五黄酮类化合物剖析

第五章

黄酮类化合物第一节

概述

化合物数目很多多数是羟基衍生物，有的带有甲氧基或其它取代基。这些助色团的存在使黄酮类化合物多显黄色，且结构中具有碱性氧原子，故称黄碱素类化合物。多与糖结合成甙，少部分以游离形式存在。一、生物合成基本途径1952年以前，黄酮类化合物主要是指基本母核为2-苯基色原酮的一系列化合物。色原酮2-苯基色原酮（黄酮）

现在的黄酮类化合物则泛指两个苯环（A与B环）通过中央三碳链相互连接而成的一类化合物。

C6-C3-C6生物合成途径

由三个丙二酰辅酶A和一个桂皮酰辅酶A生物合成而成。二、结构分类三碳链氧化程度、B环（苯基）连接位置（2-位或3-位）三碳链是否构成环状主要结构类型根据中央三碳链的氧化程度、B-环连接位置（2-或3-位）以及三碳链是否构成环状结构等特点，分类如下：几种常见的黄酮黄芩为清热解毒类中药，抗菌成分主要有黄芩甙（baicalin）、次黄芩素(wogonin)等。

芦丁的半合成品维脑路通（7,3’,4’-羟乙基芦丁）用于治疗静脉曲张，静脉炎。合成品乙氧黄酮为黄酮７－氧－醋酸乙酯，亦名心脉舒通或立可定(recordil)，具有扩冠作用，可增加冠脉流量而不增加心肌耗氧量。

水飞蓟素二氢黄酮醇与苯丙素衍生物缩合成的黄酮木脂素类成分。具有保肝作用，用于治疗急、慢性肝炎及肝硬化，代谢中毒性肝损伤。

查尔酮为苯甲醛缩苯乙酮类化合物，其邻羟基衍生物可视为二氢黄酮的异构体，二者可相互转化。

二氢黄酮的吡酮环芳香性低，在碱的作用下易开环生成6’-羟基查耳酮，由无色转为深黄色，后者经酸化又能转化为原来的二氢黄酮。

红花所含的色素红花苷是第一个发现的查耳酮类植物成分。

红花在开花初期，花冠呈淡黄色；开花中期，花冠呈深黄色；开花后期或采收干燥过程中由于酶的作用，氧化成红色。异黄酮类(isoflavones)

主要存在于豆科、鸢尾科等植物中。如葛根主要含有下列几种异黄酮类成分。葛根总黄酮具有扩冠、增加冠脉流量及降低心肌耗氧量等作用。大豆素具有类似罂粟碱的解痉作用。大豆苷、葛根素及大豆素均能缓解高血压患者的头痛等症状。双黄酮类

由二分子黄酮衍生物聚合生成的二聚物，多分布与于裸子植物中。银杏中含有多种双黄酮，如银杏素。

花色苷类(anthocyanidins)

是使花、叶、果、茎等呈现蓝、紫、红等颜色的色素。以苷的形式存在于细胞液中，经水解可生成苷元——花色素及糖。黄烷-3-醇(flavan-3-ols)及黄烷-3，4-二醇(flavan-3,4-diols)类

苯骈色酮(xanthanes)石韦中的异芒果素具有止咳祛痰的功效。

橙酮类化合物组成黄酮苷的糖类单糖类：D-葡萄糖，D-半乳糖，D-木糖，L-鼠李糖，L-阿拉伯糖，D-葡萄糖醛酸等双糖类：槐糖(Glcb1→2glc)、龙胆二糖(Glcb1→6glc)，芸香糖(Rhaa1→6glc)、新橙皮糖(Rhaa1→2glc)、刺槐二糖(Rhaa1→6gal)等。三糖类：龙胆三糖、槐三糖等三、黄酮类化合物的生物活性

1.对心血管系统的作用Vp样作用：芦丁、橙皮苷等有Vp样作用，能降低血管脆性及异常通透性，可用作防治高血压及动脉硬化的辅助治疗剂。扩冠作用：芦丁、槲皮素、葛根素、人工合成的力可定。降血脂及胆固醇：木樨草素2.

