标准解读

《GB/T 38170-2019 琼脂糖分离介质》是一项国家标准,主要针对琼脂糖作为分离介质的应用进行了规范。该标准适用于以琼脂糖为基质的电泳、层析等生物化学实验中使用的分离材料。它规定了琼脂糖分离介质的技术要求、试验方法、检验规则以及标志、包装、运输和贮存的要求。

技术要求部分详细描述了琼脂糖分离介质应满足的具体条件,包括但不限于纯度、凝胶强度、溶解性等方面的标准。此外,还对不同应用场景下(如DNA/RNA电泳、蛋白质电泳等)所使用的琼脂糖分离介质提出了特定的质量指标。

试验方法章节提供了验证琼脂糖分离介质是否符合上述技术要求所需的各种测试手段,比如如何测定其凝胶点、分子筛效应及电泳性能等。这些方法旨在确保产品能够达到预期的分离效果,并且在整个使用过程中保持稳定可靠。

检验规则则明确了抽样检查的原则与程序,通过合理的抽样方案来保证每批次产品的质量一致性。同时,也给出了不合格品处理方式的相关指导。

对于标志、包装、运输和贮存方面,《GB/T 38170-2019》同样做出了具体规定,强调了正确标识信息的重要性,以及在不同环境条件下保存时需要注意的事项,以避免因不当处理而导致产品质量下降或失效。

该标准的发布实施有助于提高我国琼脂糖分离介质行业的整体水平,促进相关领域科学研究和技术进步。


如需获取更多详尽信息,请直接参考下方经官方授权发布的权威标准文档。

....

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  • 2019-10-18 颁布
  • 2019-10-18 实施
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GB∕T 38170-2019 琼脂糖分离介质_第1页
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GB∕T 38170-2019 琼脂糖分离介质_第3页
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文档简介

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犃21

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犌犅/犜38170—2019

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犃犵犪狉狅狊犲犫犪狊犲犱犮犺狉狅犿犪狋狅犵狉犪狆犺犻犮犿犲犱犻狌犿

20191018??20191018??

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前言

本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。

本标准由中国标准化研究院提出并归口。

本标准起草单位:中国科学院过程工程研究所、中国标准化研究院、中科森辉微球技术(苏州)有限

公司。

本标准主要起草人:黄永东、赵岚、朱凯、吴学星、马光辉、苏志国、巩方玲、马爱进、杨维兴、王少云。

犌犅/犜38170—2019

琼脂糖分离介质

1范围

本标准规定了琼脂糖分离介质的分类、技术要求、检测方法、检验规则、标签、标志、包装、运输和

贮存。

本标准适用于琼脂糖分离介质的生产与检测。

2规范性引用文件

下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文

件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。

GB/T191包装储运图示标志

GB/T5475离子交换树脂取样方法

GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法

3术语和定义

下列术语和定义适用于本文件。

3.1

琼脂糖分离介质犪犵犪狉狅狊犲犫犪狊犲犱犮犺狉狅犿犪狋狅犵狉犪狆犺犻犮犿犲犱犻狌犿

以琼脂糖为主要原料制备的一类球形分离介质。

3.2

非特异性吸附量犪犿狅狌狀狋狅犳狀狅狀狊狆犲犮犻犳犻犮犪犱狊狅狉狆狋犻狅狀

琼脂糖分离介质对细胞色素C的吸附量。

4分类

按琼脂糖含量分为4%琼脂糖分离介质和6%琼脂糖分离介质。

5技术要求

5.1外观要求

琼脂糖分离介质应球形饱满、表面光滑,在光学显微镜下应具有透明性。

5.2性能要求

应符合表1中的规定。

犌犅/犜38170—2019

表1琼脂糖分离介质的主要性能要求

项目

指标

4%琼脂糖分离介质6%琼脂糖分离介质

粒径

平均粒径(珚犱)/μm90.0±13.534.0±6.890.0±13.534.0±6.8

范围粒径比(犠粒径)/%

≥90

≥90

≥90

≥90

最高流速c/(cm/h)≥210≥60≥270≥60

固含量/%7.50±1.6010.50±2.00

分配系数d(犓av)

0.58~0.70(犕p=200000)0.43~0.62(犕p=200000)

0.63~0.75(犕p=100000)0.68~0.82(犕p=50000)

0.77~0.89(犕p=20000)0.72~0.86(犕p=10000)

