标准解读

《GB 5009.222-2016 食品安全国家标准 食品中桔青霉素的测定》与之前的《GB/T 5009.222-2008》、《SN/T 2426-2010》及《SN/T 2916-2011》相比,主要在以下几个方面进行了调整和更新:

  1. 标准性质变化:从推荐性标准(GB/T)转变为强制性标准(GB),意味着该标准的要求对所有相关食品生产企业具有法律约束力,必须执行。

  2. 适用范围调整:虽然都是关于食品中桔青霉素的测定方法,新标准可能根据最新的食品安全需求和检测技术发展,对适用的食品类别或样品处理流程进行了细化或扩展,以更全面地覆盖各类食品中桔青霉素的检测需求。

  3. 检测方法优化:GB 5009.222-2016可能引入了更为先进的检测技术和方法,如高效液相色谱法(HPLC)、液相色谱-质谱联用技术(LC-MS/MS)等,这些技术相较于旧标准中的方法,可能提高了检测灵敏度、准确性和效率,同时降低了检测限,使得微量桔青霉素的检出成为可能。

  4. 限量标准更新:新标准可能根据最新科学研究成果和风险评估,对食品中允许的最大桔青霉素残留限量进行了重新设定,确保食品安全标准与国际接轨,保护公众健康。

  5. 采样与预处理规程:在样品的采集、保存、前处理等环节,新标准可能提供了更为详细的操作指导和要求,以减少检测过程中的误差,提高检测结果的可靠性。

  6. 质量控制与验证:增加了对实验室质量控制的要求,如空白试验、平行样测试、回收率试验等,确保检测数据的准确性和可重复性。同时,可能提供了更完善的仪器校准和性能验证方法。

  7. 术语和定义更新:随着科学认知的深入,新标准可能对相关专业术语进行了修订或新增,以便于统一理解,减少歧义。


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  • 现行
  • 正在执行有效
  • 2016-12-23 颁布
  • 2017-06-23 实施
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GB 5009.222-2016 食品安全国家标准 食品中桔青霉素的测定_第1页
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文档简介

