验中都存在，尤其是手工操作，日常检测标本多达几百个， 从加入第一个标本到最后一个标本，需几十分钟，加入试剂及混匀等均存在着前后的时间差异，使抗原抗体反应和酶促反应时间不一致，操作时差对竞争法检测的结果影响更大，在加酶结合物和底物时可用定量多道加液器，使加液过程迅速完成。如果使用滴瓶除注意滴加的角度外还要注意滴加的速度，速度太快，容易出现重复滴加或者加在两孔之间，造成非特异性吸附。另外有些项目在检测前需要

12、稀释以减低非 特异性反应，但稀释的方式非常重要， 如果采用手工稀释则容易因操作者个体差异而产生不 一致的结果，尤其是吸光度处于临界值附近的标本，因此最佳的方式是采用振荡器混匀。2 .温育在ELISA检测中一般有两次抗原抗体反应，即加标本和加酶结合物后。抗原抗体反应的完 成需要有一定的温度和时间，这一保温过程称为温育（incubation）。温育常采用的温度有 43 C、37C、室温和 4c （冰箱温度）等。37c是实验室中常用的温 育温度，也是大多数抗原抗体结合的最适反应温度。有实验表明，抗原抗体反应一般在 37 C经12小时产物的生成可达顶峰。为加速反应，可在一定范围内提高反应的温度并在反应

13、 过程中连续振荡以增加抗原抗体接触的机会。抗原抗体反应在4 c反应更为彻底，形成的产物更多更稳定，但因所需时间太长，在ELISA检测中一般不予采用。温育的方式有温箱法、微波辐射法、水浴法等，其中水浴法能较好解决因受热不均衡所致的 周围孔与中央孔结果的吸光度差异（这种现象被称为“边缘效应”）。若用温箱温育则 ELISA板应放在湿盒内，湿盒要选用传热性良好的材料如金属等，在盒底垫湿的纱布，最后将ELISA板放在湿纱布上。采用这种温育方式的关键是必须保证湿盒内的温度达到反应的要求，可在反应前将湿盒预温至规定的温度，并用温度计监测反应过程。采用水浴时，将ELISA板置于水浴箱中，板底贴着水面。为避免蒸

14、发，板上应加盖或用塑料贴封纸或保鲜膜覆盖板孔，此时可让反应板漂浮在水面上。温育过程中，反应板不宜叠放， 以保证各板的温度都能迅速平衡。严谨的ELISA试剂盒一般都规定了明确的温育温度，若要求室温温育，则一般是指2025Co微波辐射法能缩短温育时间，但不能解决“边缘效应”，因而较少使用。3 .洗涤洗涤是ELISA测定过程中决定实验成败的一个关键步骤。其目的是去除反应体系中与反应无关的成分、未结合的酶结合物以及反应过程中非特异性吸附于固相载体的干扰物质。由于抗原和抗体的包被通常是在碱性条件下与固相的疏水键相互作用而被动吸附于其上的，因此必须注意非离子去垢剂的使用浓度，最常用的洗涤液是含 0.05

15、%吐温20的0.02mol/L , pH为7.4的PBS液，如果洗涤液中的吐温 20超过0.2 %,可使包被于固相上的抗原或抗体解吸 附而影响实验的测定下限。 洗涤可采用洗板机或手工洗涤两种方式，手工洗板则分为浸泡式和流水冲洗式洗涤。无论洗板方式如何，在向板孔内注液时应当避免气泡残留孔内，否则会因洗涤液难以进入孔中而影响洗涤效果。在采用洗板机洗板时， 一定要将板条平放于板架上，保证洗板机上的每个吸液针都能一致地插入板孔底部将洗液完全吸净，否则空白值将升高甚至出现“花板”现象（背景不干净），造成实验失败，尤其是当酶结合物非特异吸附而残留于板孔时。若采用手工洗 板，则可在每次弃去板孔内液体后将反应

