人民医院检验科PCR室作业指导书

目录

序号主题内容代号页号

1XX-3-PR-017

PCR实验室的设置及管理

2XX-3-PR-028

PCR实验室工作制度

3XX-3-PR-039

PCR实验室内务管理制度

4XX-3-PR-0410

PCR实验室人员的配置及管理

5XX-3-PR-0512

PCR实验室清洁程序

6XX-3-PR-0613

PCR标本唯•标识编号规则

7XX-3-PR-0714

PCR基因扩增实验室的要求

8XX-3-PR-0817

PCR废弃物的处理程序

9XX-3-PR-0918

基因扩增检测及结果分析

10XX-3-PR-1021

临床标本的保存操作程序

11XX-3-PR-1122

标本的采集运送接收程序

12XX-3-PR-1224

PCR生物防护措施

13XX-3-PR-1325

PCR实验室化学试剂配

14XX-3-PR-1426

PCR实验室记录管理制度

15XX-3-PR-1528

PCR应急处理程序

16XX-3-PR-1630

PCR试剂的质检标准操作程序

17XX-3-PR-1731

PCR消耗品进购质检贮存程序

18XX-3-PR-1833

PCR室内质量控制操作程序

19XX-3-PR-1935

PCR室间质量控制操作程序

20XX-3-PR-2036

PCR温度校准标准操作程序

21XX-3-PR-2137

核酸扩增荧光仪操作维护规程

22XX-3-PR-2243

干式恒温器操作维护规程

23XX-3-PR-2345

离心机操作维护规程

24XX-3-PR-2447

冰箱操作维护规程

25XX-3-PR-2549

生物安全柜操作维护规程

26XX-3-PR-2651

移液器操作维护规程

27XX-3-PR-2754

沙眼衣原体核酸扩增荧光检测

28XX-3-PR-2856

乙肝病毒核酸扩增荧光检测

29XX-3-PR-2958

丙肝病毒核酸扩增荧光检测

30XX-3-PR-3060

结核杆菌核酸扩增荧光检测

31XX-3-PR-3162

高速冷冻离心机操作维护规程

附录表格

检验科基因检测实验室平面图XX/001

XX/002

实验室主要负责人简历表

XX/003

PCR实验室工作人员一览表

XX/004

PCR扩增接收标本记录表

XX/005

拒收标本记录本

XX/006

标本超低温保存记录表

XX/007

PCR试剂购买记录表

XX/008

试剂验收记录表

XX/009

PCR室特殊耗材验收记录表

XX/010

普通耗材验收记录表

XX/011

室间质评记录表

PCR室内质控记录表XX/012

室内质控图XX/013

XX/014

PCR实验室环境温湿度记录表

XX/015

冰箱温度质控图

XX/016

仪器使用记录表

XX/017

仪器设备维护和校准记录表

紫外消毒车消毒记录表XX/018

XX/019

应急处理登记表

PCR废血标本处理交接表XX/020

垃圾处理记录表XX/021

实验室清洁消毒记录表XX/022

PCR检验报告单XX/023

XX/024

耗材进购记录表

XX/025

试剂耗材供应商一览表

修订页

序号文件编号页码需更改的内容更改内容批准人批准日期

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20

