地高辛标记探针的Southern-杂交技术6页

1、地高辛标记探针的Southern 杂交技术根据核酸变性与复性的特性，特定核苷酸序列的单链DNA或RNA能够在一定条件下与具有互补性的核酸链退火形成双链结构，称之为核酸杂交。将已知的特定核苷酸序列的单链DNA或RNA进行标记，制成核酸探针，就可以用它检测样品中是否存在同源序列，或确定不同物种之间的亲缘关系，已成为分子生物学中一类重要的检测手段，在科学研究和实践中具有十分广泛的用途。它可用于基因组特定DNA序列的定位，测定相关片段的同源性、从cDNA文库、基因组文库中筛选完整基因等。还可以用于构建DNA分子的酶切图谱和遗传图指纹分析等。核酸杂交检测都是在滤膜上进行的，常用的滤膜有尼龙滤膜、硝酸纤维

2、素滤膜等。其基本过程包括以下几步。首先将待检样品DNA或RNA分子直接点加到滤膜上，或经过凝胶电泳分离再通过毛细管作用或电导作用被转移到滤膜上，而且是按其在凝胶中的位置原封不动地“吸印”上去的，这个过程称为核酸印迹（nucleic acid blotting）转移，主要有电泳凝胶核酸印迹法、斑点和狭线印迹法（dot and slot blotting）、菌落和嗜菌斑印迹法（colony and plaque blotting）；然后将具有核酸印迹的滤膜同带有放射性标记或其它标记的DNA或RNA探针进行杂交。最后，经过放射自显影技术或光化学、免疫学技术显示出不同的颜色，根据颜色的有无和深浅判定结

3、果。根据操作方式和检测对象的不同，核酸杂交技术主要有以下几种：斑点杂交技术（Dot blot）、Southern杂交技术（Southern blot）、Northern杂交技术（Northern blot）。前两者用于检测DNA，后者用于检测RNA。本实验主要介绍Southern杂交技术。1主要内容1. Southern Blot方法的原理。2. DNA琼脂糖凝胶电泳。3. DNA转移至硝酸纤维素膜/尼龙膜及膜处理。4. 介绍随机引物法标记DNA探针，Southern blot的预杂交、杂交及显色过程。2目的要求 掌握Southern blot方法的原理；掌握随机引物法标记DNA探针，印迹法转

4、移DNA至硝酸纤维素膜及膜处理。3 实验原理Southern杂交技术是由Edward M. Southern在1975年首先发明的用于检测DNA的一种核酸杂交技术，并因此而得名。Southern 杂交的原理是将待检测的DNA分子用限制性内切酶消化，通过琼脂糖凝胶电泳进行分离，继而将其变性并按照其在凝胶中的位置转移到硝酸纤维素薄膜或尼龙膜上，固定后再与同位素或其他标记物标记的DNA探针进行反应。如果待测物中含有与探针互补的序列，则二者通过碱基互补原理进行结合，游离的探针洗涤后用显影或其他合适的技术进行检测，从而显示出待检的片段及其相对大小。Southern印迹杂交技术包括两个主要过程：一是将待测

5、定核酸分子通过一定的方法转移并结合到一定的固相支持物（硝酸纤维素膜或尼龙膜）上，即印迹（blotting）；二是固定于膜上的核酸与同位素标记的探针在一定的温度和离子强度下退火，即分子杂交过程。见图1。图 1. Southern blot印迹杂交原理示意图（a）核酸内切酶消化的基因组 DNA； （b）琼脂糖凝胶电泳分离DNA片段；（c）凝胶中的DNA谱带转移到硝酸纤维素滤膜上；（d）滤膜与标记的DNA分子探针杂交；（e）显色显示杂交的DNA谱带。Southern blot方法十分灵敏，在理想的条件下，用放射性同位素标记的特异性探针和放射自显影技术，即便每条电泳带仅含2ng DNA也能被清晰地检测

