痰标本及血培养

痰液是气管、支气管、肺泡所产生的分泌物。正常情况下此种分泌物甚少，病理情况下如肺部炎症、肺结核、肿瘤时，痰量增加，并有性状、成份改变。唾液和鼻咽分泌物虽可混入痰内，但并非痰的组成部分。

痰液检查的意义：①辅助诊断某些呼吸系统疾病，如哮喘、支气管扩张等；②诊确某些呼吸系统疾病，如肺结核、肺癌、肺吸虫等；③观察疗效和预后，如痰量和性状变化等。

因此，痰液检查很重要，而检查结果的准确性又与痰标本的收集是否正确有着密切的关系。笔者在总结多年实际工作经验的基础上，参考了一些资料，现将采取痰标本的方法与注意事项整理如下：

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根据检查目的收集容器，常用的容器有无色透明的塑料痰杯和广口玻璃瓶，而不应用纸盒或者有色的玻璃瓶或脏玻璃瓶。容器应洁净、干燥，不应有异物、污水等。如收集24小时痰液时，宜使用装有防腐剂的广口玻璃瓶，如留痰涂片作细菌学检查或留取痰培养时，应用消毒过的容器。容器外壁贴好标签，标明患者科别、床号、姓名等。

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呼吸系统疾病中传染病较多，如肺结核、流感，主要通过空气、飞沫、尘埃传播。因此，护士应衣帽整洁，认真戴好口罩，做好自身防护，以免发生院内感染。

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采集标本时要仔细核对申请项目、病员姓名、床号等，并向病人耐心解释检查的目的、重要性及留痰方法，以取得患者的信任和配合，否则是难以采取到合格的标本。

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采集时间一般以清晨较好，且第一口痰的价值较大，因为经过一夜的蓄积，一般清晨痰量较多，痰内细菌、脱落细胞也较多，因而能提高检查的阳性率。

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留痰时应嘱患者用清水漱口或刷牙后再用清水漱口，以减少口腔常存菌或杂物污染的机会。否则，有时未培养出真正的致病菌，反培养出杂菌，从而对诊疗产生误导。

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留痰时嘱患者深吸气，在呼气时用力咳嗽，并嘱其尽量咳出气管深处的痰，护士可协助患者拍击其背部，使附在气管、支气管、肺泡壁的痰液松动、脱落，更易于排出。吐痰时，应尽量防止唾液及鼻咽部分泌物混入，并及时送检。

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对于痰量少或无痰的患者，可将生理盐水加温至45℃左右后超声雾化吸入，使痰液稀薄、痰量增多而易于排出，常可达目的。

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支气管扩张症或肺脓肿患者，留痰前可体位引流，根据病变部位采取不同体位。原则是使病肺处于高位，使其引流支气管开口向下，持续约15～30分钟，体位引流时间歇作呼吸后用力咳嗽，同时用手轻拍患部，可提高引流效果［1］，采到满意的痰液标本。

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患者咳痰时护士应注意观察患者面部表情、呼吸、脉搏系统等变化，痰量较多的患者，应注意将痰液逐渐咳出，以防止痰量过多而发生窒息，亦应注意避免过分增多患者的呼吸、循环系统生理负担而发生意外［2］。

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若要从痰中检查结核杆菌，而痰量较少时，可采用集菌法提高检查的阳性率。为此，要用无色广口玻璃瓶收集24小时的痰液，收集时应嘱患者不要将口水、鼻液等混入，并将容器放置阴凉、少尘处，容器需加盖。

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作结核杆菌或真菌培养的痰液如不能立即送检，应放入冰箱4℃储存，以减少杂菌等生长［2］。

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若要从痰液中查找癌细胞时，尽量选择来自肺泡、支气管内的血丝痰、灰白色痰、透明黏液痰。因癌细胞易发生自溶，应立即送检，也可用95%酒精或10%甲醛固定后送检［4］。

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昏迷患者痰培养标本的收集，可先清除口腔分泌物，再用吸痰管外接50ml注射器抽吸后再注入容器，或用吸引器吸取，在吸引器细管中段接特殊无菌瓶，无菌瓶两侧各有一开口小管，其中一管接吸痰管，另一端接吸引器，开动吸引器后痰即被吸进瓶内［3］。

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目前常用的痰标本采取法，痰液易被咽喉部寄殖菌污染，使痰微生物学检查的实际价值受到一定的限制。若经环甲膜穿刺气管吸引或经纤支镜防污染双套管毛刷采样，可防止咽喉部寄殖菌的污染，对肺部微生物感染病因的诊断和药物选择有重要价值［4］。但上述方法有一定的创伤性和危险性，目前尚未得到广泛应用。

综上所述，患者是否配合、收集容器是否合适、痰液是否被污染、所留取的标本是否典型、送检是否及时等，是留取痰标本时应当注意的问题。痰标本采集方法：自然咳痰采集法：晨痰为佳，用温开水漱口后，深吸气后用力咳出深部痰液，标本量不少于1ml。难于自然咳嗽、不合作或人工辅助呼吸患者的痰液采集法：患者取适当卧位，先叩击患者背部，然后将集痰器与吸痰器连接，抽吸痰液2-5ml于集痰器内。气管镜采集法：协助医生在气管镜引导下，直接采集痰标本。24小时痰标本采集法：在广口集痰瓶内加少量的清水，患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取，至次日晨进食前漱口后第一口痰结束，全部痰液留入集痰瓶内，记录痰标本总量，颜色及性状。痰标本注意事项：1）注意标本留取时间：一般检验以早晨第一口痰为宜；做细胞学检验以上午9～10h留痰液为好；浓缩法找结核杆菌时，则应留取24h痰液。（2）留取痰液标本时，先用清水嗽口，用力咳出气管深处的痰液，注意勿混入鼻咽分泌物。（3）细菌学培养时应无菌采集痰标本。（4）查痰培养及肿瘤细胞标本应及时送检。血培养标本采集方法：1，采血前评估：评估病情、治疗、心理状态及配合程度；了解寒战或发热的高峰时间；了解抗生素的使用情况；2，注射器直接穿刺采血法：按无菌技术操作规程进行穿刺，用20ml空针采集，采集足量的血液后，取下注射器针头，注入备好的血培养瓶中。3，经血管通路静脉采血法：外周血管通路仅在植入时可用于采血（如留置针），短期使用或预期使用时间不超过48h的外周导管，可专门用于采血，但不能给药，采血后，血管通路要用足够的生理盐水冲净导管中的残余血液。4，经外周穿刺的中心静脉导管（PICC）取血法：取一支注射器抽NS20ml备用，另备2支注射器。取下肝素帽，连接一支空注射器，抽出5ml血液弃去；如正在输液中，先停止输液20秒，再抽出5ml血液弃去。另接一支注射器抽取足量血标本，然后以NS20ml用脉冲式冲洗导管，消毒导管接口，清除残留血迹，连接肝素帽或三通管，如有静脉输液可打开输液通道。5，成人每次采集10-20ml，婴儿和儿童1-5ml；6，用75%酒精消毒培养瓶瓶塞，待干，将血标本分别注入血培养瓶，迅速摇匀，混合均匀。血标本的注意事项：血培养瓶应在室温下避光保存；根据是否使用过抗生素，准备合适的需氧瓶和厌氧瓶；间歇性寒战患者应在寒战前或体温高峰前取血，当预测寒战或高温时间有困难时，应在寒战或高温时尽快采集血培养标本；已使用过抗生素的患者，应在下次使用抗生素前采集血培养标本；血标本注入厌氧菌培养瓶时，注意勿将注射器中的