PCR实验室的设置及管理

i.目的：建立实验室的合理设置和科学管理，防止实验污染，保证检测结果的可靠性。

2.适用范围：本程序适用于分子诊断室的设置、工作流程和日常管理等。

3.负责人：

4.细则：

4.1分子诊断室为检验科下设的专业实验室，从事临床标本的基因扩增检测及相关科研工作。

4.2本实验室采用实时荧光定量PCR技术作为临床基因诊断的主要手段，实验室分为三个区：试剂准备区

（第一区）、标本处理区（第二区）、扩增分析区（第三区）。每一工作区配备专用的设备、仪器、辅助设施、

耗材、清洁用品、办公用品、专用工作服，并有明显的区分标识。各区标签颜色：红色（第一区）、白色或

绿色（第二区）、蓝色（第三区）；专用工作服：粉红色（第一区）、白色（第二区）、蓝色（第三区）。标本

的接收则在检验科标本接收处进行。

4.3各工作区专用的仪器设备、办公用品、工作服、实验耗材和清洁用具等，不可混用。

4.4各工作区配置、功能和内务管理见各相关SOP文件。

4.5严格遵守从“试剂准备区一标本处理区一扩增分析区”的单一流向制度，不得逆向进入前一工作区。

4.6非本实验室工作人员，未经许可不得入内；进修、实习或其他科室人员因科研活动需要，进入实验区

域（试剂准备区、标本处理区、扩增分析区）需首先熟悉本程序的各项规定并严格遵守执行，在本实验室

人员监督指导下进行。

4.7实验完毕后做好清洁消毒工作。

5.本文涉及以下图表：

1.实验室设计平面图

PCR实验室工作制度

1.目的：保持良好的工作环境，以确保检测结果的可靠性，防止交叉污染，防止差错、事故及纠纷的

发生。

2.适用范围：所有本实验室人员。

3.负责人：

4.细则：

4.1本实验室进行临床基因扩增检测及相关实验工作，不得进行其它实验操作。

4.2各区的用品不得混用。

4.3在各区的实验操作过程中，操作者必须戴手套和帽子，严格按照操作规程。

4.4试剂准备区只能进行试剂的贮存及配制等相关操作（见相关SOP文件）。

4.5标本处理区只能进行临床标本的保存，核酸提取、保存及其加入至扩增反应管和测定RNA时cDNA的

合成（见相关SOP文件）。

4.6扩增分析区只能进行DNA或cDNA的扩增、实时荧光PCR扩增产物的分析（见相关SOP文件）。

4.7进行实验时严格执行本实验室的各项操作规程，及时做好各种操作记录，力求准确、可靠。实验完

毕，做好清洁、整理及分析统计等工作。

4.8室内仪器由专人负责，未经许可.，不得随意使用或挪用；爱护使用仪器，定期进行保养与维修。

4.9爱护医院财产，注意安全；离开实验室前应关好门窗，检查水、电等。

PCR实验室内务管理制度

i.目的：保证实验室日常内务管理及清洁工作顺利进行。

2.适用范围：实验室相关人员及医院相关清洁工人。

3.负责人：

4.细则：

4.1非本室工作人员未经允许不得进入实验室。

4.2各区的用品不得混用。

4.3实验人员要有强烈的时间观念，按时上下班，不迟到、早退。

4.4进入实验室的工作人员必须遵守实验室的单一流向的规定，禁止逆向走动。

4.5所有仪器（如PCR扩增仪）须有专人负责，并有使用维护记录；实验人员必须熟悉仪器性能

后方允许操作，并严格遵守操作规程。

4.6所有试剂进购、配制、质检、使用均要有记录，未经允许不得随意带出本实验室。

4.7每天了解仪器运转情况及试剂使用情况，确保仪器整洁安全，试剂合格使用.

