标准解读

《GB 5009.189-2016 食品安全国家标准 食品中米酵菌酸的测定》与《GB/T 5009.189-2003 银耳中米酵菌酸的测定》相比,主要存在以下几方面的差异和更新:

  1. 适用范围扩大:最显著的变化是新标准将适用范围从单一的银耳扩展到了整个食品领域,这意味着该标准不仅适用于银耳,还涵盖了其他可能含有米酵菌酸的各类食品,提高了食品安全监测的广泛性和全面性。

  2. 标准性质变化:从标准编号上的“GB/T”变为“GB”,表明该标准从推荐性国家标准转变为强制性国家标准。这一转变强调了执行该标准的强制性,对食品生产、加工及检测机构具有法律约束力,提升了食品安全控制的要求。

  3. 检测方法更新:新标准很可能引入或优化了米酵菌酸的检测技术与方法,以适应科技进步和提高检测的准确度、灵敏度和效率。这可能包括采用更先进的仪器分析技术,如液相色谱-串联质谱(LC-MS/MS)等,来替代或补充原有的检测手段。

  4. 限量要求与判定依据:虽然具体限量值不在提问范围内,但新标准通常会根据最新的风险评估结果调整食品中米酵菌酸的安全限量,提供更科学合理的判定依据,确保食品安全。

  5. 采样与预处理:新标准可能对样品的采集、保存、前处理步骤进行了细化或修订,以确保检测结果的代表性和准确性。这些改进有助于减少检测过程中的误差,提高结果的可靠性。

  6. 质量控制与实验室管理:新标准可能会加强对实验室的质量控制要求,包括但不限于方法验证、空白试验、回收率试验等方面的规定,以保障检测数据的质量。


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  • 2016-12-23 颁布
  • 2017-06-23 实施
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文档简介