16、板于布料上拍干，布料可在消毒洗涤后重复使用。手工洗板一般为 35次，使用洗板机洗板时，其所需次数可通过以下实验确定：选择 8X 12 HBsAg ELISA包被板条，在每孔中平行加入相同的一份弱阳性血清，按试剂盒说明加入 酶结合物并完成温育，洗板机设置如下：第 1次洗涤1排、第2次洗涤2排、第3次洗涤3排直至8次洗涤8排，每次只洗涤1遍，其结果是第1排洗涤了 8遍，第2排洗涤7 遍第8排洗涤1遍，加底物显色后，根据吸光度值不再改变的反应条的洗涤次数来确定 最佳的洗板次数，例如第3排反应条吸光度值不再改变，则认为该项目最佳洗涤条件为6遍。另外有三方面必须注意：一是在使用洗板机洗板时，通常在上机前

17、应先将反应液弃去并 用流水快速冲洗1遍，避免因反应液对洗板机管道污染而造成的交叉污染和背景颜色加深， 但对于粘性大的稀释液或反应液而言，则需直接上机洗涤，并增加洗板后清水冲洗管路的次数；二是对于两步法而言第一步洗涤次数不宜太多，否则将降低结果的吸光度值。4.显色显色是ELISA中的最后一步温育反应，在以HRP作为标记酶的ELISA试剂盒中，主要采用TMB OPM种底物，其中以TMBM为多见，TM歌物显色一般要求室温或37c反应1530分钟。研究表明，显色受时间和温度的影响，一般 37c反应30分钟可使显色充分，如果缩 短反应时间或者降低反应温度均可影响检测的下限。为了保证结果的稳定性，必须固定

18、显色时间和温度，但不少操作者往往忽略了这一点。TMB显色体系的A液和B液可在使用前先混合然后用排枪加入反应孔中，这样既节省人力又缩短了操作时差对结果的影响。反应液应新鲜配制并且避免接触金属器皿，否则可因氧化等原因产生颜色反应。OPD由于其具有致癌性目前已很少使用。 5.比色ELISA显色的结果必须通过酶标仪进行检测，有两个重要的原因：一是不同的个体的色觉存 在差异，如果仅凭肉眼判断， 则结果重复性差，并且难以形成统一的判断标准，尤其是对于HBeAb HBcAb这样的检测项目；二是日益频繁的医疗纠纷要求临床实验室必须对ELISA检测的原始吸光度值，阴阳性判断结果等原始数据进行保存，否则面对医疗纠

19、纷时将无法举证。TMB的终止液有多种，叠氮钠和十二烷基硫酸钠( SDS等酶抑制剂均可使反应终止，各类 酸性终止液则将蓝色转变成黄色。有实验表明，从终止反应后2分钟开始，样本的吸光度值逐渐下降，起始吸光度值越高其下降速度越快，为保证实验结果的稳定性，宜在终止反应后2分钟内读取吸光度值。酶标仪应采用双波长进行测定，必须包括对颜色产物敏感和不敏感的两个吸收峰波长，在非敏感波长处测定特异性显色的吸光度值接近为零，此时测的吸光度值为容器上的划痕、指印、背景等造成的光干扰。以TM歌物为例，其最大吸收的波长为 450nm,非敏感波长为630nm, 双波长检测最终得到的吸光度值为两者之差。双波长测定能去除背景

20、的干扰，一般不设空白孔，否则会出现吸光度值为负值的现象。 酶标仪的使用需强调仪器的维护和保养，酶标仪首先应放置通风处，避免机器内部尤其是滤光片发霉，在使用过程中避免酸等物质溢出腐蚀仪器，每半年或一年请计量局对酶标仪进行检定，并请厂商定期维护。 比色前应先用洁净的吸水纸拭干板底附着的液体。酶标仪在使用前应先预热1530分钟，测读结果会更稳定。 五、灰区的设置通常情况下，ELISA定性实验以“阳性”和“阴性”来报告结果，两者间有一条分界线被称 为“阳性判断值” (cut-off alue , CO值)，这是定性免疫测定结果报告的依据。由于ELISACO值的设置不能区分所有正常和异常的人群，尤其是位

