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文档简介
65.020.01B
04
DB12
天津市质量技术监督局发布DB12/T
505—2014前 言本标准按照
GB/T1.1—2009
本标准由天津市质量技术监督局提出。本标准起草单位:天津市东丽区产品质量监督检验所、天津市农业质量标准与检测技术研究所。本标准主要起草人:黄凤军、李建、赵新、陈杰、易萌、朱珠、马强、杨炳存。本标准
2014
年
04
IDB12/T
505—2014玉米转基因成分筛查方法1
范围本标准规定了玉米中转基因成分定性
筛查的术语和定义、检测方法、结果分析与表述。本标准适用玉米及其制品中
zSSIIb
内标准基因、CaMV35S
Bt
bar基因、
基因的定性
筛查检测2
规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T
6682 分析实验室用水规格和试验方法NY/T
672 转基因植物及其产品检测 农业部
2031
号公告—19—2013
农业部
1485
号公告—4—2010 转基因植物及其产品成分检测 DNA
提取和纯化3
术语和定义下列术语和定义适用于本文件。3.1
基因
gene编码玉米淀粉合酶异构体
Ⅱ-2
3.2CaMV35S
启动子
35S
promoter
from
mosaic
(CaMV)来自花椰菜花叶病毒的
35S
3.3NOS
终止子
of
(NOS)
来自胭脂碱合成酶基因
NOS
的终止子。3.4
基因
(
)来源与苏云金芽胞杆菌(
thuringiensis),可表达一种杀虫晶体蛋白的基因,常见的基因有cry1Ac基因、cry1Ab基因、融合基因。3.5bar
基因
resistance
hygroscopicus,PAT)。该酶具有对除草剂草丁膦()的耐受性。3.6HPT
基因 HPT
来源于大肠杆菌或链球菌(
),编码潮霉素磷酸转移酶()的基因。1检测基因引物序列扩增片段长度基因性质zSSIIb
:5′-
:5′-
151
bp内标准基因CaMV35S35S
:35S
:195
bp外源基因NOSNOS
:NOS
:180
bp外源基因BtBt
:5′-
Bt
:5′-
301
bp外源基因barbar
:5′-
bar
:5′-
262
bp外源基因DB12/T
505—20144
检测方法4.1
试剂和材料4.1.1
GB/T
6682
4.1.2
4.1.3
10
g/L
称取
1.0
g
溴化乙锭(EB),溶于
水中,避光保存。注:溴化乙锭有致癌作用,配制和使用时应戴一次性手套操作并妥善处理废液。4.1.4
10
氢氧化钠溶液:在
160
水中加入
80.0
g
氢氧化钠(NaOH到
200
。4.1.5
500
称取
18.6
g
EDTA-Na加入
70
溶液(4.1.4)调
至
8.0
100
。在
103.4
(121
20
。4.1.6
1
三羟甲基氨基甲烷-盐酸溶液(
称取
g
三羟甲基氨基甲烷()溶解于
800
至
8.0
1
000
103.4
(121
20。4.1.7
TE
8.0):分别量取
三羟甲基氨基甲烷-4.1.6
2
乙二铵四乙酸二钠溶液(
1
000
。在
103.4
(121
20
。4.1.8
50×
缓冲液:
242.2
g
300
水加热搅拌溶解后,加
100
乙二铵四乙酸二钠溶液(4.1.5
至
8.0
1
。使用时用水稀释成
1×。4.1.9
称取
10
12
h
250.0
二甲基苯腈蓝,用
10
水溶解;称取
50.0
g
蔗糖,用
30
水溶解。混合以上三种溶液,加水定容至
100,在
4
℃下保存。4.1.10
分子量标准:
50
bp~1
000
bp
的
DNA
片段。4.1.11
混合溶液:
10
的
、、dGTP、
四种脱氧核糖核苷酸溶液等体积混合。4.1.12
Taq
25
氯化镁溶液。4.1.13 引物:玉米内标准基因和转基因玉米外源基因检测时所用的引物序列见表
1。表1
2试剂终浓度体积水——10×PCR
缓冲液1×2.5
µL
hpt
:5′-
hpt
:5′-
472
bp
hpt
:5′-
DB12/T