抗肝脏毒作用从水飞蓟种子中得到的水飞蓟素具有保肝作用，用于治疗急、慢性肝炎、肝硬化及多种中毒性肝损伤。（+）-儿茶素(catergen)也可抗肝脏毒作用，治疗脂肪肝及因半乳糖胺或四氯化碳等引起的中毒性肝损伤。3.抗炎芦丁及其衍生物羟乙基芦丁、二氢槲皮素等具抗炎作用。

4.抗菌及抗病毒作用如木樨草素、黄芩苷、黄芩素

5.解痉作用异甘草素、大豆素：解除平滑肌痉挛；大豆苷、葛根素及葛根总黄酮可缓解高血压患者的头痛等症状；杜鹃素、川陈皮素、槲皮素、山奈酚、芫花素、羟基芫花素：止咳祛痰。6.雌性激素样作用大豆素(daidzein)等异黄酮具有雌性激素样作用，可能与它们与己烯雌酚结构类似。7.清除人体自由基作用黄酮类化合物多具有酚羟基，易氧化成醌类而提供氢离子，故有显著的抗氧特点。

另外还有降血脂、血糖，抗动脉粥样硬化及抗癌抗突变等作用。第二节

黄酮类化合物的理化性质及显色反应

一、性状

1.多为结晶性固体，少为（如黄酮苷类）无定形粉末。

2.旋光性：游离苷元中，除二氢黄酮、二氢黄酮醇、黄烷、黄烷醇及双黄酮有旋光外，其余无旋光性。苷类由于结构中引入糖的分子，均有旋光性，且多为左旋。

3.颜色：与①分子中是否存在交叉共轭体系②助色团的数目及③取代基的位置有关。色原酮部分原本无色，但在2位引入苯环后，即形成交叉共轭体系，且通过电子的转移，重排，使共轭链延长，而表现出颜色。黄酮、黄酮醇及苷类灰黄-黄色查耳酮黄-橙黄色二氢黄酮、二氢黄酮醇无色异黄酮微黄色其中，黄酮、黄酮醇及苷类、查耳酮等因分子中存在交叉共轭体系，在7,4’位引入-OH,OCH3等供电子基团则促进电子移位、重排，使化合物颜色加深。

花色苷及其苷元的颜色随pH的不同而改变：呈现红（pH<7），紫（pH8.5）、兰（pH>8.5）二、溶解度

1.游离苷元难溶或不溶于水，易溶于MeOH,EtOH,EtOAc,Et2O

黄酮、黄酮醇及查耳酮是平面型分子，分子堆砌紧密，分子间引力较大，更难溶于水。二氢黄酮、二氢黄酮醇是非平面型分子，分子排列不紧密，分子间引力降低，对水的溶解度较大。

花色苷元（花青素）类虽系平面型分子，但因以离子形式存在，具有盐的通性，故亲水性较强，水溶度较大。

黄酮苷元引入羟基越多，水溶性越强，羟基甲基化后，则增加在有机溶剂中的溶解度。如一般黄酮类化合物不溶于石油醚中，可与脂溶性杂质分开，但川陈皮素（5,6,7,8,3’,4’-六甲氧基黄酮）却可溶于石油醚。

2.黄酮类化合物的羟基苷化后，水溶性相应增大，而在有机溶剂中的溶解度相应减小。黄酮苷一般易溶于H2O,MeOH,EtOH等，难溶或不溶于苯，氯仿等。三、酸碱性

1.酸性黄酮类化合物多具有酚羟基而呈酸性，可溶于碱性水液，吡啶，甲酰胺及二甲基甲酰胺。酸性强弱顺序：7,4’-二羟基>7,或4’羟基>5-羟基此性质可用于提取、分离及鉴定工作。

2.碱性

-吡喃酮上的1-位氧原子上有未共用电子对，表性微弱的碱性，可与强无机酸如浓硫酸，盐酸生成yang盐，但极不稳定，加水即可分解。

黄酮类化合物溶于浓硫酸中生成的yang盐常表性特殊的颜色，可用于鉴别。四、显色反应

1.盐酸-镁粉（盐酸-锌粉）反应黄酮、黄酮醇及二氢黄酮、二氢黄酮醇类红-紫红（个别有绿-兰色）。查耳酮、橙酮、儿茶素类则不反应。花色素及部分查耳酮、橙酮等在浓盐酸酸性条件下也会发生色变，故须先做一对照。1.四氢硼钠反应与二氢黄酮类化合物产生红-紫色。