非特异性吸附量e/(

μg

/mL)≤18≤18

菌落总数/(CFU/mL)<100<100

5羟甲基糠醛脱落量/

μg

/mL)

pH3.0≤0.25

≤0.25

pH13.0≤0.15

≤0.15

注:犕p为探针分子相对分子质量。

a粒径在45.0μm~165.0μm范围内试样颗粒的体积与全部试样颗粒体积之比。

b粒径在24.0μm~44.0μm范围内试样颗粒的体积与全部试样颗粒体积之比。

c在0.1MPa压力下可达最高流速。

d以葡聚糖为溶质。

e每毫升介质对细胞色素C的吸附量。

6检测方法

6.1外观

6.1.1样品处理

按照GB/T5475直接从产品中抽取5mL样品,置于50mLG3型号砂芯漏斗中抽干5min。用符

合GB/T6682的三级水清洗5次,每次2min,最后用真空泵在0.1MPa压力下抽干5min。将洗净的

琼脂糖分离介质置于烧杯中,向其中补加三级水,保证琼脂糖分离介质上应有2cm的三级水。混匀后

得到琼脂糖分离介质与水的混合体系。

6.1.2样品观测

用塑料吸管吸取混合体系置于载玻片上,调整显微镜放大倍数。以视野里80%以上面积均为琼脂

糖分离介质为标准,用塑料吸管增减载玻片上的琼脂糖分离介质,最后用盖玻片压上。调节光学显微镜

焦距,使视野中的影像清晰。拍摄琼脂糖分离介质照片并保存。

6.2粒径

6.2.1样品处理

方法同6.1.1。

犌犅/犜38170—2019

6.2.2样品检测

设置激光粒度仪参数如下:测量颗粒类型为通用型,分散剂类型为水,分析模式为单峰模式,添加样

品进行测定。

6.2.3结果计算

6.2.3.1范围粒径比

按式(1)计算:

犠粒径=∑

犽=犻犠犽

…………(1)

式中:

犠粒径———范围粒径比,%;

犠犽———粒径为犽(μm)颗粒的体积与全部试样颗粒体积之比,%;

狀———试样颗粒粒径在45.0μm~165.0μm范围内,狀=165;试样颗粒粒径在24.0μm~44.0μm

范围内,狀=44;

犻———试样颗粒粒径在45.0μm~165.0μm范围内,犻=45;试样颗粒粒径在24.0μm~44.0μm

范围内,犻=24。

6.2.3.2平均粒径

平均粒径按式(2)计算:

犱=∑

犽=1犱

…………(2)

式中:

犱———所统计的一定数量介质颗粒的平均粒径,单位为微米(μm);

犱犽———单个颗粒的粒径,单位为微米(μm);

犖———所统计的介质颗粒的数目。

在重复性条件下获得的三次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。

6.3最高流速

6.3.1样品处理

方法同6.1.1。

6.3.2样品装柱

选用1.60cm×20.00cm的层析柱,堵住柱子出口,将介质与水的混合浆液倒入层析柱中,静置,

控制介质床层高度为10.00cm±0.20cm,柱子上端充满水。打开柱子入口,以0.5mL/min的流速连

续向柱中通入10个柱体积的三级水,床层稳定后即可进行测试。

6.3.3样品测定

将层析柱连入中低压层析系统。测定时,从零开始设定一定流速狏狓(mL/min),保持该流速5min

后,记录此时柱压狆狓(MPa)。继续增加流速,并测定相应流速下的柱压。直到压力达到0.10MPa为

止,此时对应流速记录为狏0.1。

犌犅/犜38170—2019

6.3.4结果计算

最高流速按式(3)计算:

犉max=60

狏0.1

…………(3)

式中:

犉max———最高流速,单位为厘米每小时(cm/h);

狏0.1———在0.10MPa压力下的体积流速,单位为毫升每分(mL/min);

犛———层析柱截面积,单位为平方厘米(cm2);

60———分钟转化为小时的换算系数。

在重复性条件下获得的三次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。

6.4固含量

6.4.1样品处理

方法同6.1.1。

6.4.2样品称量

将5mL琼脂糖分离介质与水的混合体系装入带10μm孔径筛板的离心柱内,置于离心机,在

2000r/min下离心5min。取出离心管,将样品小心倒入称量瓶内,盖严。在已恒重的两个称量瓶中

分别称入1.0g上述分离介质精确至0.1mg。

6.4.3样品烘干称量

将称量瓶开盖置于烘箱中,于105.0℃干燥至恒重。将称量瓶盖严,取出置于干燥器内,冷却

30min至室温,称量。

6.4.4结果计算

固含量按式(4)计算:

犠=犿2-犿0

犿1-犿0×100

…………(4)

式中:

犠———固含量,%;

犿1———干燥前称量瓶加试样质量,单位为克(g);

犿2———干燥后称量瓶加试样质量,单位为克(g);