6、出来。一、 实验仪器：尼龙膜；恒温水浴，塑料带，剪刀，平头镊子，封口机，烤箱，台式高速离心机，高压灭菌锅，电泳仪，水平电泳槽，微量移液器，摇床，吸水纸，3MM Whatman滤纸，干烤皿，玻璃平台等。二、 溶液配制1待检基因组DNA、DIG标记和检测试剂盒、各种限制性内切酶等。2其他试剂(1) 20 X SSC(1000 mL) :组分浓度 3.0M的Nacl，0.3M的柠檬酸钠NaCl 175.32g柠檬酸钠 88.26g NaOH调pH值到7.0， (2) 洗涤缓冲液Washing buffer 200ml 组分浓度：0.1M Maleic acid, 0.15M Nacl; pH 7.5

7、(20); 0.3%(v/v) Tween20. 马来酸： 2.32gNacl： 1.75gTween20 0.6mlNaOH固体约1.7g调pH值7.5(3) 马来酸缓冲液Maleic acid buffer 200ml 组分浓度：0.1M Maleic acid, 0.15M Nacl; pH 7.5 (20C) 马来酸： 2.32gNacl： 1.75gTween20 0.6mlNaOH固体约1.7g调pH值7.5(4) 检测缓冲液Detection buffer 100ml 组分浓度：0.1M Tris-HCl, 0.1M Nacl, pH 9.5(20C) Tris 1.21g, N

8、aCl 0.584g MgCl2 1.01g 调ph值到9.5(5) 变性溶液 (500 mL)：1 mol/L NaCl (43.83 g)，0.5 mol/L NaOH (10 g)，(6) 中和溶液 (500 mL)：0.5 mol / L Tris (30.27 g)，3 mol/L NaCl (87.66 g)，用1 mol/L HCl调(7) 5 TBE (250 mL)：13.5g Tris6.9g硼酸, 0.9 g EDTA-Na2，定容250 mL (8) 6 溴酚蓝载样液： 0.25 溴酚蓝，40 蔗糖(9) 1M Tris-HCl (pH 8.0): 称取12.114g

9、Tris-base, 溶于80ml 蒸馏水中， 用HCl 调pH 至8.0后，用蒸馏水定容至100ml，高压灭菌，分装保存。(10) 0.5M EDTA (pH 8.0): 称取18.61g EDTA，溶于80ml蒸馏水中，用NaOH调pH至8.0后，用蒸馏水定容至100ml，高压灭菌，分装保存。(11) TE buffer ：取1M Tris-HCl (pH 8.0) 5ml，0.5M EDTA (pH 8.0) 1ml，用蒸馏水定容至500ml，调pH至8.0后，高压灭菌，分装保存。(12) 10% SDS：称取10g SDS，溶于90ml蒸馏水中，68 加热溶解，用盐酸调pH至7.2，定

10、容至100ml。(13) 低严谨度洗膜液：将20 X的SSC 用蒸馏水稀释成2 X SSC，并按照100:1( 2 X SSC: 10% SDS) 加入10% SDS，配成2 XSSC 0.1% SDS。(14) 高严谨度洗膜液：将20 X的SSC 用蒸馏水稀释成0.5 X SSC，并按照100:1(0.5 X SSC: 10% SDS) 加入10% SDS，配成0.5XSSC 0.1% SDS。(15) Blocking Solution: 用Maleic acid buffer 将6#中的10 X Blocking Solution稀释成1X的工作液，现配现用。(16) Antibody

11、Solution :将4#试剂离心，按照1:5000加入Blocking Solution，2-8可保存12小时，即每5ml Blocking Solution中加1ul Ab抗体，与地高辛标记探针结合。(17) Color substrate solution (显色液)：将5#试剂按照1:50 用Detection buffer稀释，即从5#中取100ul 加入5ml Detection buffer，要避光，现配现用，用于显示抗体结合位点。(18) 杂交液DiG Easy Hyb：将64ml 无菌去离子水分两部分倒入试剂7#瓶，37 C摇动溶解5min。三、基因组DNA的提取、酶切与电泳