（一）

金属盐类试剂的络合反应

结构中有3-OH,4=O;5-OH,4=O;邻二酚羟基，铝盐、铅盐、锆盐、镁盐等试剂生成有色络合物。1.铝盐

1%AlCl3或Al(NO3)3：生成络合物为黄色(

max=415nm)，并有荧光。2.铅盐

1%PbAc2或碱式醋酸铅水液。生成黄-红色沉淀。醋酸铅可沉淀具有邻二酚羟基或兼有3-OH,4=O或5-OH,4=O者。碱式醋酸铅可沉淀具有一般酚类化合物。3.锆盐:2%氯氧化锆甲醇液4.镁盐醋酸镁甲醇液作显色剂，可在纸上进行。二氢黄酮（醇）类显天蓝色荧光，若具有C5-OH，色泽更明显。而黄酮、黄酮醇及异黄酮类则显黄-橙黄-褐色。

5.氯化锶(SrCl2)

使具有邻二酚羟基的黄酮显绿-棕色-黑色沉淀。6.

氯化铁(FeCl3)

检查酚羟基。多数黄酮类化合物具有酚羟基，可产生正反应，生成绿、蓝、黑、紫等颜色。（三）

硼酸显色反应

条件：1具有下列结构（5-羟基黄酮，2-羟基查耳酮）

2有无机酸或有机酸存在在草酸存在下，显黄色并带绿色荧光。在枸橼酸丙酮存在条件下，只显黄色而无荧光。（四）

碱性试剂显色反应

日光及紫外光下，通过纸斑反应，观察样品用碱性试剂处理后的色变情况。

1.二氢黄酮类易在碱液中开环，转变成相应异构体——查耳酮类化合物，显橙-红色。2.黄酮醇类在碱液中先呈黄色，通入空气后变为棕色，据此可与黄酮类区别。

3.黄酮类化合物当分子中有邻二酚羟基取代或3,4’-二羟基取代时，在碱液中不安定，很快氧化，由黄色

深红色

绿棕色沉淀。第三节

黄酮类化合物的提取分离

一、提取黄酮类化合物在花、液、果等组织中，多以苷的形式存在；在木部坚硬组织中，多以游离苷元形式存在；根据化合物极性不同，溶解性不同，采用不同溶剂提取。1.苷元

多用CHCl3、Et2O、EtOAc等极性较小溶剂提取；对于多OCH3化的成分，用苯、石油醚提取；对于极性大的成分，如查耳酮、橙酮、双黄酮、羟基黄酮等，用EtOAc、EtOH、Me2COMeOH;H2O(1;1)等溶剂提取。

2.苷类水或热水提取，（多糖苷在热水中溶解度较大，在冷水中溶解度较小）；也可用EtOH、MeOH、EtOAc提取。

3.含羟基的苷或苷元，可用碱水提取。

4.提取花青素类可加入少量酸，但一般黄酮类化合物则应避免。二、粗提物的精制处理

1．

溶剂萃取法去杂石油醚：除去叶绿素、胡罗卜素等脂溶性色素水溶醇沉：除去蛋白质、多糖、大分子水溶性物质逆流分配：水-乙酸乙酯，正丁醇-石油醚在萃取除杂的同时，可使不同极性或极性相差较大者分离，如极性不同的苷和苷元，极性苷元和非极性苷元。2．

碱提取酸沉淀法

适用于含酚羟基的化合物，如槐米中芦丁的提取。注意事项：①酸碱度不宜过大②邻二酚羟基的保护：碱性条件下，邻二酚羟基易被氧化，加硼砂保护③石灰乳的加入可除去果胶、粘液等水溶性酸性杂质3．

炭粉吸附法

适用于苷类的精制工作。植物的甲醇提取液加活性炭至吸附完全，过滤得吸附苷的活性炭粉末。依次用沸甲醇、沸水、7%酚/水、15%酚/醇洗脱，分步收集、检查、合并。大部分苷类可用7%酚/水洗下，经减压浓缩至小体积，乙醚除酚，余下水层经减压浓缩得较纯黄酮苷。三、分离

1.极性大小不同，利用吸附或分配原理进行分离常用吸附剂有聚酰胺、硅胶、纤维素粉。１）聚酰胺层析：其原理是酰胺羰基与黄酮酚羟基形成氢键缔合而吸附，吸附能力与酚羟基多少、位置及氢键缔合力大小有关。