21、于CO值附近的人群，并且 ELISA检测具有以下几个特点：检测变异大(18险65% ;不同试剂盒 CO值存在差异；病毒感染存在窗口期；病毒变异后表达产物含量低以及个体差异等，因此在CO值附近存在一个临床意义可疑的的区域被称之为 “灰区”，在国内的传染性病原体抗原和抗体检测的ELISA试剂盒中均未涉及“灰区”的设置，但仅仅依靠CO值来决定感染的有无，尤其是对献血员的筛查具有较大的风险。因此对于检测结果位于“灰区”的病人可采用确认实验或追踪检测的办法加以确诊。目前“灰区”的设置有二种方式：COX （1±C） , C为该试剂的批内 C （一般在15-20%）;CO± 2s, s为

22、实验室做室内质控 ROC（常规条件下的变异）的标准差。六、标本复查ELISA手工检测过程复杂，影响因素较多，即使室内质控在控，也可能因孔间差异而造成结 果的差异，因此加大复查力度是保证结果准确性的可靠方法，比如对HBsAg HBeAg HC-AhHI-Ab、TP-Ab等项目的可疑、弱阳性标本及少见模式的检测结果进行复查。复查方式主要有两种：一是采用同一种试剂复查，理由是市售试剂均通过国家食品药品监督 管理局（SFDA认可，严格按照其说明书操作，检测结果具有法律效应，若使用不同的试剂（非确证试验）复查，当结果不相符合时，则最终结果难以判断（免疫检测缺乏“金标准”）。 另一种复查方式是采用国外进口

23、试剂进行复查，其理由是尽管进口试剂并不是“金标准”， 但实验室已经对此高度重视，并且使用了质量较好， 价格较贵的试剂，但该法对于小医院而言则很难实施。七、结果判断和报告常用下列几种方法表示结果：1 .定性测定（1）阳性判定值法（cut-off alue , CO）: 一般为阴性对照的平均 A值加一个常数，试剂制备、 检测过程必须严格标准化，要先计算出阳性对照A值平均数和阴性对照 A值平均数。标本 A值阳性判定值为阳性。阳性判定值公式中的常数是在特定的检测系统中通过对大量标本的 实验检测而得到的。现以 HI检测试剂盒为例。NC=1性质控对照的 A值；PC1抗-HI-1阳性 质控对照的A值；PC2

24、抗-HI-2阳性质控对照的 A值；NC值的要求：NC必须小于0.250。 去掉大于等于0.250的阴性质控对照。计算留下的阴性质控对照的平均值（NCX）。NC必须在0.6NCx和1.4NCx之间。去掉 NC小于0.6NCx和大于1.4NCx的阴性质控对照。实验 满足下列条件有效：多于半数的阴性质控对照符合要求（一般为1个PC, 3个N。；PC1-NCx> 0.400 ; PC2-NCx> 0.400（如果使用）。如果实验有效， CO=NCx+0.100，样品 A 值 大于等于CO判定为有活性反应。样品A值小于CO判定为无活性反应。根据以上叙述可以看出，在这种方法中阴性对照和阳性对照

25、也起到了质控的作用，试剂变质和操作不当均会产生“实验无效”的后果。由此可以看出为了避免检测结果受单孔阳性或者阴性对照的影响（当参与CO计算时），必须设立多孔对照、合理布局，并限定取舍条件。 （2）S/C （待测标本 A值/校准品A值）：S/O1.1为阳性，S/CV0.8为阴性；S/O0.8但 <1.1为可疑，反应体系中阳性、阴性对照及校准品检测的吸光度必须落在规定的范围内， 结果才有效。（3）S/N值法（待测标本A值/阴f对照 A值）或S/Co值法：通常S/N>2. 1 , S/Co> 1 为阳性。（4）抑制率法：在竞争抑制法中结果可用抑制率表示。抑制率（）=（阴性对照A值-

26、标本A值）/阴性对照A值X 100% 一般以制率50附阳性。2 .半定量测定 结果一般以滴度表示。将标本连续稀释后，进行 ELISA检测，在阳性临界值 以上的最高稀释度即为该标本的“滴度”。3 .定量测定 即用已知量的标准品作一系列稀释后进行ELISA测定，绘制标准曲线，结果以绝对量或单位表示。在 ELISA定量检测中每一块反应板都必须绘制相应的标准曲线。4 .结果报告传统的ELISA结果只报告“阳性”或者“阴性”，但不能解决“灰区”的问题，因此引入“可 疑”的报告方式是比较合理和科学的，同时对结果做必要的说明，如“结果已经复查，建议 定期复查或定量检测”；对于HBeAb HBcAb检测，由于