4.8各区的各种清洁消毒均应有记录，工作衣消毒时注意各区应分开进行处理。

4.9注意保持实验室卫生整洁，严禁在室内抽烟、吃零食，非实验操作人员应尽量少入。4.10

下班前检查门、窗、水、电，节假日应指定人员负责检查实验室的仪器、设备。

PCR实验室人员的配置及管理

1.目的：保证实验室有足够数量的合格的具备开展该类实验能力的实验人员。

2.适用范围：适用于实验室人员配置、管理、培训及考核。

3.负责人：

4.细则：

4.1人员要求

4.1.I本实验室工作人员应为医学检验专业或相关专业毕业，具有中级以上技术职称或专科以

上学历。

4.1.2实验室工作人员应参加卫生部或省临检中心举办的PCR技术培训，并取得合格证。

4.1.3时于新进入本室的人员，如尚未取得PCR技术培训合格证，应在实验室有培训合格证的

上级技术人员的指导下进行实验工作，实验报告由有资格人员出具，并应在最短的时间内取得上岗

培训合格证。

4.2人员配置

4.2.1实验室应根据工作需要配备足够的工作人员，目前实验室有主管技师2人、技师1人，3

人都已获得培训合格证，视工作量的增加和业务发展需要，会适当增加工作人员。

4.2.2各级技术人员履行相应的工作职责。

4.3人员培训及考核

4.3.1实验室负责人或负责人指定人员参加每年卫生部PCR室间质评总结会。

4.3.2实验室工作人员每1〜2年至少参加1次PCR技术的省级或国家级继续教育项目，参加相

关学术交流会议。

4.3.3安排未取得上岗培训合格证的工作人员在合适的时间内参加技术培训。

4.3.4科室不定期组织实验室内部实验人员学习、更新核酸扩增方面的相关知识，提升自身的理

论学习水平。特别是在标本接收区采血、接收标本的人员，需定期对其进行有关核酸扩增技术，标

本采集、保存、运输等知识的培训。•些科室的送检标本由该科室的人员送到标本接收区，对这些

临床医护人员也要定期进行有关核酸扩增技术，标本采集、保存、运输等知识的培训。

4.3.5本实验室工作人员每年进行考核一次，考核内容：

a）日常工作质量

b）室内质控测评

c）室间质控测评

d）在抱怨处理中的表现

4.3.6本实验室工作人员实行严格奖惩制度，有下列表现者可受奖：

a）工作质量高，质控测评成绩优秀者

b）有科研能力，并有一定数量和质量的论文发表

c）有独创性工作成果,经鉴定认可者

d）受到有关部门或群众嘉奖者

有下列情况者将受到惩处：

a）工作质量问题较多，质控测评成绩不合格；

b）不遵守规章制度并造成一定影响；

c）不求上进。

4.3.7本实验室工作人员奖惩方法分精神及物质两类，经实验室上报医院及有关部门批准后执行。

4.3.8本实验室工作人员均建立业绩档案，实行能进能出制度，不断吸收高质量人员，加强培训和提

高,对于不适合本室工作的人员要及时调离。

4.4人员管理

4.4.1实验室建立所有工作人员的技术档案，包括：学历、任职资格、发表论文、研究成果、培

训等相关材料复印件。

4.4.2技术档案分文本档案和电子档案，文本档案每年更新1次，电子档案随时更新。

5.本文涉及以下表格

实验室主要负责人简历表

PCR实验室工作人员一览表

培训申请表

年度培训计划表

培训记录表

员工培训履历表

人员档案卡

PCR实验室清洁程序

i.目的：保证实验室环境的整洁，防止污染。

2.适用范围：适于实验室工作环境、实验台面、工作服、移液器等的清洁消毒工作。

3.负责人：操作人：

4.细则：

4.1实验室地面必须平整、干净，通道要利于通行，没有无用的物品阻碍。

4.2合理规划实验室内物品，做到摆放整齐、有序，无用的或使用效率低的物品放置到储存处，

常用的物品要容易寻找到。

4.3抽屉、柜子、文件类物品要作好标记，以方便识别。

4.4实验结束后用2%戊二醛对台面进行清洁，并用移动紫外灯进行消毒。

4.5每天对使用过的移液器用75%酒精进行擦拭。每周1次对移液器咀进行75%酒精浸泡15分钟左

右，若使用过程中发生污染应随时浸泡处理。

4.6实验过程中如发生标本或试剂外溅，应立即用2%戊二醛滴上，滤纸盖上半小时，然后用酒精

擦洗，并用移动紫外灯消毒。

4.7每天实验前开启各区的通风系统，各区实验结束后，分别打开传递窗紫外灯、移动紫外灯（对

实验台面消毒）、天花板紫外灯消毒实验室，每次开启30〜60分钟。

4.8待紫外灯消毒时间足够后，依次关闭各区紫外灯并记录。

4.9依次清洁三个区的实验台面和地面，各区清洁消毒工具均专用，不可混用，注意按照单一方

向流程的原则来进行清洁。

4.10处理好各区废弃物，交医院集中处理。

4.11每周将工作服交院洗衣房洗涤消毒，不同实验区的工作服隔开洗涤。

5.本文涉及以下表格

实验室清洁消毒记录表

垃圾处理记录表

PCR标本唯一标识编号规则

♦目的：保证标本编号的唯一性，也是准确发放报告的基础。

2.适用范围：使用核酸扩增荧光检测实验室所开展的四种检测项目：乙型肝炎病毒、丙型肝炎病毒、结核

杆菌、沙眼衣原体。

3.负责人：操作人：

4.程序：

4.1按检测日期分类标记

根据标本送检的日期，每天的标本对应标记•种唯一的代号。如当天为2005年3月1日，则编为

05030

4.2按检测类型分类标记

根据检测项目的不同，每种检测项目对应标记一种唯一的代号。如乙型肝炎病毒标记为B,丙型肝炎

病毒标记为HC,结核杆菌标记为T,沙眼衣原体为C。

4.3按验单接收顺序编号

在同种检测类型的验单中，按验单顺序编号。如第一个检测乙型肝炎病毒的验单编为B01,第二个检

测乙型肝炎病毒的验单编为B02,第三个检测结核的验单编为B03等。

4.4特殊标本的编号

如有特殊情况，应在标记前面增加特异字母区别开，如住院的单和门诊的单、其它医院送来的单和本

医院的单要区分开等。

4.5编号步骤

a）对当天送来的标本，根据编号的基本原则编号，每个样本的每个检测项目对应一个唯的编号（如

050301T04）..