505—2014外源基因4.1.14
引物溶液:用
缓冲液()或水分别将上述引物稀释到
10
µ。4.1.15 石蜡油。4.1.16
4.1.17
提取试剂盒。4.2
仪器4.2.1
分析天平:
0.1
g
和
0.1
。4.2.2
升降温速度>1.5
℃<1.0
℃。4.2.3
电泳槽、电泳仪等电泳装置。4.2.4
紫外透射仪。4.2.5
4.2.6
4.2.7
其他相关仪器设备。4.3
4.3.1
抽样按
NY/T
672
和农业部
号公告—19—2013
规定的执行。4.3.2
按
NY/T
672
和农业部
号公告—19—2013
规定的执行。4.3.3
试样预处理按农业部
4—
规定的执行。4.3.4
按农业部
4—
规定的执行。4.3.5
4.3.5.1
反应4.3.5.1.1
反应设置
3
4.3.5.1.2 在
反应管中按表
2
25
µL
表2
PCR检测反应体系3基因名称变性扩增循环次数最终延伸zSSIIb94
℃,5
94
℃,30
s58
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
CaMV35S94
℃,5
94
℃,30
s60
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
NOS94
℃,5
94
℃,30
s60
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
Bt95
℃,5
94
℃,1
56
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
bar95
℃,5
94
℃,30
s63
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
95
℃,5
94
℃,30
s60
℃,30
s72
℃,30
s3572
℃,7
25
mmol/L氯化镁溶液1.5
mmol/L1.5
µLdNTPs
混合溶液(各
2.5
mmol/L)各
0.2
mmol/L2.0
µL10
µmol/L上游引物0.5
µ0.25~1.25
µL10
µmol/L下游引物0.1~5
µmol/L0.25~1.25
µL
酶0.025
µL——25
DNA模板2
2.0
µL总体积25.0
µL根据
酶的浓度确定其体积,并相应调整水的体积,使反应体系总体积达到
µL。如果
PCR
缓冲液中含有氯化镁,则不加氯化镁溶液,加等体积水。注
1
PCR
和
0.2µ;CaMV35S
启动子
PCR
检测反应体系中,上下游引物分别是
和
35S-R,引物终浓度分别为0.4µ;NOS终止子PCR和0.4µ;Bt
基因
PCR
和
Bt-R
0.5µ;bar
基因
PCR
检测反应体系中,上、下游引物分别是
和
,引物终浓度分别为
0.2µmol/L;
基因
PCR
检测反应体系中,上下游引物分别是
和
,引物终浓度分别为0.2µmol/L。DB12/T
505—20144.3.5.1.3 将
管放在离心机上,
000
g
离心
10
s,然后取出
管,放入
DB12/T
505—2014中。4.3.5.1.4 进行
反应。反应程序按表
3
表3
PCR反应程序4.3.5.1.5 反应结束后取出
管,对
4DB12/T
505—20144.3.5.2
反应在试样
以非转基因玉米基因组
DNA
CaMV35S、、Bt、bar、
基因的转基因玉米质量分数为
DNA
作为阳性对照;以水作为空白对照。各对照
反应体系中,除模板外,其余组分及
反应条件与
4.3.6
按
20
1×
琼脂糖溶液中加入
5
µL
EB
溶液,混匀,稍适冷却后,将其倒入电泳板上,插上梳板,室温下凝
1×
12
µL
产物与
3
µL
加样缓冲液
DNA
2
V/cm条件下电泳检测。4.3.7
凝胶成像分析电泳结束后,取出琼脂糖凝胶,置于凝胶成像系统或紫外透射仪上成像。根据
DNA
分子量标准
扩增片段是否为目的
DNA
片段,按照
和
4.3.9
的规定执行。4.3.8
按
产物回收试剂盒说明书,回收
扩增的
片段。4.3.9
将回收的
产物克隆测序,与玉米内标准基因