各种溶剂在聚酰胺柱上洗脱能力由弱至强依次为：水，甲醇，丙酮，氢氧化钠水溶液，甲酰胺，二甲基甲酰胺，脲素水溶液。黄酮类化合物从聚酰胺柱洗脱时有下列规律：①苷元相同，洗脱先后顺序一般为：三糖苷

双糖苷

单糖苷

苷元②母核上增加羟基，洗脱速度相应减羟基位置的影响：具有邻位羟基黄酮

具有对位（或间位）羟基黄酮③不同类型的黄酮类化合物，先后流出顺序一般是：异黄酮

二氢黄酮醇

黄酮

黄酮醇④分子中芳香核、共轭双键多者吸附力强，故查耳酮往往较相应的二氢黄酮难于洗脱。２）硅胶层析

①对酚羟基多的黄酮类，如多羟基黄酮及其苷类，硅胶减活性使用②对酚羟基少的黄酮类，如甲基化、乙酰化黄酮及二氢黄酮、异黄酮，则无须减活性。2.利用分子大小不同，用葡聚糖凝胶分子筛分离

主要用两种型号的凝胶Sephadex-G型和Sephadex-LH20型分离游离黄酮主要是吸附作用，极性小

大洗脱。分离黄酮苷类，主要是分子筛作用，分子大

小洗脱。总的洗脱顺序：糖多的苷

糖少的苷

游离苷元（极性小

大）常用洗脱剂：①碱性水溶液，含盐水溶液②醇及含水醇③含水丙酮，甲醇－氯仿

３．利用酸性强弱，采用pH梯度萃取法

混合物溶于有机溶剂，依次用５％NaHCO3、５％Na2CO3、0.2%NaOH、4%NaOH萃取，相应的黄酮类化合物洗脱顺序：7,4’－二羟基

7或4’羟基

一般酚羟基

５－羟基黄酮４．根据分子中某些特定官能团进行分离

醋酸铅沉淀法硼酸络合法：根据具有邻二酚羟基的黄酮与硼酸络合，生成物易溶于水的性质与其它类型黄酮分离。通常在不与水混溶的有机溶剂如乙醚中，用硼酸液萃取，水相即为邻二酚羟基类黄酮。

举例：从芹菜［ApiumgraveolensL.］种子中分离graveobiodideA及B

THANKYOUSUCCESS2023/11/2963可编辑第四节

黄酮类化合物的检识与结构测定

目前主要采用的方法有：①与标准品或与文献对照PPC或TLC得到的Rf或hRf值（Rf

100）②分析对比样品在甲醇溶液中及加入酸、碱或金属盐类试剂后得到的UV光谱③1H-NMR④13C-NMR⑤MS一、层析在黄酮类鉴定中的作用

1.纸层析(PPC)

苷类成分可采用双向展开，第一相展开采用醇性溶剂，如BAW系统（正丁醇：醋酸：水4：1：5上层）；第二相展开用水性溶剂，如氯仿：醋酸：水（3：6：1）苷元则多采用醇性溶剂。花色苷及其苷元，可用含盐酸或醋酸的溶剂。2.薄层层析(TLC)

１）硅胶薄层用于弱极性黄酮较好。常用甲苯：甲酸甲酯：甲酸（5：4：1）；苯：甲醇（95：5）或苯：甲醇：冰醋酸（35：5：5）等。２）聚酰胺层析适用范围广，可分离含游离酚羟基或其苷类。常用展开系统：乙醇：水（3：2）；丙酮：水（1：1）等。显色剂：紫外光；2%三氯化铝甲醇液；1%FeCl3/1%K3Fe(CN)6(1:1)混合液。二、紫外光谱在黄酮类鉴定中的应用可用于确定黄酮母核类型及确定某些位置是否含有羟基。一般程序：①测定样品在甲醇中的UV谱以了解母核类型；②在甲醇溶液中分别加入各种诊断试剂后测UV谱和可见光谱以了解3,5,7,3’,4’有无羟基及邻二酚羟基；③苷类可水解后（或先甲基化再水解），再用上法测苷元的UV谱以了解糖的连接位置。（一）黄酮类化合物在甲醇溶液中的紫外光谱