b）用笔在每张检验申请单和对应的样品管上作好相同的标记。

c）做好标本的接收记录，每个样本的记录都应包括以下信息：接收时间、医院、科室、送检医生、

患者姓名、性别、年龄、标本类别、标本状态、送标本者、接收人、检验单号、标本唯一统编号等。

d）处理好样品、点样后，将反应管放入扩增仪上开始扩增。

f）扩增得到结果后，先在统计簿上填入结果，作好记录，再一一把实验结果填入相应申请单。

g）发放检验报告单。

5.本文涉及以下图表：

PCR扩增接收标本记录表

PCR基因扩增实验室的要求

1.目的：规定在各区内所进行的工作及其操作。

2.适用范围：所有在本区内进行的工作。

3.负责人：操作人：

4.程序：

实验室分四区:标本接收区；试剂贮存、准备区；标本制备区；扩增区。进入各区严格按

照单一方向进行，即试剂贮存、准备区——标本接收区——标本制备区——扩增区。各区及

其设备、物品必须有明确的标记，严禁混用。

进入PCR实验室的工作人员（含卫生员），都必须遵守实验室的规则，尤其严格遵守进入

PCR实验室的唯一流向。不可进入PCR扩增后区打扫卫生，再返回扩增前区工作。防止非本

室工作人员串岗，进入本室。尤其不得为找人，而逆向误入PCR实验室。

总则

（1）PCR实验室工作人员应具备医学检验、微生物检验基本知识，大专以上学历，

并受过PCR实验的基础知识和技能培训。

（2）PCR实验室分试剂准备，样本准备，PCR扩增和产物检测四个室，各室的实验物

品（含加样器，试管架，吸头，记录纸，笔等），不得混用，须贴上标签予以区

别。

（3）实验室技术人员必须严格按照PCR实验室操作程序进行，包括实验室擦洗。台

面消毒，离心管，吸头的无菌灭活准备，仪器使用和废弃物处理等。

（4）进入实验室的工作人员必须更换各室不同的工作服（含帽和鞋），勤换洗工作服,

以及遵守实验室的唯一流向的规定，严禁反向流动。

（5）进入PCR实验室后区的物品不许带进PCR实验室前区。每天实验开始前，必须

清洁地面和消毒实验室前区。实验结束应紫外线消毒实验台面，产物分析室紫

外灯最好彻夜开启，排风扇应昼夜工作。每天下班前处理好废物，应关好水、

电、煤气和门窗。

（6）定期校准和维修PCR仪、酶标仪及离心机、水浴箱等仪器设备。

（7）实验室内不得饮食、吸烟。

4.1标本接收区

4.1.1实验人员进入该区须穿本区白色工作服，接收标本须戴一次性手套。

4.1.2记录实验室干、湿度，绘制冰箱温度图。使用带有本区标识的记录本、纸和笔，每

项记录，书写工整详细。

4.1.3对送检的标本实行双签制度，并仔细检查是否符合检测要求，对有不符合要求的标本

及时通知相关科室重新采样，并作记录，每份标本需给出唯一性编号。

4.1.4本区所有废弃物分类装入垃圾袋，封好，在垃圾筐上套好新的垃圾袋，将垃圾带出实

验室。

4.1.5每次实验结束后，清洁实验台及地面打开紫外灯消毒30分钟。记录紫外灯使用情况。

4.2试剂贮存、准备区

4.2.5使用带有本区标识的记录本、纸和笔，每项记录，书写工整详细。

4.2.6准备好的试剂送入下一区，还原实验台面，将本区所有废弃物分类装入垃圾袋，封

口，在垃圾筐上套好新的垃圾袋，将本区垃圾带出实验室。

4.2.7白色工作服留在本区。

4.2.8本区维持相对正压状态（开启缓冲区的排气扇）。实验结束后，清洁实验台及地面打

开紫外灯消毒30分钟。

4.3标本制备区

4.3.1实验人员进入该区须在缓冲区更换专用蓝色工作服及拖鞋。实验中须使用一次性帽

子，戴手套，手套在实验过程中疑有污染应立即更换。

4.3.2将传入本区的试剂放入冰箱冷冻室试剂存放专区暂存。记录实验室干、湿度，绘制冰

箱温度图。

4.3.3将冰箱内二周前的标本密封丢入垃圾篦，然后记录标本的保存情况。

4.3.4使用带有本区标识的记录本、纸和笔，每项记录，书写工整详细。

4.3.5按试剂盒说明书对标本进行处理，将处理好的标本在超净工作台内加样，记录标本的

处理过程。

4.3.6将加样后的试剂传送下一区，还原实验台面，关闭所有仪器，记录仪器使用时间和运

行状态。

4.3.7使用过的离心管、吸头须置于盛有10%84液的废液缸中，实验结束后方丢入垃圾袋,

患者样品应按有生物传染性危险品对待。

4.3.8将本区所有废弃物分类装入垃圾袋，封口，在垃圾筐上套好新的垃圾袋，将垃圾带出