27、各试剂盒CO直差异及变异系数大等 因素，结果缺乏可比性，位于CO值附近的标本复查结果阴阳性只是概率事件，另外 HBcAb存在原倍和1:30检测模式及定量检测模式，报告结果的不一致对于临床实验室来说是不可 回避，也是目前医疗纠纷主要集中点和“结果互认”的最大障碍，因此在减小室内变异的同时必须引入阳性和弱阳性的报告方式。 八、原始记录ELISA检测结果变异大，不同体系难以溯源，因结果不一致而引起的医疗纠纷逐日增多，因 此ELISA检测的原始存根必须完整而全面地保存，包括布局，原始吸光度值，检测的阴阳结果，检测者，试剂厂家，批号，质控品来源及批号等。严禁人为修改检测结果。 九、质量控制 1.室内质量

28、控制（室内质控） ELISA定性试验的临床意义在于是否检出病原体，与检出量无关，因此质量控制（ quality control, QC ）要保证试验的灵敏度和重复性。目前定性实验的质控规则还还存在争议，目 前有以下几种比较流行的理论： 室内质控品 室内质控品的稳定以及合适的浓度是运用一切质控规则的前提。可选择S/CO值减去精密度测定中得到的三倍批间 C%（通常的ELISA测定批间变异（C%在15%左右）与该S/CO值的 乘积（意即三倍 SD仍大于1的质控血清作监测重复性的室内质控品用。计算公式：S/CO（1-3C%） =S/CO-3SQ同时选择S/CO处于1.5左右的质控血清以判断每次测定时试

29、剂盒测 定下限的有效性。 “即刻性”质控 一些实验室不是每天进行ELISA项目的检验，而 ELSIA部分试剂盒效期短 ，用同一批号试剂盒连续常规测20次，难度较大。采用“即刻法"质控统计方法，只需连续测3次，即可对第3次检验结果进行质控。先将测定值从小到大排列，X1最小，Xn最大；计算X和s；计算SI上限值和下限值。SI上=（X最小-X） /S , SI下二（X最大-X） /S ;对照SI表， 检查是否出控。SI上、下限w规定值，在控； SI上或下限 规定值，失控。 Leey-Jennings 质控图结合Westgard多规则质控方法 Leey-Jennings 质控图以及 West

30、gard多规则质控方法最早应用于生化检测的质量控制，在 ELISA检测中仍为探索阶段，一般认为：一 次超出3SD;连续二次超出 2SD;35 次连续处于一侧的 2SD之内；57次连续偏向横轴的一侧，均为失控。目前多采用一次 超过2SD作为“告警”，一次超出3SD为“失控”。另外还有 Westgard多规则质控规则、累积和（CUSUM质控规则等质控方法。 卫生部临床检验中心确定的质控方法： 室内质控品：定性测定的室内质控品，除了试剂盒附带的阴阳性对照外，实验室还应该选择至少2个室内质控品，其中一个为弱阳性质控品，接近 Cutoff值，S/Co值应亥为24之 间；另一个为阴性质控品。定量测定则至少

31、要求一个水平的质控品。 测定频度：每台仪器，每次检测患者样本时至少测定一次室内质控品；ELISA测定每块板都要测定室内质控品。 质控图绘制：定性测定可采用弱阳性质控品的S/Co值作质控图。定量测定参照临床化学的绘制方法。质控判断规则：定性测定为弱阳性的质控品不能测定为阴性；阴性质控品不能测定为阳性。重复性的判断规则为12S （警告PM） , 13S为失控限。定量测定参照临床化学的判断规则。 室内质控的现状及应对措施 免疫质控品制作困难，不管是自制血清或者购于其它机构，其稳定性和浓度很难达到要求， 加之ELISA影响因素较多，失控后很难找到确切的原因。因此如何开展 ELISA室内质控一直困扰着临