多数黄酮类化合物由两个主要吸收带组成：带I在300-400nm区间，由B环桂皮酰系统的电子跃迁所引起；带II在240-285nm区间，由A环苯甲酰系统的电子跃迁所引起。

带II(240-285nm)（苯甲酰系统）带I(300-400nm)桂皮酰系统类型说明

250-285304-350黄酮类

-OH越多，带I带II越红移

B环3’,4’有-OH基，带II为双峰（主峰伴肩峰）328-357黄酮醇类(3-OR)

352-385黄酮醇类(3-OH)

245-270270-295300-400异黄酮类二氢黄酮（醇）B环上有-OH,OCH3对带I影响不大

220-270340-390或340-390(Ia)300-320(Ib)查耳酮类查耳酮2’-OH使带I向红移影响大370-430(3-4个小峰)橙酮类

2．加入诊断试剂后引起的位移及结构测定

加入试剂带II带I说明样品+MeOH250-285304-385两峰强度基本相同，具体位置与母核上电负性取代基(-OH,-OCH3)有关，-OH,-OCH3越多，越长移

+NaOMe或+NaOHA环有-OH，红移小，无意义

40-60nm（不变或增强）

50-60nm（下降）有4’-OH，无3-OH

有3,4’-OH或3,3’,4’-OH（衰减更快）

7-OH带I，II随加NaOMe时间延长，逐渐衰减

320-330nm有小峰+NaOAc

5-20有3-OH,4’OH也发生红移，但意义不大7-OH加入试剂带II带I说明+NaOAc/H3BO3

5-10

12-30有6,7-OH或7,8-OH(5,6-OH无)B环有邻二酚羟基

AlCl3/HCl

60

50-60

35-55

17-20

0有3-OH有3,5-二OH有5-OH，无3-OH有6-OR无3-OH,5-OH或6-OR存在AlCl3光谱AlCl3/HCl光谱

30-4050-650B环有邻二酚羟基A,B环皆有邻二酚羟基A,B环皆无邻二酚羟基说明：1）+NaOMe,OH

OMe，红移另有有3,4’-OH或3,3’,4’-OH时，在NaOMe作用下易氧化破坏，故峰有衰减。2）NaOAc为弱碱，仅使酸性较强者，如7,4’-OH解离。

3）形成络合物的能力：黄酮醇3-OH>黄酮5-OH（二氢黄酮5-OH）>邻二酚羟基>二氢黄酮醇5-OH邻二酚羟基和二氢黄酮醇5-OH在酸性条件下不与AlCl3络合；但不在酸性条件下，五者皆与Al3+络合；形成络合物越稳定，红移越多。4）二者相减可检测邻二酚羟基。三、1H-NMR

常用溶剂：氘代氯仿（CDDl3），氘代二甲基亚砜（DMSO-d6），氘代吡啶（C5D5N）。也可将黄酮类化合物作成三甲基硅醚衍生物溶于四氯化碳中进行测定。优点：①无干扰信号，勿须昂贵的氘代试剂；②供试后的样品用含水甲醇处理可回收；③三甲基硅醚衍生物可很方便的转变成乙酰衍生物或甲醚衍生物。（一）A环质子

1．5,7-二OH黄酮2．7-OH黄酮

H-5较H-6、H-8低场，是由于羰基的负屏蔽效应的影响。H-6、H-8较5,7-二OH黄酮低场，且相互位置可能颠倒。（二）

B环质子δ6.5-8

1．4’-氧取代黄酮类化合物H-3’,5’

6.5-7.1,d,J=8.5HzH-2’,6’7.1-8.1,d,J=8.5Hz由于C环对H-2’,6’的负屏蔽作用大于对H-3’,5’，且H-3’,5’受4’-OR的屏蔽作用，故前者较低场；C环氧化程度越高，H-2’,6’处于越低场的位置。2．3’,4’-二氧取代黄酮类化合物

H-2’受C环负屏蔽和3’-OR屏蔽作用，H-6’也受C环负屏蔽作用，而H-5’则仅4’-OR屏蔽作用。故由低场到高场的顺序为：H-6’H-2’

H-5’。但有时也会发生H-2’和H-6’重叠的现象。（1）3’,4’-二氧取代黄酮及黄酮醇H-5’