12、分离(1) 酶切反应体系DNA 1g /l 15g10酶切buffer 5 l 限制性内切酶（10U/l） 6 l 加ddH2O 至 50l (2) 混匀后于37C酶切1-3h，酶切完成后，取3l酶切反应物电泳分析，检测酶切效果(3) 酶切完成后，加入EDTA，65加热灭活限制酶,样品即可直接进行电泳分离，必要时可进行乙醇沉淀，浓缩DNA样品后再进行电泳分离。四、琼脂糖凝胶电泳(1) 用0.5 TBE 配制0.8% 的琼脂糖凝胶，凝胶厚度约为 0.5 cm。(2) 待凝胶充分凝固后，在点样孔中依次加入：阳性对照：质粒酶切产物，阴性对照：水及检测样品。(3) 加入电泳缓冲液至刚好与胶面持平，加1

13、00 V电压，电泳5 min 待溴酚蓝进入胶中后，将电压降至80 V 电泳30min，(4) 电泳结束后，染色，长波紫外线下观察电泳结果，用 1 张保鲜膜覆盖在凝胶上，复制下各分子量参照物及各 DNA 样品带的位置，在凝胶旁置 1 标尺照像五、变性与转膜(1) 将胶浸于4倍体积的变性溶液中，在摇床上温和摇动2 15 min，变性液要能没过胶。(2) 将胶在双蒸水中稍微洗涤，然后放入4倍体积的中和溶液中，在摇床上温和摇动2 15 min，中和液要能没过胶。(3) 转膜：20SSC浸湿一张whatman 3mm滤纸放在支撑平台上，此平台要比凝胶稍大，形成一个“桥”， 凝胶反放在浸湿的whatman

14、 3mm滤纸上注意两者之间不能有气泡。(4)照凝胶的大小剪一张硝酸纤维素滤膜/尼龙膜（长，宽略大0.2cm，剪去与凝胶对应的一角）。膜放在凝胶上。(5)尼龙膜上放一张whatman 3mm滤纸（长，宽略小0.2cm）一叠吸水纸、上置一玻璃板，其上放一重约0.20.5kg的物品。在20SCC的转移缓冲液中充分转移1824h及时换掉浸湿的吸水纸。(6) 固定：将膜在2 SSC 溶液中短暂漂洗，除去过多的盐分，然后DNA 结合面朝上，放在一张干净的滤纸上晾干后，夹在两层滤纸中间，120C 烘箱中 30 min，或者80C 2h，促进DNA与硝酸纤维素滤膜/尼龙膜结合。六、预杂交与杂交(1) 预杂交D

15、iG Easy Hyb：将64ml 无菌去离子水分两部分倒入试剂7#瓶，37 C摇动溶解5min，预热一定体积的DiG Easy Hyb（10ml/100cm2膜）至杂交温度42C 。预杂交60min，在不加探针的情况下，仅将膜放在杂交液中42C下充分润湿。（此过程可以延长至数小时）(2) 探针变性：Dig标记的探针1ul（约25ng/ml）加40l H2O, 95 C变性10min后迅速放在冰上冷却10min。(3) 杂交：将变性的探针加入预热的DIG Easy Hyb（3.5ml/100cm2）中，混匀，避免泡沫，倒出预杂交液，加入探针和DIG Easy Hyb混合液，继续在42 C下温浴

16、过夜（单拷贝探针）。含有探针的DiG Easy Hyb杂交液可重复利用，杂交结束后放入离心管中于-20 C保存，可重复使用几次，只需在使用前于68 C处理10min即可,不要煮沸DiG Easy Hyb杂交液七、洗膜与显色(1) 洗膜：2SSC，0.1% SDS室温下洗涤5分钟，洗2次。0.5SSC，0.1% SDS 65-68C温和振荡15分钟，洗2次(2) 免疫与显色：a. 杂交和洗膜后，用马来酸缓冲液（Washing Buffer， Buffer1）浸泡1-5minb. 在100ml 1Block solution（Buffer2）中温育30minc. 用1Block solution（Buffer2）稀释抗体DIG-抗原偶联物至150mU/ml（1:5000）d. 用10ml antibody solution处理膜30mine. 用100ml马来酸洗膜15min，洗2次f. 在20ml detection buffer（Buffer3）中平衡2-5ming. 在8ml 新鲜配制的color substrate solution中处理膜5分