中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准G B5 0 0 9.1 8 92 0 1 6食品安全国家标准食品中米酵菌酸的测定2 0 1 6 - 1 2 - 2 3发布2 0 1 7 - 0 6 - 2 3实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会国 家 食 品 药 品 监 督 管 理 总 局发 布G B5 0 0 9.1 8 92 0 1 6 前 言 本标准代替G B/T5 0 0 9.1 8 92 0 0 3 银耳中米酵菌酸的测定 。本标准与G B/T5 0 0 9.1 8 92 0 0 3相比, 主要变化如下: 标准名称修改为“ 食品安全国家标准 食品中米酵菌酸的测定” ; 修改了适用范围; 修改了试样制备, 增加了固相萃取; 增加了高效液相色谱条件; 增加了附录A; 规定了方法检出限和定量限; 删除了薄层色谱法。G B5 0 0 9.1 8 92 0 1 61 食品安全国家标准食品中米酵菌酸的测定1 范围本标准规定了银耳及其制品、 酵米面及其制品等食品中米酵菌酸的测定方法。本标准适用于银耳及其制品、 酵米面及其制品等食品中米酵菌酸的测定。2 原理试样经提取、 净化、 浓缩及过滤后, 经高效液相色谱仪分析, 外标法定量。3 试剂和材料除非另有说明, 本方法所用试剂均为分析纯, 水为G B/T6 6 8 2规定的一级水。3.1 试剂3.1.1 甲醇(CH3OH) : 色谱纯。3.1.2 冰乙酸(CH3C OOH) 。3.1.3 氨水(NH3H2O) 。3.1.4 甲酸(CH2O2) 。3.1.5 盐酸(HC l) 。3.1.6 磷酸(H3P O4) 。3.1.7 碳酸氢钠(N a HC O3) 。3.1.8 石油醚(C5H1 2O2) : 沸程3 06 0。3.1.9 无水乙醚(C4H1 0O) 。3.1.1 0 三氯甲烷(CHC l3) 。3.2 试剂配制3.2.1 磷酸溶液(4 5.4%) : 量取4 5.4m L磷酸于1 0 0m L容量瓶中, 用水稀释定容至刻度。3.2.2 碳酸氢钠溶液(4 0g/L) : 称取4 0g碳酸氢钠加水溶解, 转移至10 0 0m L容量瓶中定容至刻度。3.2.3 盐酸溶液(6m o l/L) : 量取5 0m L盐酸于1 0 0m L容量瓶中, 用水稀释定容至刻度。3.2.4 甲醇-氨水溶液: 量取8 0m L甲醇, 加入1.0m L氨水, 加水定容到1 0 0m L, 混匀。3.2.5 甲酸-甲醇溶液(2%) : 吸取2.0m L甲酸于1 0 0m L容量瓶中, 用甲醇稀释定容至刻度。3.3 材料固相萃取柱: 阴离子交换柱(6 0m g/3m L) 或等效品, 临用前依次加5.0m L甲醇和5.0m L水活化, 保持柱体湿润。G B5 0 0 9.1 8 92 0 1 62 3.4 标准品米酵菌酸(C2 8H3 8O7,C A S号:1 1 0 7 6 - 1 9 - 0) : 纯度9 5%, 或经国家认证并授予标准物质证书的标准物质。3.5 标准溶液配制3.5.1 米酵菌酸标准储备液(0.1m g/m L) : 准确称取米酵菌酸标准品1m g( 精确至0.0 1m g) , 用甲醇溶解, 转移至1 0 m L容量瓶中, 用甲醇定容至刻度。置于2 8 冰箱中避光保存, 有效期为6个月。3.5.2 米酵菌酸标准系列工作液: 分别吸取米酵菌酸标准储备液用甲醇稀释定容, 配制成米酵菌酸浓度分别为0 .3g/m L、0 .5g/m L、1 .0g/m L、2 .0g/m L、5 .0g/m L、1 0 .0g/m L、2 0 .0g/m L、4 0 .0g/m L的标准工作溶液。临用时配制。4 仪器和设备4.1 高效液相色谱仪, 带二极管阵列检测器。4.2 天平: 感量分别为0.0 1g和0.0 1m g。4.3 固相萃取装置。4.4 超声波振荡器。4.5 旋转蒸发仪。4.6 氮吹仪。4.7 微孔有机滤膜( 孔径0.4 5m) 。4.8 涡旋振荡器。4.9 恒温水浴锅。5 分析步骤5.1 试样制备5.1.1 固相萃取法5.1.1.1 提取干试样经粉碎过0.4 2 5mm筛后, 称取2 0g( 精确至0.0 1g) 置于锥形瓶中, 加入1 0 0m L甲醇-氨水溶液; 鲜( 湿) 试样经剪碎、 匀浆后称取1 0g( 精确至0.0 1g) , 加入8 0m L甲醇-氨水溶液。混匀, 室温下避光浸泡1h, 置于超声波振荡器中超声提取约3 0m i n, 过滤。干试样取滤液5 0m L, 鲜( 湿) 试样取滤液4 0m L。置8 0水浴中浓缩至约3m L, 待净化。5.1.1.2 净化将浓缩后的试样全部转移到已活化的固相萃取柱中, 依次用5m L水和5m L甲醇淋洗, 弃去流出液, 抽干萃取柱, 再用6m L甲酸-甲醇溶液(2%) 洗脱, 收集洗脱液, 于4 00.5水浴中氮吹至干,然后加入0.5m L甲醇, 涡旋溶解, 混匀, 经微孔有机滤膜过滤后进行H P L C分析。5.1.2 液-液萃取法5.1.2.1 提取干试样经粉碎过0.4 2 5mm筛后, 称取2 0g( 精确至0.0 1g) , 置于具塞锥形瓶中, 加入2 0m L甲G B5 0 0 9.1 8 92 0 1 63 醇, 室温下避光浸泡1h, 再加入8 0m L三氯甲烷和0.2m L磷酸溶液(4 5.4%) ; 鲜( 湿) 试样经剪碎、 匀浆后称取1 0g( 精确至0.0 1g) , 加入1 6m L甲醇, 于室温下避光浸泡1h, 再加入6 4m L三氯甲烷和0.1 6m L磷酸溶液(4 5.4%) 。振荡3 0m i n, 过滤, 干试样取滤液5 0m L, 鲜( 湿) 试样取滤液4 0m L。5.1.2.2 萃取将上述滤液分别移入1 5 0m L分液漏斗中, 加入与滤液等体积的碳酸氢钠溶液(4 0g/L) , 振摇2m i n, 静置待分层后, 取出下层于另一分液漏斗中; 再用碳酸氢钠溶液(4 0g/L)1 0m L重复提取两次,轻摇; 将三次提取的碳酸氢钠溶液合并, 加入2 5m L三氯甲烷, 振摇2m i n, 静置分层后弃去三氯甲烷,于分液漏斗中慢慢加入盐酸溶液(6m o l/L) 调该溶液p H至23, 加入石油醚5 0m L( 鲜、 湿试样为4 0m L) , 振摇3m i n, 静置分层, 取出石油醚层于旋蒸瓶中, 再分别用石油醚3 0m L和2 0m L各提取一次( 鲜、 湿试样两次均为2 0m L) , 将石油醚层并入同一瓶中, 于4 00.5水浴中旋蒸浓缩至干, 用少量甲醇分次将旋蒸瓶中提取物溶解并转移至5.0m L玻璃离心管或浓缩瓶中, 于4 0 0.5 下氮吹浓缩至干, 然后加入0.5m L甲醇, 涡旋溶解, 混匀, 经微孔有机滤膜过滤后进行H P L C分析。5.2 色谱参考条件色谱参考条件列出如下:a) 色谱柱:C1 8色谱柱( 柱长2 5 0mm, 内径4.6mm, 粒度5m) 或同等性能的色谱柱;b) 流动相:甲醇+水=7 5+2 5, 水用冰乙酸调p H至2.5;c) 流速:1.0m L/m i n;d) 柱温:3 0;e) 检测波长:2 6 7n m;f) 进样量:2 0L。5.3 标准曲线的制作分别将2 0L米酵菌酸标准系列工作液注入液相色谱仪中, 测定相应的峰面积, 以标准工作液的浓度为横坐标, 以峰面积为纵坐标, 绘制标准曲线。米酵菌酸标准溶液的色谱图见图A.1。5 .4 试样溶液的测定将试样溶液注入液相色谱仪中, 以保留时间定性, 同时记录峰面积, 根据标准曲线得到待测液中米酵菌酸的浓度。6 分析结果的表述试样中米酵菌酸含量按式(1) 计算:X=V2m(1) 式中:X 试样中米酵菌酸的含量, 单位为微克每克(g/g) ; 由标准曲线得到的试样溶液中米醇菌酸的浓度, 单位为微克每毫升(g/m L) ;V 试样溶液的浓缩定容体积, 单位为毫升(m L) ;2 稀释倍数;m 试样质量, 单位为克(g) 。计算结果保留两位有效数字。G B5 0 0 9

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