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文档简介
1、基因高表达利用高表达质粒载体pCaEXP 通过基因同源重组方法构建SODs基因高表达的VX2瘤株肝癌模型。一、材料、试剂和仪器高表达质粒载体pCaEXP,大肠杆菌,培养基(按配方配制酵母浸膏蛋白胨葡萄糖培养基), 限制性内切酶; Pyrobest DNA olymerase、DNA Marker DL2000、Goldview 核酸染料, 质粒DNA小量抽提试剂盒、PC产物纯化试剂盒,琼脂糖,小量酵母菌总NA 抽提试剂盒,eal Time T-PC 所用试剂;eal Time PC仪,F-200 紫外与可见分析装置,电泳槽, 高速冷冻离心机,恒温振荡培养箱。二、方法步骤为了实现SODs基因的高
2、表达,将SODs基因完整开放阅读框( OF) 连接于高表达质粒载体pCaEXP中MET3 启动子的后面,以实现MET3 对SODs 基因OF 的控制。1、首先用基因组抽提试剂盒抽提SODs基因组,在SODs基因组中用含有Bam H和Pst酶切位点的引物P1和P2扩增SODs基因OF 全长。2、使用上述两个酶分别酶切SODs基因的OF 和pCaEXP 质粒,酶切产物纯化后使用T4 DNA ligase 进行连接。将连接产物转化感受态大肠杆菌DH5,在含氨苄青霉素的LB固体培养基上进行筛选,挑取阳性克隆扩增后采用质粒抽提试剂盒小量抽提质粒,然后对所抽提的高表达质粒载体pCaEXP-SPE 1 采用
3、酶切方法进行鉴定。基因敲除基因敲除兔肝癌模型制备,方法有很多种,如传统ES打靶、TALEN、CRISPR/Cas9,还有TetraOneTM基因敲除。以CRISPR/Cas9技术为例:一、材料、试剂和仪器sgRNA; UCA试剂盒(对sgRNA/Cas9进行活性检测),质粒载体,sgRNA/Cas9 mRNA,PCR试剂盒,其他常规试剂;全自动生化分析仪,微量移液器,电热恒温水浴箱,超净工作台,凝胶图像扫描仪,微波炉,混匀器,离心机,生物显微镜。二、方法步骤EGE技术(基于Crispr cas9技术)1.设计构建识别靶序列的sgRNA;2.设计构建致靶基因切割的EGE系统载体质粒;3.利用UC
4、A试剂盒对sgRNA/Cas9进行活性检测;4.设计构建打靶载体;5.体外转录sgRNA/Cas9 mRNA;6.兔肝癌原核注射sgRNA/Cas9 mRNA和打靶载体;7.获得Fo代兔,利用PCR对Fo代兔进行基因型鉴定;8.获得F1代兔,利用PCR和southern blot杂交技术对F1代兔进行基因型鉴定。细胞培养一、材料、试剂和仪器主要仪器与试剂匀胶机,光刻机,体视显微镜,倒置荧光显微镜,等离子键合机,酶标仪,图像处理软件,CO2培养箱,水浴锅,灌流泵,大容量离心机,超净工作台, 移液器等;海藻酸钠, 氯化钙,柠檬酸钠,荧光素钠,胰蛋白酶,小牛血清, RPMI-1640 培养基,胰蛋白
5、酶,L-谷氨酰胺SU-8 光刻胶及显影液,Sylgard184 型聚二甲基硅氧烷,染色剂,以及青霉素与链霉素。二、方法步骤HBSS溶液: 取HBSS 47. 5 m L,分别加入0. 5 mol / L EGTA0. 05 m L和1 mol / L HEPES2. 5 m L,充分均匀,4 保存备用。SFM培养液: 取RPMI-1640培养基45 m L,分别加入50 g / m L青链霉素0. 5 m L,10 mg /m L链霉素0. 25 m L,灭活小牛血清5 m L,200 mmol/L L-谷氨酰胺0. 5 m L,充分混匀备用。 (1) 将细胞接种于培养皿中。37,5% CO2培养箱中培养2 h( 或过夜,12 16 h) 。(2)
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