016    前  言本标准代替008红曲类产品中桔青霉素的测定、24262010进出口粮谷中桔霉素含量检测方法 液相色谱法和29162011出口食品中桔霉素的测定方法 免疫亲和柱净化本标准与008相比,主要变化如下:标准名称修改为“食品安全国家标准 食品中桔青霉素的测定”;增加了净化步骤;增加了适用范围。0161    食品安全国家标准食品中桔青霉素的测定1 范围本标准规定了食品中桔青霉素的测定方法。本标准第一法适用于大米、玉米、辣椒、红曲类产品中桔青霉素的测定,第二法适用于大米、大麦、燕麦、小麦中桔青霉素的测定。第一法 免疫亲和柱净化理试样中的桔青霉素用甲醇取液经过滤、稀释后,用免疫亲和柱净化,采用液相色谱结合荧光检测器测定桔青霉素的含量,外标法定量。3 试剂和材料除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为醇(色谱纯。腈(色谱纯。酸(色谱纯。乙酸(色谱纯。氧化钠(温20(化钠(酸氢二钠(酸二氢钾(化钾(氧化钠溶液(2):于1 磷酸溶液(10,2 磷酸溶液(10,2 水溶解,0162    水定容至1000 温20确移取1 酸溶液:准确移取1 洗脱液:甲醇磷酸溶液(70+30)。脱液:酸溶液(70+30)。准品桔青霉素(18纯度或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质。准储备液:准确称取一定量的桔青霉素标准品,度为100g/4下保存。准中间液:甲醇定容,浓度为10g/4下保存。质标准工作液:根据需要,取适量的标准中间液,用空白样品提取液配成不同浓度的基质标准工作液,现用现配。青霉素免疫亲和柱:柱体积3大柱容量20等效柱。璃纤维滤纸:直径11 效液相色谱仪,配荧光检测器。析天平:速均质器:12000r/匀器。5 米、玉米、150入500+30)提取液,以高速均质器高速均质提取2滤提取液,于另一干净的容器中,加入49磷酸溶液(释、混匀;以玻璃纤滤纸过滤待免疫亲和柱净化。50入200+30)提取液,以高速均质器高速均质提取2滤提取液,于另一干净的容器中,加入39匀;以玻璃纤滤纸过滤待免疫亲和柱净化。0163    米、玉米、辣椒将免疫亲和柱连接于10述澄清滤液过免疫亲和柱,以1滴/s2滴/入5磷酸(1滴/s2滴/至空气进入到亲和柱中,弃去全部流出液。行洗脱,洗脱流速为1滴/s2滴/s。收集全部洗脱液于玻璃试管中,供检测用。曲及其制品将免疫亲和柱连接于101滴/s2滴/温201滴/s2滴/至空气进入到亲和柱中,弃去全部流出液。红曲及其制品)进行洗脱,洗脱流速为1滴/s2滴/s。收集全部洗脱液于玻璃试管中,供检测用。白试验除不加试样外,均按上述操作步骤进行。米、玉米、辣椒液相色谱分析条件列出如下:a) 色谱柱:长150径5m,或等效柱;b) 柱温:30;c) 流速:d) 进样量:50L;e) 检测条件:激发波长350射波长500nm;f) 流动相腈,流动相0磷酸(流动相及梯度洗脱条件见表1。表1 流动相及梯度洗脱条件时间/流动相曲及其制品液相色谱分析条件列出如下:a) 色谱柱:长150径5m,或等效柱;0164    b) 柱温:30;c) 流速:d) 进样量:50L;e) 检测条件:激发波长350射波长500nm;f) 流动相腈,流动相酸。流动相及梯度洗脱条件见表2。表2 流动相及梯度洗脱条件时间/流动相仪器最佳工作条件下,用基质标准工作溶液分别进样,以相应的桔青霉素的色谱峰的峰面积为纵坐标,以基质标准工作溶液中桔青霉素的浓度为横坐标,绘制标准曲线。 试样溶液的测定将试样溶液注入高效液相色谱仪,测定相应的峰面积。由标准曲线得到试样溶液中桔青霉素的浓度。6 分析结果的表述试样中桔青霉素含量按式(1)计算:X=V(1)式中:X试样中桔青霉素的含量,单位为微克每千克(g/样液中桔青霉素的浓度,单位为微克每升(g/L);V定容体积,单位为毫升(f样液稀释倍数;m样液所代表的试样量,单位为克(g)。计算结果需扣除空白值。计算结果保留两位有效数字。7 精密度在重复条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。0165    8 其他本方法中大米、玉米、辣椒粉样品的检出限和定量限分别为8g/曲及其制品的检出限和定量限分别为25g/二法 理用乙腈18固相萃取小柱净化,用配荧光检测器的液相色谱仪测定,外标法定量。10 试剂和材料除非另有说明,本方法所用试剂均为分析纯,水为丙醇(色谱纯。腈(色谱纯。酸(优级纯。醇(取溶剂:乙腈5+10+55),酸溶液():水定容至1L。动相:乙腈5+10+55)。准品桔青霉素(18纯度99%。或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质。青霉素标准储备液:称取适量桔青霉素标准物质,4保存。青霉素标准工作液:根据需要用流动相将标准储备液稀释成25ng/0ng/00ng/00ng/000ng/18固相萃取柱:填料500体积3等效柱。璃纤维滤纸:直径110166    11 效液相色谱仪:配有荧光检测器。荡器。心机:6500r/空固相萃取装置。吹仪。析天平:2 取取样品500g,用粉碎机粉碎并通过830匀,分成2份,装入洁净容器内,密封保存。称取试样约5g(5010在振荡器上振荡提取303500r/清液转入另一离心管中。在残渣中再加入5重复上述操作,合并上清液。在提取液中加水至40玻璃纤维滤纸,待净化。化将上述溶液过预淋洗好的5淋洗液全部流出柱子后,减压抽干3集全部洗脱液,在40下,液相色谱测定。白试验除不加试样外,均按上述操作步骤进行。相色谱参考条件a) 色谱柱:长250径5m,或等效者;b) 流动相:乙腈5+10+55);c) 流速:d) 进样量:50L;e) 柱温:28;f) 检测波长:激发波长331射波长500谱测定根据样液中被测桔青霉素含量情况,选定峰面积相近的标准工作溶液。标准工作液和样液中桔青霉素响应值均应在仪器检测线性范围内。对标准工作液和样液等体积参插进样测定。在上述色谱条件下,3 分析结果的表述试样中桔青霉素含量按式(2)计算:0167    X=Am(2)式中:X试样中桔青霉素含量,单位为微克每千克(g/A样液中桔青霉素的峰面积;标准工作液中桔青霉素的浓度,单位为微克每升(g/L);V样液最终定容体积,单位为毫升(标准工作液中桔青霉素的峰面积;m最终样液所代表的试样量,单位为克(g)。计算结果需扣除空白值,测定结果用平行测定的算术平均值表示,结果保留两位有效数字。14 精密度在重复条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平

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