6.7-7.1d,J=8.5HzH-2’7.2d,J=2.5HzH-6’7.9dd,J=2.5,8.5Hz（2）3’,4’-二氧取代异黄酮、二氢黄酮及二氢黄酮醇

H-2’,5’,6’常作为一个复杂多重峰（通常为两组峰）

6.7-7.13．3’,4’,5’-三氧取代黄酮类化合物

若R1=R2=R3=H，则H-2’,6’为单峰，

6.7-7.5若上述条件不成立，则H-2’,6’分别为单峰（J=2Hz）（三）

C环质子

1.黄酮类2.异黄酮类

H-2位于羰基

位，同时受羰基和苯环的负屏蔽作用，且通过碳与氧相连，故较一般芳香质子低场，δ7.6-7.8。若用DMSO-d6作溶剂，则δ8.5-8.7。3.二氢黄酮和二氢黄酮醇

1)

二氢黄酮两个H-3,分别为dd峰，中心位于δ2.8，J=17Hz（偕偶），5Hz（顺偶）及J=17Hz（偕偶），11Hz（反偶）H-2,dd,δ5.2,Jtrans=11Hz（反偶）,Jcis=5Hz（顺偶）（2）二氢黄酮醇

3-OR苷化，供电子能力下降，两个氢的δ值升高（向低场位移），可用于判断二氢黄酮醇苷中糖的位置。H-2与H-3为反式双直立键，J=11HzH-2δ4.9H-3δ4.34.查耳酮

5.橙酮

（四）

糖上的质子

1.单糖苷类端基H受两个O的诱导，处于低场（

4.0-6.0）1）葡萄糖位于不同位置时端基H化学位移的区别：

C3-OR1˝-H的

值约为5.8C-5,C-6,C-7,C-4’-OR1˝-H的

值约为4.8-5.22)葡萄糖苷与鼠李糖苷的区别黄酮醇3-O-葡萄糖苷

5.8,d,J=7Hz（二直立键偶合系统）黄酮醇3-O-鼠李糖苷

5.0-5.1,d,J=2Hz（二平伏键偶合系统）另外鼠李糖上的C-CH3

0.8-1.2,d,J=6.5Hz

2.双糖苷类末端糖上的H-1’’’因离黄酮母核较远，受到的负屏蔽作用较小，因而叫H-1’’处于较高场的位置。（五）

其它质子如6-及8-C-CH3，乙酰氧基质子，甲氧基质子。四、13C-NMR

方法：

1）对比法：与简单的模型化合物如苯乙酮、桂皮酸及它们的衍生物光谱的比较；

2）计算法：用经验的简单芳香化合物的取代位移加和规律进行计算；

3）选用各种一维和二维NMR技术。（一）骨架类型的判断

根据中央三碳链的碳信号，即先根据羰基碳的δ值，再结合C2、C3的裂分和δ值判断。C=OC-2（或C-β）C-3（或C-α）归属168.6~169.8(s)137.8~140.7(d)122.1~122.3(s)异橙酮类

174.5~184.0(s)160.5~163.2(s)104.7~111.8(d)黄酮类149.8~155.4(d)122.3~125.9(s)异黄酮类147.9(s)136.0(d)黄酮醇类182.5~182.7(s)146.1~147.7(s)111.6~111.9(d)(=CH-)橙酮类

188.0~197.0(s)

136.9~145.4(d)116.6~128.1(d)查耳酮类75.0~80.3(d)42.8~44.6(t)二氢黄酮醇类82.7(d)71.2(d)二氢黄酮类（二）黄酮类化合物取代图式的确定方法

黄酮类化合物中芳香碳原子的信号特征可以用来确定取代基的取代图式。以黄酮为例，其13C-NMR信号如下所示：

1．取代基位移的影响

XZiZoZmZpOH26.6-12.81.6-7.1OCH331.4-14.41.0-7.8-OH及-OCH3的引人将使直接相连碳原子(α-碳)信号大幅度地向低场位移，邻位碳原子(β-碳)及对位碳则向高场位移。间位碳虽也向低场位移，但幅度很小。A-环上引入取代基时，位移效应只影响到A环，而B-环上引入取代基时，位移效应只影响到B环。若是一个环上同时引入几个取代基时，其位移效应将具有某种程度的加和性。