本区。

4.3.9将蓝色工作服留在本区。

4.3.10本区应避免不必要的走动，同时维持相对正压状态，实验结束后，清洁实验台及地

面打开紫外灯消毒30分钟。

4.4扩增产物检测区

4.4.1实验人员进入该区须在缓冲区更换专用粉色工作服及拖鞋。

4.4.2记录实验室干、湿度，绘制冰箱温度图。

4.4.3使用带有本区标识的记录本、纸和笔，每项记录，书写工整详细。

4.4.4将传入本区加样后的试剂上机扩增。

4.4.5扩增完成后，记录检测结果，及时发放报告单，记录仪器使用时间和运行状态。

4.4.6将本区所有废弃物分类装入垃圾袋，封口，在垃圾筐上套好新的垃圾袋，然后将垃圾

带出实验室。

4.4.7将粉色工作服留在本室再离开实验室

4.4.8严禁本区物品带至其他区，该区需维持负压状态，排气扇24小时排气，实验结束后

清洁该区打开紫外灯照射，最好整夜消毒，记录紫外灯使用情况。

5.本文涉及以下表格

PCR实验室环境温湿度记录表

冰箱温度质控图

实验室清洁消毒记录表

垃圾处理记录表

紫外消毒车消毒记录表

PCR废弃物的处理程序

i.目的：保证实验室、实验人员和外部环境的安全。

2.适用范围：核酸扩增荧光检测实验室常用化学试剂（NaOH、EDTA、乙醉、生理盐水等）、

实验室废弃物的处理；

3.负责人：操作人：

4.细则：

4.1科室职责应对本室工作人员讲明本程序在预防交叉、实验室污染及切断传播途径中的重

要性，并要求严格执行。

4.2实验室所有垃圾，装入专用污物袋内，各区备有：生活垃圾袋（黑色）及生物污染垃圾

袋（黄色）。使用过的一次性消耗品（如试管、吸头、离心管、等），先放入10%次氯酸钠溶

液中浸泡2〜4小时后，再放入黄色垃圾袋内，使用过的手套、鞋套等直接放入黄色垃圾袋

内交医院集中处理。

4.3夹取标本的工具，如钳、镶、接种环、吸管等，用后均应消毒清洁，进行微生物检验时，

应重新灭菌，金属工具可烧灼灭菌或消毒液浸泡；玻璃制品干热或压力蒸汽灭菌。

4.4一次性塑料痰盂，用2%戊二醛液浸泡2〜4小时后，放入黄色垃圾袋内交医院集中处理。

4.5废弃标本如血、尿、胸水、腹水、脑脊液、唾液、胃液、肠液、关节腔液等用10%的84

液浸泡2〜4小时后，交医院集中处理。

4.6盛标本的容器，若为一次性使用的纸质容器及其外面包被的废纸，放入污物袋里交医院

处理;对可再次使用的玻璃、塑料或搪瓷容器，煮沸15分钟或加入10%次氯酸钠溶液浸泡2〜

4小时，消毒液每日更换，消毒后用洗涤剂及流水刷洗，沥干，用于微生物培养采样者，用

压力蒸汽灭菌后备用。

4.7废弃标本及其容器装入黄色垃圾袋内、封闭，交医院污物处理中心处理。

4.8日常生活垃圾如纸屑等按一般垃圾交医院处理。

5.本文涉及以下表格

PCR废血标本处理交接表

基因扩增检测实验及结果分析

1、目的：保证扩增及结果分析的标准化、规范化。

2.适用范围：适用于本室使用的普通离心机。

3.负责人：肖静操作人：胡可存蒋艺勤

4、标准程序：

4.1基因扩增检测标准程序：扩增反应前须先在样本输入模板上按照事先排好的标本位置

进行设置。每次实验除待检标本，还需包括：阴性对照、阳性对照、室内质控品各一份，一

组阳性标准品（4个梯度10%10\10\10'）o

4.1.1打开电脑电源开关，进入WindowsNT界面。

4.1.2接着打开PCR仪电源开关，预热5分钟。

4.1.3双击电脑桌面的ABIPrism5700SDSSoftware图标进入程序设置界面。

4.1.4单击“文件”菜单中的“新建”命令，（或单击工具栏中的“新建”按扭）。在测定、

容器和模板中做相应的选择，点击0K。

4.1.5应用检测管理程序，并将其添加到样品板文档中。

4.1.6检测反应管，

4.1.7根据当次实验所需条件编辑时间和温度。运行样品板文档。

4.2结果分析标准程序：

应按以下步骤进行：全部曲线——阴性对照——阳性对照——阳性室内质控品——阳性标

准品——逐个分析（标出阳性标本和可疑标本）——调整参数，获得较好的标准曲线，显示

定量结果——登记，发报告。

4.2.1整体曲线的观察：将所有曲线选中进行整体观察

1）观察是否存在污染情况（包括标本污染和试剂污染），特别应注意大量曲线