犿0———称量瓶质量,单位为克(g)。

在重复性条件下获得的三次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。

6.5分配系数犓犪狏

6.5.1溶液配制

6.5.1.11%(体积分数)丙酮溶液

准确量取0.1mL丙酮,加水混合,定容至10mL。

6.5.1.22犿犵/犿犔葡聚糖溶液

准确称取2mg葡聚糖,加水混合,定容至1mL。

犌犅/犜38170—2019

6.5.1.3缓冲液,

狆犎7.0

准确称取10.93g十二水合磷酸氢二钠、3.04g二水合磷酸二氢钠和8.76gNaCl,加水溶解,调

pH

为7.0,最后定容至1000mL。

6.5.2样品处理

方法同6.1.1。

6.5.3样品装柱

选用1.00cm×30.00cm的层析柱,将介质与水的混合浆液倒入层析柱中,堵住柱子出口,静置,

控制介质床层高度为30.00cm±0.20cm。打开柱子出入口,以一定流速连续向柱中通入10个柱体积

的三级水,床层稳定后即可进行测试。对于90μm介质,流速为9.0mL/min,对于34μm介质,流速为

6.0mL/min。

6.5.4样品测定

用缓冲液以1.0mL/min的流速平衡层析柱至示差检测器信号基线平衡。上样1%丙酮溶液测定

丙酮的洗脱体积犞i,上样相对分子质量犕p=2000000葡聚糖测定洗脱体积犞o。再将不同相对分子质

量的葡聚糖单独上样:对于4%琼脂糖分离介质依次是葡聚糖犕p=200000,葡聚糖犕p=100000,葡聚

糖犕p=20000;对于6%琼脂糖分离介质依次是葡聚糖犕p=200000,葡聚糖犕p=50000,葡聚糖犕p

=10000。所有葡聚糖样品浓度为2.0mg/mL。上样量均为200μL。

6.5.5结果计算

分配系数犓av按式(5)计算:

犓av=犞e-犞o

犞i-犞o

…………(5)

式中:

犞e———各样品的洗脱体积,单位为毫升(mL);

犞i———丙酮的洗脱体积,单位为毫升(mL);

犞o———相对分子质量犕p=2000000葡聚糖洗脱体积,单位为毫升(mL)。

在重复性条件下获得的三次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。

6.6非特异性吸附量

6.6.1溶液配制

6.6.1.1缓冲液犃,

狆犎7.0

准确称取4.37gNa2HPO4·12H2O和1.22gNaH2PO4·2H2O,加三级水溶解,调

pH

为7.0,最

后定容至1000mL,用0.45μm过滤膜进行过滤。

6.6.1.2缓冲液犅,

狆犎7.0

准确称取4.37gNa2HPO4·12H2O和1.22gNaH2PO4·2H2O和8.76gNaCl,加三级水溶解,

pH

为7.0,最后定容至1000mL,用0.45μm过滤膜进行过滤。

6.6.1.32.0犿犵/犿犔细胞色素犆溶液

准确称取200.0mg细胞色素C于100mL容量瓶,用10mL缓冲液A溶解,定容,配成2.0mg/mL的

犌犅/犜38170—2019

标准储备液。上样前用0.45μm过滤膜进行过滤。

6.6.1.4细胞色素犆标准工作溶液

分别取0.00mL、2.50mL、5.00mL、12.50mL、25.00mL、40.00mL细胞色素C标准储备溶液至

100mL容量瓶中,用缓冲液A溶液稀释至刻度,配成0.00mg/mL、0.05mg/mL、0.10mg/mL、

0.25mg/mL、0.50mg/mL、0.80mg

/mL标准工作溶液。

6.6.2样品处理

方法同6.1.1。

6.6.3样品装柱

选用1.60cm×20.00cm的层析柱,堵住柱子出口,将介质与水的混合浆液倒入层析柱中,静置,

控制介质床层高度为5.00cm±0.20cm。打开柱子入口,以1.0mL/min的流速连续向柱中通入10个

柱体积的三级水,床层稳定后即可进行测试。

6.6.4样品测定

以缓冲液A平衡,流速为2.0mL/min,蛋白上样5mL。经缓冲液A淋洗至淋洗液没有蛋白出现,

再经缓冲液B洗脱,收集对应洗脱峰。记录洗脱峰体积犞E(mL)。用紫外分光光度计检测标准工作溶

液和洗脱峰在280nm处的吸光度犃280,以标准工作溶液的吸光度与蛋白浓度做标准曲线,通过标准曲

线定量洗脱峰蛋白浓度。

6.6.5结果计算

非特异性吸附量按式(6)计算:

犠N=犆E犞E

犞gel

×1000…………(6)

式中:

犠N———非特异性吸附量,单位为微克每毫升(

μg

/mL);

犆E———洗脱峰蛋白浓度,单位为毫克每毫升(

mg

/mL),由标准曲线计算出;