黄酮母核上引入5-OH时，不仅影响A环碳原子的化学位移，还因C5-OH与C4C=O形成分子内氢键缔合，故可使C4，C2信号向低场移动(分别为+4.5及+0.9)，而C-3信号向高场移动(–2.0)。C5-OH如果被甲基化或苷化(氢键缔合遭到破坏)，则上述信号将分别向高场位移。2．5，7-二羟基黄酮类中C-6及C-8信号的特征

对大多数5，7—二羟基黄酮类化合物来说，C-6(d)及C-8(d)信号在δ90．0～100．0的范围内出现，且C-6信号总是比C-8信号出现在较低的磁场。在二氢黄酮中两者差别较小，约差0．9个化学位移单位，但在黄酮及黄酮醇中差别较大，约为4.8。C-6或C8有无烷基或者芳香基取代可通过观察13C-NMR上C-6，C-8信号是否发生位移而加以认定。生松素(pinocembrin)及其6-C-甲基及8-C-甲基衍生物的C-6，C-8化合物C-6C-85,7-dihydroxyflavanone(pinocembrin)96.195.16-C-methylpinocembrin102.194.78-C-methylpinocembrin95.7101.9化合物C-6C-83',4',5,7-tetrahydroxyflavanone(luteolin)99.294.28-C-benzylluteolin98.6103.86-C-hydroxyluteolin140.493.6木犀草素(1uteolin)，即使因其C6上联接的H被-OH取代而向低场大幅度的位移，C-8信号也未因此而发生大的改变。芹菜素(apigenin)、肥皂黄素(saponarin)及apigenin-6,8-di-C-glucosideC-6,C-8数据

化合物C-6C-84',5,7-trihydroxyflavanone(apigenin)98.894.0apigenin-6-C-β-D-glucopyranosyl-7-O-β-D-glucopyranoside(saponarin)110.693.8apigenin-6,8-di-C-glucoside108.0104.0(三)黄酮类化合物O-糖苷中糖的连接位置

1．糖的苷化位移及端基碳的信号

酚性苷中，糖上端基碳的苷化位移约为+4.0～+6.0。黄酮苷类化合物当苷化位置在苷元的7或2’、3’、4’时，糖的C-1信号将位于约δ100.0～102.5范围内。

5-O-葡萄糖苷及7-O-鼠李糖苷相应的C-1信号分别出现δ104.3及99.0处.。

黄酮类双糖苷或低聚糖苷的13C-NMR中，糖的端基碳信号出现在δ98.0～109.0区域内，常与C-6，C-8，C-3及C-10混在一起而不易区别。可采用HMQC(1H-detectedheteronuclearmultiple-quantumcoherence)等二维核磁共振技术鉴别。2．苷元的苷化位移

苷元糖苷化后与糖直接相连碳原子向高场位移，其邻位及对位碳原子则向低场位移，且对位碳原子的位移幅度大而且恒定。C-5-OH糖苷化后，除上述苷化位移效应外，还因C5-OH与C4＝O的氢键缔合受到破坏，故对C环碳原子也将发生巨大的影响。C2，C-4信号明显地向高场位移，而C-3信号则移向低场。(四)双糖苷及低聚糖苷中分子内苷键及糖的联接顺序

1）当糖上的羟基被苷化时将使该-OH所在碳原子产生一个相当大的低场位移。例如在黄酮类化合物芦丁[苷元-O-β-D-glucosyl-(6→1)-α-L-rhamnoside)中，葡萄糖的C6信号将向低场位移5.8，但C-5则向高场位移约1.4。2）黄酮类双糖苷及低聚糖苷中糖的联结顺序常采用HMBC(1H-detectedheteronuclermultiple-bond-coherence)二维核磁共振技术进行确定。五、质谱在黄酮类结构测定中的应用

多数黄酮类化合物苷元在电子轰击质谱(El-MS)中因分子离子峰较强，往往成为基峰，故一般无须作成衍生物即可进行测定。但是当测定极性强、难气化以及对热不稳定的黄酮苷类化合物时，则采用FD-MS和FAB-MS、ESI-MS等软电离质谱技术获得强的分子离子峰[M]+及具有偶数电子的准分子离子峰(quasi-molecularionpeak)[M+H]+。(一)黄酮类化合物苷元的