大粒车前子多糖对巨噬细胞的抗炎作用

大粒车前子多糖对巨噬细胞的抗炎作用

车辆前的种子是对于干燥的实验种子的准分类。例如，决定的cyp通常用于干燥的实验。椰子的壳含有大量的粘液。这些是由阿拉伯糖、木糖、甘油糖和半乳液糖组成的各种糖。具有全肠排便、降脂、调节血糖、减少感染、提高效率、抗炎调节、去除自由基等功能。然而，关于它的抗炎研究很少，关于它的抗炎酶诱导机制尚不清楚。炎症是机体的防御性反应,通常对机体是有利的,但过度的炎症反应会导致体内释放过多的炎症性介质,引起局部或全身的炎症性反应。巨噬细胞是机体重要的免疫调节及效应细胞,参与机体的大多数免疫反应,它能清除衰老的宿主细胞和分子,在机体抵御感染的过程中也起到重要的作用,是炎症过程的关键角色之一,主要体现在炎症部位高浓度趋化因子诱导巨噬细胞活化并向感染部位募集,活化的巨噬细胞进一步分泌白细胞介素-8(interleukin-8,IL-8)等趋化因子,诱导更多的巨噬细胞活化募集,释放IL-6等促炎症因子及前列腺素等炎症介质,诱导和加强局部炎症反应。本实验拟通过脂多糖(lipopolyssacharide,LPS)刺激小鼠巨噬细胞RAW264.7建立炎症细胞模型,探讨车前子多糖对巨噬细胞的抗炎作用,不仅为深入研究车前子抗炎活性物质及其作用机制提供实验基础,也为开发大粒车前子资源提供理论依据。1材料和方法1.1抗氧化酶elisa试剂盒大粒车前子产自江西吉安;RAW264.7细胞系购自上海细胞生物研究所。RPMI1640培养基美国Gibco公司;胎牛血清(fetalbovineserum,FBS)、磷酸盐缓冲液(phosphatebufferedsaline,PBS)、L-谷氨酰胺、β-二巯基乙醇、二甲基亚砜、青霉素、链霉素美国HyClone公司;Griess检测试剂盒南京建成生物工程研究所;LPS美国Sigma公司;肿瘤坏死因子-α(tumornecrosisfactor-α,TNF-α)酶联免疫吸附(enzyme-linkedimmunosorbentassay,ELISA)试剂盒、白细胞介素-10(interleukin-10,IL-10)ELISA试剂盒、IL-6ELISA试剂盒武汉博士德公司;中性红温州市化学试剂有限公司。1.2酶标仪ma公司和bio-rad公司的纺粘设备3K15-高速冷冻离心机德国Sigma公司;酶标仪美国Bio-Rad公司;CO2培养箱美国Thermo公司;倒置显微镜日本Olympus公司。1.3方法1.3.1车前子多糖提取采用水提醇沉法从大粒车前子中提取多糖成分,优化的提取条件为:大粒车前子粉末与水(1∶10,m/V)在100℃下提取3h,重复2次。将提取液合并浓缩,80%乙醇沉淀过夜。4800r/min离心10min收集多糖沉淀,并依次用丙酮、无水乙醚和无水乙醇各洗涤2次,干燥得车前子多糖,得率约为10.0%。采用Sevag法对车前子多糖进行脱蛋白处理制备得到精制车前子多糖(PlantagoasiaticaL.crudepolysaccharide,PLCP)。1.3.2生物活性物质对人细胞的活性检测用含体积分数10%胎牛血清、100U/mL青霉素及100U/mL链霉素的RPMI1640培养基培养(37℃、5%CO2)RAW264.7巨噬细胞并对其进行分组。空白对照组:不用LPS处理也不加多糖干预;模型对照组:加入10mg/L的LPS干预;实验组:10mg/L的LPS干预,并用PLCP(PLCP终质量浓度分别为20、40、80、160μg/mL)处理。1.3.3细胞培养及转染调节RAW264.7巨噬细胞密度为5×105个/mL,以每孔100μL接种于96孔板,置于培养箱(37℃、5%CO2)培养3h后洗去未贴壁细胞。每孔加入100μL含10%胎牛血清的RPMI1640培养基,各组按相应处理加入LPS、PLCP进行培养。24h后每孔加入含中性红(体积分数0.1%)的生理盐水溶液100μL,继续培养4h,弃去上清液,用PBS洗3遍,每孔加入细胞溶解液(V(冰醋酸)∶V(乙醇)=1∶1)100μL,4℃条件下放置2~3h,待细胞溶解后在酶标仪上测定540nm波长处的光密度值。1.3.4水培养液用量对水调湿结果的影响采用Griess法对NO2-定量间接检测NO生成。