32、床检测者。基于此，不同实验室采取了不同的应对措施，举例如下：选择卫生部临床检验中心(NCCL的低值质控血清作为室内质控品，储备量以3个月，采用一次超过2SD作为“告警”，一次超出 3SD为“失控”的质控规则，(但该法对于 HBeAb (4NCU/ml)、HBcAb(2NCU/ml)检测不适用，因为即使质控在控，其结果也可能为阴性)； 由于质控品不稳定，每个月需重新设立靶值，并根据常规C设定SD (SD= XC-)；阴阳性对照正常，室内弱阳性和阴性质控正常，且没有出现“花板”(洗板不干净，背景颜色深)的情况下认为该检测批有效，但仍需对位于“灰区”和弱阳性的HBsAg HBeA够吉果及少见模式结果

33、进行复查，避免偶然因素及孔间差对结果造成影响；若阴阳性对照、阴性质控异常，或出现“花板”的情况则必须整批复查；在阴阳性对照、阴性质控正常且未出现“花板”的情况下，弱阳性质控 S/Co超出-3SD时复查位于“灰区”标本，超出+3SD时则复查弱阳性标本；对于抗体检测，尤其是竞争法检测HBeAb HbcAb,由于不同试剂盒、不同检测方法间CO值存在差异及变异系数大等因素，结果缺乏可比性，失控后的处理很难满意地解决，在没有统一的判断标准、较小的变异系数及明确的临床意义的情况下，引入弱阳性报告方式在临床实践中证明可行；室内质控的评价：认真分析每一次室内质控失控的原因，并对各项检测的均值，C等进行月与月之

34、间的比较分析，及时发现试剂盒检出能力的变化及操作中存在的 问题，并采取适当的措施来提高检测的精准性。2.室间质量评价(室间质评)室间质评是一种回顾性评价，主要是控制实验结果的准确性，也是某些定量实验量值的溯源。作为临床实验室应当积极参与各级室间质评计划，其要点是保证同病人标本一样对待室间质评物。必须强调的是室间质量评价结果必须同室内质控一并分析，查找原因以期改进工作中的不足，同时指导实验室选择合适的试剂盒。 十、免疫检验存在的问题HB基因组变异对病毒 HBsAg和HBeAg测定影响问题，以及如何评价试剂盒对这些变异株的 检测效能；HBcAb检测在保证输血安全中的意义；HBeAb HBcAb溯源

35、性问题；HBcAb检测模式的问题等均困扰着临床检测者。1李金明.临床酶免疫测定技术.第1版.北京：人民军医出版社，2005: 87-105.2沈霞.临床免疫学与免疫学检验新技术.第1版.北京：人民军医出版社，2002:12-19.3陶义训.免疫学和免疫学检验.第二版.北京：人民卫生出版社，1999: 140.4李金明.乙型肝炎病毒血清标志物测定及结果解释的若干问题.中华检验医学杂志，2006, 29 (5) : 385-389.5卫生部临床检验中心，中国医院协会临床检验管理专业委员会.医疗机构临床实验室管理办法及配套文件，2006: 10-11.文案大全在定性免疫测定中，确定合适的阴阳性判断值

36、对减少假阳性和假阴性具有重要意义。处于阳性判断值定值域中的测定结果可归为可疑，即ELISA测定的“灰区”。目前国内用做传染性病原体抗原或抗体检测的ELISA试剂盒没有统一在定性免疫测定中，确定合适的阴阳性判断值对减少假阳性和假阴性具有重要意义。处于阳性判断值定值域中的测定结果可归为可疑，即ELISA测定的“灰区”。目前国内用做传染性病原体抗原或抗体检测的ELISA试剂盒没有统一的“灰区”设置标准，而仅仅以“阳性判断值"（Cut off Value , Co值）来判断阴阳性结果，这就会涉及到检测结果低于但接近Co值的血液是否合格的问题。根据ELISA测定的Co值来判断结果，假阳/阴性不