犞E———洗脱峰体积,单位为毫升(mL);

犞gel———琼脂糖分离介质的体积,单位为毫升(mL)。

在重复性条件下获得的三次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。

6.7菌落总数

6.7.1样品前处理

方法同6.1.1。

6.7.2样品测定

参照《中华人民共和国药典》(2015年版)(1105)非无菌产品微生物限度检查———微生物计数法进

行。取1mL抽干介质,加入1mL三级水,采用涡旋混合器混匀样品。将含有30mL胰蛋白胨大豆琼

脂培养基的锥形瓶121.0℃灭菌20min,放入40.0℃恒温箱中,待培养基冷却到40.0℃时,用微量移液

器吸取1mL混匀后的样品加入到该锥形瓶中,混匀,把混合物倒入培养皿中,盖好上盖。在室温下使

混合物凝固。把培养皿置于恒温箱中35.0℃孵育5d。

犌犅/犜38170—2019

6.7.3结果计算

孵育期后检查培养皿,计数菌落形成单位数(CFU)。

在重复性条件下获得的三次独立测定结果的绝对差值应不超过5CFU/mL悬浮液。

6.85羟甲基糠醛脱落量

6.8.1溶液配制

6.8.1.110%(体积分数)甲醇水溶液

准确量取100mL色谱纯无水甲醇,与900mL二级水混合均匀,再用0.22μm孔径的滤膜过滤,超

声除气泡。

6.8.1.25羟甲基糠醛标准储备溶液

称取20.0mg5羟甲基糠醛标准物质于100mL容量瓶,用10mL10%甲醇水溶液溶解,定容,配

成0.20mg/mL的标准储备液。

6.8.1.31犿犿狅犾/犔盐酸溶液,狆犎3.0

量取0.083mL浓盐酸(12mol/L)稀释定容为1000mL,调节

pH

为3.0。

6.8.1.4100犿犿狅犾/犔氢氧化钠溶液,狆犎13.0

称取4.00g氢氧化钠固体,溶于100mL三级水中,待冷却至室温后用三级水定容为1000mL,调

pH

为13.0。

6.8.1.5标准工作溶液

分别吸取5羟甲基糠醛标准储备溶液5μL、15μL、25μL、40μL、50μL、100μL、1mL、2mL至

100mL容量瓶中,用10%甲醇水溶液稀释至刻度,配成0.01

μg

/mL、0.03

μg

/mL、0.05

μg

/mL、

0.08

μg

/mL、0.10

μg

/mL、0.20

μg

/mL、1.00

μg

/mL、2.00

μg

/mL标准工作溶液。现配现用。

6.8.2样品处理

清洗方法同6.1.1。然后取若干份1.00g抽干琼脂糖分离介质置于带盖玻璃试管内。分别取

10mLpH3.0、pH13.0的溶液置于各试管内,样品管在40.0℃条件下培养。7d后,将上层清液转移

到干净的试管内。

上层清液经旋转蒸发(60.0℃,50r/min),定容至2mL,加入等体积12mol/L盐酸,100.0℃水解

1h。定容至5mL。用0.45μm的滤膜过滤,得到样品待测液。

6.8.3样品测定

高效液相色谱条件:色谱柱选择C18,5μm,250mm×4.6mm(内径);流动相是10%甲醇水溶液;

流速1.0mL/min;检测波长285nm;柱温30.0℃;进样量10μL。

以上述高效液相色谱条件对标准工作溶液和样品待测液进行检测。记录标准工作溶液的保留时间

以及峰面积,以峰面积对相应浓度绘制标准工作曲线。以标准工作溶液的保留时间对样品进行定性,并

记录下该保留时间处峰的面积,用标准工作曲线对样品进行定量。

犌犅/犜38170—2019

6.8.4结果计算

5羟甲基糠醛脱落量按式(7)计算:

犡=

犆犞

犿×1.4

…………(7)

式中:

犡———介质中5羟甲基糠醛的脱落量,单位为微克每毫升(

μg

/mL);

犆———从工作曲线求得的试样溶液中5羟甲基糠醛的浓度,单位为微克每毫升(

μg

/mL);

犞———试样经盐酸水解后最终的定容体积,单位为毫升(mL);

犿———称取的琼脂糖分离介质的质量,单位为克(g);

1.4———琼脂糖分离介质质量转化为体积的换算系数。

在重复性条件下获得的三次独立测定结果的绝对差值不得超过算术平均值的10%。

7检验规则

7.1组批

同一工艺周期生产,质量均一的产品为一批。

7.2抽样

按GB/T5475的规定进行。

7.3出厂检验

每批产品出厂前应进行检验,检验合格的产品方可出厂。出厂检验项目为第5章中规定的

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