RAW264.7巨噬细胞接种于96孔培养板,各组细胞在不同处理因素作用24h后,每孔取细胞培养液50μL,用Griess试剂测试,酶标仪550nm波长处测定吸光度。根据NaNO2制得的标准曲线计算培养基中NO的生成量。1.3.5测定板中不同组分的重取RAW264.7巨噬细胞接种于24孔细胞培养板中,不同组别按照相应处理培养24h后,取上清液进行测定。TNF-α、IL-10和IL-6水平的测定按照ELISA试剂盒说明书进行。1.4单因素方差分析实验数据以ue0af±s表示,采用SPSS11.0统计学软件进行配对t检验、单因素方差分析,P<0.05时有统计学差异。如图1所示,与模型对照组相比,PLCP在低质量浓度范围内(20、40μg/mL)对LPS激活的RAW264.7细胞的吞噬活性具有显著抑制作用(P<0.05)。2.2plcp作用于lps刺激的no活性由表1可知,和空白对照组相比,模型对照组释放大量NO(P<0.05),PLCP作用于LPS刺激的RAW264.7细胞后,NO分泌量下降,PLCP质量浓度为40μg/mL时对细胞分泌NO活性的抑制效果最为显著(P<0.05)。2.3plcp对lps抑制效果由表2可知,PLCP对LPS刺激RAW264.7细胞分泌炎症细胞因子有显著影响。和模型对照组相比,在40~160μg/mL范围内,PLCP能够明显抑制LPS刺激RAW264.7细胞分泌TNF-α和IL-6,在20~160μg/mL范围内可显著抑制LPS刺激RAW264.7细胞分泌IL-10,且呈剂量依赖关系。3抗炎作用的调节作用炎症反应是一种重要的机体防御过程,涉及机体活动的许多环节,其中免疫细胞(巨噬细胞、中性粒细胞等)的激活是炎症反应的启动环节。巨噬细胞是炎症反应的重要效应细胞,RAW264.7细胞作为巨噬细胞的一种,可激活机体的免疫系统,当机体受LPS等外界因素刺激后,能够促进机体产生炎症介质,发挥免疫功能。许多研究发现多糖能调节巨噬细胞的功能,并揭示了多糖与其表面受体及信号转导通路相关的作用机理。因此本实验以LPS刺激RAW264.7细胞为模型,探讨PLCP对巨噬细胞的抗炎作用。巨噬细胞是一种主要的专职吞噬细胞,是机体的清道夫,可以通过其表面受体识别并吞噬入侵机体的病原菌及本身衰老和死亡的细胞,从而提高机体机能。中性红吞噬实验显示,低质量浓度的PLCP能够抑制RAW264.7细胞的吞噬活性,说明PLCP可调节炎症反应,并且低质量浓度的PLCP能有效地防止巨噬细胞的过度活化。LPS刺激后的巨噬细胞可大量表达诱导型一氧化氮合成酶(induciblenitricoxidesynthase,iNOS)并分泌大量的NO。NO作为体内重要的信使和效应分子,对细菌等病原体具有杀伤和细胞毒性作用,从而介导炎症反应。但NO的过量释放会损伤正常的细胞,引起过度炎症反应。研究发现NO对细菌感染、创伤等均具有很好的疗效。巨噬细胞NO的合成、分泌与细胞因子有着相互调节作用。当PLCP质量浓度在40~160μg/mL时,能下调RAW264.7细胞释放NO,这可能与抑制巨噬细胞的活化、减少与iNOS表达相关炎症因子的释放有关。免疫细胞产生的许多细胞因子参与免疫系统的调节,而植物多糖对细胞因子以及受体表达的影响是其发挥抗炎作用的重要分子机制。TNF-α是巨噬细胞在炎症反应中产生的主要促炎细胞因子,可调节细胞的生长分化、增殖,调节免疫应答,以正反馈调控的形式参与许多炎症反应,具有重要的生物功能。因此,本实验测定了PLCP对LPS刺激RAW264.7细胞分泌TNF-α的影响,结果发现PLCP在40~160μg/mL范围内可显著抑制RAW264.7细胞分泌TNF-α,且具有一定的剂量依赖性。由此可以说明PLCP可能通过下调TNF-α的表达参与抗炎反应。IL-10是一种可由活化的单核-巨噬细胞产生的多功能抗炎细胞因子,可调节多种免疫细胞的功能,通过负反馈调节发挥抗炎作用。本实验发现在实验剂量范围内PLCP均可显著抑制IL-10的释放,并符合剂量依赖关系。IL-6在先天性免疫和获得性免疫中都具有突出的贡献,可调控T淋巴细胞的分化和激活,诱导辅助T细胞的活化,维持调节性T细胞和辅助性T细胞间的平衡,在慢性炎症中发挥了重要作用。本实验发现在40~160