zSSIIb、CaMV35S、NOS、Bt、bar、
基因序列(参见附录
A)进行比对,确定
片段是否为目的
DNA
片段。5
结果分析与表述5.1
阳性对照的
反应体系正常。否则表明
反应体系不正常,需要查找原因重新检测。5.2
样品检测结果分析和表述5.2.1 在试样的
反应中,内标准基因得到扩增,且扩增片段大小与预期片段大小一致;而CaMV35S
NOS
Bt
基因、
基因均未得到扩增,或扩增片段大小与预期片段大小不一致,表明试样中未检测出转基因成分。结果表述为“试样中未检测出
启动子、NOS
Bt
bar
5.2.2
反应中,内标准基因得到扩增,且扩增片段大小与预期片段大小一致;启动子、
Bt基因、
基因和
段大小一致,表明试样中检测出转基因成分。结果表述为“试样中检测出
5DB12/T
505—2014附录A(资料性附录)A.1
基因扩增产物核苷酸序列1
CTCCCAATCC
TTTGACATCT
GCTCCGAAGC
AAAGTCAGAG
CGCTGCAATG
CAAAACGGAA61
CGAGTGGGGG
CAGCAGCGCG
CGGACCCAAA
GCTGATCATC121
CATCAGCTCC
TGTCACCAAG
AGAGAAATCG
A注A.2
CaMV35S启动子扩增产物核苷酸序列1
GCTCCTACAA
ATGCCATCAT
TGCGATAAAG
GAAAGGCTAT
CATTCAAGAT
GCCTCTGCCG61
ACAGTGGTCC
CAAAGATGGA
CGTGGAAAAA
GAAGACGTTC121
CAACCACGTC
TTCAAAGCAA
GTGGATTGAT
CACTGACGTA
AGGGATGACG181
CACAATCCCA
注A.3
终止子扩增产物核苷酸序列1
GAATCCTGTT
GCCGGTCTTG
CGATGATTAT
CATATAATTT
CTGTTGAATT
ACGTTAAGCA61 TGTAATAATT
AACATGTAAT
TGGGTTTTTA
TGATTAGAGT121 CCCGCAATTA
TACATTTAAT
ACGCGATAGA
TAGCGCGCAA
ACTAGGATAA注:划线部分为引物序列注:划线部分为引物序列A.4
基因扩增产物核苷酸序列1
GAAGGTTTGA
GCAATCTCTA
CCAAATCTAT
GCAGAGAGCT
TCAGAGAGTG
GGAAGCCGAT61
CCTACTAACC
CAGCTCTCCG
TCAACGACAT
GAACAGCGCC121
TTGACCACAG
CTATCCCATT
GTTCGCAGTC
AAGTTCCTCT
CTTGTCCGTG181
TACGTTCAAG
CAGCTAATCT
TCACCTCAGC
ACGTTAGCGT
GTTTGGGCAA241
AGGTGGGGAT
TCGATGCTGC
AACCATCAAT
ACGACCTTAC
TAGGCTGATC301
G注A.5
bar基因扩增产物核苷酸序列1
GAAGGCACGC
AACGCCTACG
ACTGGACGGC
CGAGTCGACC
GTGTACGTCT
CCCCCCGCCA61 CCAGCGGACG
GGACTGGGCT
CTGAAGTCCC
TGGAGGCACA121 GGGCTTCAAG
AGCGTGGTCG
CTGTCATCGG
GACCCGAGCG
TGCGCATGCA181 CGAGGCGCTC
GGATATGCCC
CCCGCGGCAT
GCCGGCTTCA
AGCACGGGAA241
CTGGCATGAC
GTGGGTTTCT
GG6DB12/T
505—2014注A.6
HPT基因扩增产物核苷酸序列1
GAAGTGCTTG
ACATTGGGGA
GTTTAGCGAG
AGCCTGACCT
ATTGCATCTC
CCGCCGTGCA61
CAGGGTGTCA
CGTTGCAAGA
CCGCTGTTCT
ACAACCGGTC121
GCGGAGGCTA
TGGATGCGAT
CGCTGCGGCC
AGACGAGCGG
GTTCGGCCCA181
TT
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