37、可能完全避免，其只不过是将假阳/阴性降低到较低的比例而已。那么“灰区”范围设置多大才比较合 适，我们就此问题进行了初步探讨，现报告如下。1材料与方法1. 1样本2007年5月9月，本中心初、复检抗 HCV吉果不一致但复核结果为阴性的样本1 394份。2006年1月2007年9月抗 HCV阳性报废的血液样本643份，并特意收集 这期间初、复检结果不一致且阴性结果协方差值（ Cov值） 0 50的样本44份。1 NCU/ml 抗 HCVt值血清（批号0802）由卫生部临床检验中心提供。样本采集、保存与运输按照“全 血及成分血质量要求（GB18469-2001）”中“全血的质量要求”收集全血，在血液

38、采集后4-6 h内以1 500 r/min , 15 min离心取上清收集血浆并分成 3份，分另用于 ELISA方法 抗 HCV FQ PCR方法HCV RNA佥测和复核检测。-20 C下保存期为3个月、-70 C下保存期为1年，运输采用干冰。1 . 2试剂与仪器酶联免疫试剂盒初检试剂（厦门新创公司）、复检试剂（上海科华公司）、病毒核酸扩增荧光检测试剂盒（达安基因股份有限公司，批号：H10762）;（上海浩源生物科技有限公司，批号： 20070021）、复核试剂测试系统COBA公司AmpliScreen HCV Test （V20）,批号：H10762。核酸扩增实时荧光基因分析仪（达安基因股份

39、有限公司，DA 7600)、核酸自动提取系统(Chemagen司,Magnetic Separation Module I 型)、核 酸提取仪(TBG公司，EZ Beads 32)、PCR核酸扩增检测技术( ABI公司，7500实时PCR 分析系统)、全自动样品处理机(TECAW司，RSP200/8型)、全自动酶免分析仪(Microlab 公司，FAME 24/20 型)。1 . 3实验设计初复检筛查实验采用 ELISA方法，对初次具反应性的样本用相同试剂再次双孔复试，所有阴性样本再用FQ PCR方法检测。对于初、复检结果不一致的样本用FQ PCRT法和COBAS AmpliScreen HC

40、V Test (V20)测试系统检测。各项试验均严格按照试剂盒操作说明书进行。1 . 4数据统计 初、复检2遍检测均阳性的样本测试结果纳入阳性样本数据统计，对初、复检2遍检测结果不一致的，以HCV RNA佥测结果和复核试剂结果为标准，如复核结果为阳性，ELISA结果数据均归入阳性统计，否则归入阴性数据统计。2结果2 .1常规检测初、复检结果结果不一致且阴性结果 Cov值 0 50的样本44份，以30%乍为“灰区范围”，处于“灰区范围”的样本共10份，ELISA检测结果见表1。对这些样本采用FQ PCR方法和 COBAS AmpliScreen HCV Test (V20)测试系统再次检测，其中

41、 1份HCV RN郊日性样本，而 ELISA抗 HCV吉果不确定，Cov值为0 851 35。从而表明筛 查试验结果处于“灰区范围”内的样本有可能就是阳性样本。由表1结果可知，处于“灰区范围”内的样本共10份，占本项研究全部样本的 049% (10/2037 ),这些样本经文中方法鉴定后的真阳性和真阴性比例分别为10 0%(1/10)和90 0% (9/10 )。另外，对结果不一致的样本，分别统计2种试剂阳性结果 Cov平均值、s 和 Cov平均值+2s,计算值分别为 2 19、0 69、3 58; 2 07、0 84、3 75。总 Cov 平均值、s和Cov平均值+2s分别为2 13、0 7

42、7、3 67。从而表明结果不一致的样本多为 Cov值在2 0左右的弱阳性样本，一般情况下Cov值4 0。2 . 2 1394份常规检测初k复检抗 HCV吉果结果不一致而复试结果阴性的样本，Cov值波动范围为0 00-1 55,按Cov值大小顺序排列，以0 05为组距，统计各组段的样本数量T计算累计频数和累计频率，制作抗HCV#f生木本Cov值频数表，结果见表2。由表2抗 HCV1性中本Cov值频数表数据，Tt算百分位数P25=0 117、P50=0 179、P75=0 268、P95=0 761。根据表2结果，以各组段样本数量为纵坐标，以Cov值为横坐标作图可见阴性样本 Cov值呈偏态分布，见