在同•Ct值出现上涨的情况。

2）观察是否有光路传导阻滞或电压波动等机器原因形成的异常曲线。

4.2.2阴性对照的分析

阴性对照：试剂中加入与待检标本进行同样处理的已知阴性标本。

作用：用以监测实验室和前处理过程中是否存在污染。

4.2.3阳性对照的分析

阳性对照：试剂中加入与待检标本进行同样处理的已知阳性标本。

作用：用以监测实验能否正常检出阳性标本，避免假阴性的出现。

4.2.4室内质控品的分析

室内质控品：试剂中加入与待检标本进行同样处理的已知浓度室内质控品。

作用：用以监控H常实验的精密度。

4.2.5阳性标准品的分析

1）各梯度曲线的分布是否均匀，若各梯度曲线均未分开，则表明阳模稀释可能存在问题,

提示实验中存在较大人为误差。

2）观察各曲线的Ct值是否在平日的正常位置。

情况1：若出现低拷贝标准品做不出，而各曲线Ct值均后移，则判断是否为试剂扩增效率

下降（如试剂过期或保存条件不合格）。

情况2：出现低拷贝标准品做不出，而高拷贝曲线Ct值均正常，则提示可能存在低拷贝阳

性标准品的降解情况。

3）每日必做10"标准品，用作以下三方面监控：一是否存在操作误差，如加样量过少等

原因导致10'标准品未能检出；二是否存在稀释后的梯度放置过久，低拷贝标准品降解的情

况；三是若高拷贝标准品出现Ct值后移，且能排除情况1、2,则判断是否为试剂灵敏度下

降。

4.2.6单个曲线的判断：逐个分析每条曲线，判断曲线的阴阳性或属可疑曲线。（可疑标本

是指曲线在25个Ct值后出现上涨且平台趋势不明显或上涨幅度比较低的标本。可疑标本要

第二天重做，两次结果一致则报阳性，否则结果报阴性。）

曲线观察内容：在基线选择2〜8时观察荧光强度（是否有三期特征）。并分别在DeltaRn

vs.Cycle、Ctvs.Wei1Number和Rnvs.Cycle这三种扩增图形式下分析数据。

4.2.7得出定量结果：调节基线和阈值以得到一较好的标准曲线。电脑据此曲线给出阳性

结果值。此时应排除某些阴性标本因荧光曲线假性上扬而得出的假阳性结果和某些弱阳性

标本因终末荧光值过低而显示的假阴性。

4.2.8发放报告：及时登记检测结果记录，发放临床报告。

4.3实验结果无效的判断标准：出现下述四种情况中的任何一种或多种，当次实验结果不可

发，查找原因，重做实验。

4.3.1阴性对照出现扩增。

4.3.2阳性对照无扩增。

4.3.3大批甚至所有的标本都扩增了。

4.3.4室内质控血清检测结果出现失控情况，实验失控的具体标准详见室内质控标准操作程

序。

4.4实验结果有效的判断标准：达到下列要求后，当次实验有效，可以发放结果。

4.4.1阴性对照没有扩增，阳性对照扩增。

4.4.2阳性标准品梯度曲线平滑均匀，斜率、截距和相关系数三个参数的数值均在范围内。

4.4.3室内质控血清检测结果处于在控状态，具体标准详见

5.本文涉及以下表格

室间质评记录表

PCR室内质控记录表

室内质控图

临床标本的保存操作程序

1.目的：临床标本正确保存，以便必要时复查。

2.适用范围：分子诊断室的所有临床检测标本。

3.负责人：操作人：

4.程序：

4.1处理前的标本保存

a）HBV：全血标本可4℃下短期（24h内）保存，长期保存则需分离出血清（血浆），保存于-20℃下。

d）HCV：在1小时内分离血清，吸取200田，加入20uRnasin,保存于-20℃。尽可能快的提取RNA。

c）TB：痰或胸腹水、脑脊液、脓液标本用于TB检测的短期保存可置于4℃下，长期保存则于-20℃下。

d）CT：标本短期（24h内）保存置于4c下，长期保存则需在-20C下。

4.2报告发出后的标本保存：

a）提取的核酸标本当天检测可置4℃保存，如当天不检测应置-20C保存。报告发出后第二天丢弃。

b）原始血清/血浆样本在报告发出后放入低温冰箱-20℃保存1个星期，以备复查。超过1个星期保存

期的标本山室负责人酌情处理，一般按生物传染性物品交医院统一处理。

c）血清/血浆标本放置低温冰箱保存时须有记录，按编号顺序存放，并由专人负责管理。

4.3特殊标本的处理：

对暂不检测的项目和规定时间外收到的零散样本，要随时登记和交班，以免漏检，遗失和延误检验。

对特殊样本或特殊病人的样本，实行“首接”负责制，所谓特殊样本是指难于采集的样本，以及特殊病