43、图1。2 . 3抗 HCM性报废的643份血液初、复检结果统计结果：Cov值波动范围在000-22 00,按Cov值大小顺序排列，以0 50为组距，统计各组段的样本数量，计算累计频数和累计频率，制作抗 HCVffi本Cov值频数表，结果见表3。由表3频数表数据，计算百分位数，P5=0 588、P25=1 628、P50=2 780、P75=5 163、P95=19 488。根据表3数据，以各组段样本数量为纵坐标，以Cov值为横坐标作图，可见阳性标本Cov值呈偏态分布，结果见图2。表1抗 HCVU、复检结果不一致样本Cov值1本初检复检1本羊初检复检本羊初检复检1+ (284)-(053)16+

44、 ( 246)-(061)31I- ( 058)+ (124)2+ (235)-(061)17-(059)+ ( 128)32；-(056)+ ( 295)0 3+ ( 186)-(051)18-(052)+ ( 134)33；-(065)+ (185)4+ (367)-(056)19-(053)+ ( 152)34；-(067)+ ( 249)V+ ( 1-(02-(0+ (23；士 (0+ (174)57)068)37)589)55)6+ (253)- (068)21-(057)+ (234)36；士（072）+ (127)7+ ( 186)-(064)22-(052)+ ( 159)37

45、；+ ( 135)士(085)8+ (221)-(058)23-(059)+ (255)38；士（081）+ ( 254)9+ ( 142)-(052)24-(054)+ ( 104)39；士（076）+ ( 266)10+ (228)-(059)25-(066)+ ( 132)0士(079)+ ( 224)11+ ( 153)-(057)26-(055)+ (301)1士(088)+ (492)12+ ( 137)-(058)27-(066)+ ( 184)2+ ( 180)士(073)13+ (354)-(055)28-(058)+ ( 198)3+ ( 319)士(078)14+ (23

46、2)-(066)29-(053)+ ( 162)4+ ( 153)士(080)15+ (203)-(063)30-(068)+ (223)表2 抗 HCV1性中本Cov值频数Co v累计n频数累计频率()Co v累计n频数累计频率()005 47224717 720855 133895 98010 02354939 380905 134396 34015 -58280757 890954 134796 63020 102101772 961004 135196 92025 13109878 771056 135797 35030 67117484 221103 136097 56035 341

47、21787 30115-5 136597 92040 84126590 751206 137198 35045 -21127791 611254 137598 64050 01128792 321303 137898 85055 41130193 331355 138499 28060 3130993 90140一2 138699 43065 3131794 48145-3 138999 64070 6132394 911504 139399 93075 6132995 3415511394100 0080 4133395 62图1抗 HCV#f生木本Cov值频数图2抗HCV州生木本Cov值频

48、数处在Co定值域中的测定结果可归为可疑，也即 ELISA测定的“灰区”。由表2、3 结果可知，采用百分位数法，阴性样本以单侧 95%阳性样本以单侧5%十算，P+5=0 588、P -95=0 761,故由阴、阳性样本 Cov值计算的灰区范围为0 588-0 761。2. 4阳性结果确证采用卫生部临床检验中心 1 Ncu/ml定值质控血清以及经确证结果呈阳性的12份血清分别用阴性血清稀释，同时用2种初筛试剂检测，平均值 Cov> 1为阳性，结果见表4。表3 抗 HCVW性木本Cov频数Co vn频数累计累率()计频Co vn频数累计累率()计频05322335811525348305102

49、575116612025368336157614222081252538836720372153344130254083982596284441713535438445307635154591402545847635743986190145555085544063434675015035538600456246071541554557866350814787434160656387565531491763616535668802606497772917075738911655502780717545778974708510793218011588914575351379781850159893008025158009190760594098545198072195661195029025218103200561695809525238134205962597201002525816521001635987610545298227215363899921103532827422056431000表4 抗 HC部日性样本稀释 Cov值稀释倍数样本编号12345678901112131均值1:100671987756388984859563542833669648075586461:2063673438360