人的样本一律实行“首接”负责制，无论那位工作人员，一旦收到样本后，均须负其责任，不得以任何

借口推托，及时和正确保管和转送样本到有关实验室或有关人员，同时作交班记录和双签名。对于做长

期病情动态考察的病人标本一律置于-20C下长期保存，使用时再按需取出检测。

5.本文涉及以下图表：

PCR扩增接收标本记录表

拒收标本记录本

标本超低温保存记录表

临床标本的采集、运送、接收程序

1.目的：规范临床待检标本的正确采集、送检和处理。

2.适用范围：分子诊断室的所有临床检测标本。

3.负责人：操作人：

4.程序：

4.1标本的采集

4.1.1标本由临床各科室接受过临床基因扩增检测有关标本采集、保存、运输知识培训的医护人员采集并

送至实验室。

4.1.2标本采集要求

a）血液标本：用2ml真空采集管或1.5ml高压灭菌离心管采集血液标本，血标本采集后在2小时内送

达实验室（HCV采用EDTA抗凝的血浆）。离心（检验单与标本一道）后用一次性吸管吸取血清或血浆加

入经消毒的1.5ml的离心管中，编号。

b）痰标本：用带盖的无菌•次性塑料瓶收集清晨第一口痰标本送检。（对于无痰或少痰的患者，可用

45℃加温的100g/LNaCl水溶液雾化吸入或改变体位以使痰液易于咳出；对于小儿可以轻压胸骨柄上

方以诱导咳痰，用消毒棉拭子刺激喉部引起咳嗽反射，用棉拭子采集标本。）标本在室温下保存不能超

过24小时。

c）生殖道拭子：尿道或阴道分泌物由医生用专用取样拭子（灭菌，一次性）采集样本，及时送检。采

集生殖道拭子标本，要求男性病人在采样前2小时内不能排尿，采样时，将棉拭子伸入男性尿道及女

性宫颈口2〜3cm,转动一周以获得上皮细胞。

d）尿液：由病人自留尿液于无菌封闭的杯中送检。

e）脑脊液和胸腹水：由临床医生采集后放入消毒的试管中及时送检。

注意：所有上述用于临床标本采集的容器如试管或离心管，均应使用前高压灭菌和密封。

4.2标本的运送

标本采集后，密闭、标（贴）姓名，应尽可能快的送至检测实验室，如运送时间需2小时以上，必须用

冰盒送至实验室。

标本中如加入了适当的稳定剂，如用于RNA测定加入4moi/L异硫氟酸服盐（GITC）的血清（浆）标本和

用于DNA测定的EDTA抗凝血等，则可在室温下运送或邮寄。

4.5接收

4.5.1严格对各类样本的查对和双签制度，对病房各样本及时进行验收，查对，不符合要求的样本一律退

回，并有书面记录。

4.5.2分类验证

4.5.2.1一般内容

进入实验室的样本在进行编号、离心前，工作人员应再次认真查对姓名，联号，住院号，病区床

号，项目等。对不符合要求者应作记录，并及时通知采样科室，正确及时地补采样，以免延误病

人的检测结果报告。对书写不清楚的申请单，当事者要及时与病房联系（可电话），明确受检者姓

名，住院号，性别，年龄，病区，床号和检验项目等；并作相应记录。

4.5.2.2按检测项目验证标本

a）HBV：所需标本类型为未溶血的血清或血浆，注意血浆标本所用的抗凝剂，用EDTA-K,,不可

使用肝素。标本为全血时应及时分离出血浆保存。

b）IICV：同上，但标本为血清时，要在1小时内分离出血清用于检测。

c）TB：晨起第一U深部痰（不能为唾液）、胸腹水、脑脊液、脓液或穿刺液。

d）CT：尿道或阴道分泌物。

4.5.2.3实验室人员对标本进行查验，出现下表中不合要求的情况时，应拒收标本，登记并告知相关

科室。

类别拒收原因

1未正确使用抗凝剂的标本造成凝血的标本

2严重溶血

3严重脂血

4采血量不足（血清V200uL、全血VlmL）

5检测项目TB的标本是唾液而不是晨痰

6标本容器破裂，标本被污染

7标本的病人姓名、年龄、性别等与检验单不相符

8RNA检测，采样时间超过2小时

9其他可能严重影响检验结果的原因

4.5.2.4拒收程序

a）对拒收的不合格标本应在拒收标本记录本上登记。

b）填写不合格标本处置单，并随同申请单送返送检科室。

c）必要时电话告之相关科室医生或护士。

5.本文涉及以下图表：

PCR扩增接收标本记录表

PCR扩增拒收标本记录表

PCR生物安全防护措施

i.目的：预防工作人员在实验过程中被感染或污染。

2.适用范围：适用于本室所有工作人员。

3.负责人：操作人：

4.细则:

4.1实验人员在实施生物防护措施时，应严格遵守各项相应的规章制度，建立起强烈的生物防护意识。

4.2每天更换废液缸的2%戊二醛溶液，并保证2%戊二醛溶液用量为废液缸内总液量的五分之一左右。

配置消毒液时，正确量取足量的消毒剂（用量杯，保证浓度），水的用量也要正确，缸体密封性良好。

4.3实验台面日常清洁时使用75%的酒精擦拭。

4.4每区每次实验后紫外灯照射30〜60分钟，如有需要可延长照射时间。

4.5所有来自病人的血液或体液标本均应视作传染源，因此在标本的采集、运输过程中，标本容器应

完好无泄漏。

4.6处理标本时应穿工作服、戴手套，以免沾上皮肤。如手或其它部位的皮肤沾上血液或体液标本以

及试剂，应立即冲洗干净。有下列情况之一者，需另外消毒：手接触有传染性的微生物，水龙头、

水池肥皂可能被污染，工作服可能被大量细菌污染。消毒剂可用“84”消毒液。

4.7在实验过程中，病人标本（血液、体液）或试剂不慎溅入眼内应立即用清水洗。

4.8实验过程中在使用针具等锐器时，尽量小心防止受伤。若被锐器刺破时，应立即脱下手套，尽量

挤压伤处，使血流出，然后用碘酒、酒精消毒，必要时进行预防补救措施。

4.9在实验过程中病人标本（血液、体液）外漏时，应立即用2%戊二醛滴上，滤纸或纱布盖上半小时,

然后用酒精擦洗，并用紫外灯消毒。

4.10实验完毕离开时，应脱下所有该实验区个人防护装备。

4.11实验完毕后应对实验室进行紫外消毒。

4.12遇有意外事故应立即报告科室负责人，当事人应立即注射相关疫苗或进行预防性治疗，并进行医

学观察，严重者应报告院技术负责人。

5.本文涉及以下表格

紫外消毒车消毒记录表

实验室清洁消揖记录表

PCR实验室化学试剂配制程序

1.目的：保证实验中用到的各种溶液符合实验要求。

2.适用范围：核酸扩增荧光检测实验室常用溶液：4%NaOH溶液、75%酒精、消毒剂（三氯异氟尿酸或二氯

异氟尿酸钠）、2%戊二醛溶液等。

3.负责人：操作人：

4.程序：

4.4化学试剂的配制：

4.4.1用具：干燥洁净的250ml量桶-只，1000nli量桶-只，1000ml烧杯一只，三角烧瓶两只，天平一架,

100ml塑料试剂瓶、2000ml广口瓶各一只。

4.4.2配制步骤：

4.4.2.1配制4%NaOH溶液:

a）用天平称取4克分析纯的NaOH固体，置于一只三角烧瓶中。

b）用250nli量桶准确取100ml水，缓缓注入盛放NaOH固体的三角烧瓶中。

c）摇荡三角烧瓶使NaOH固体充分溶解。

d）然后缓缓倾倒入100ml塑料试剂瓶中密封保存备用。

4.4.2.2配制消毒剂:

a）一般桌面、器具和地面的消毒只要使有效氯达到5001ng/L,即可达到消毒作用。

b）消毒剂为粉状（20克/袋）,如配制-升的消毒剂溶液,则取500g,倒入烧杯中，缓缓加入消00ml

水充分溶解，备用。

c）如需加大消毒力度，则有效氯浓度加大。

4.4.2.3配制75%酒精溶液：

a）一般常规消毒的75%酒精由医院药剂科提供。

b）RNA提取的75%酒精的配制，试剂盒提供DEPC水，酒精用分析纯的无水酒精，根据当天的标本数量

进行配制。

4.4.2.4配制2%戊二醛溶液：

a）准确量取戊二醛原液20ml倒入1000ml烧杯中。

b）量取980ml水，缓缓倒入1000ml烧杯中，混匀，加至2000ml广口瓶中备用。

注意事项：每份配制好的溶液保质期为14天

PCR实验室记录管理制度

i、目的：确保检验资料的记录、保存状态在控

2、适用范围：实验过程中产生的数据、文本资料的记录

3.负责人：操作人：

4、工作程序：

4.1书面记录文件的管理：

4.1.1本实验室的书面记录包括：

001XX人民医院检验科基因检测实验室平面图------------编号XX/001

002实验室主要负责人简历表------------------------编号XX/002

003PCR实验室工作人员一览表一一编号XX/003

004PCR扩增接收标本记录表-------------------------编号XX/004

005拒收标本记录本------一编号XX/005

006标本超低温保存记录表--------------------------编号XX/006

007PCR试剂购买记录表-----------------------------编号XX/007

008试剂验收记录表--------------------------------编号XX/008

009PCR室特殊耗材验收记录表----------------------编号XX/009

010普通耗材验收记录表----------------------------编号XX/010

011室间质评记录表--------------------------------编号XX/011

012PCR室内质控记录表-----------------------------编号XX/012

013室内质控图------------------------------------编号XX/013

014PCR实验室环境温湿度记录表-------------------编号XX/014

015冰箱温度质控图--------------------------------编号XX/015

016仪器使用记录表--------------------------------编号XX/016

017仪器设备维护和校准记录表---------------------编号XX/017

018紫外消毒车消毒记录表--------------------------编号XX/018

019应急处理登记表--------------------------------编号XX/019

020PCR废血标木处理交接表------------------------编号XX/020

021垃圾处理记录表--------------------------------编号XX/021

022实验室清洁消毒记录表--------------------------编