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文档简介
SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳SDS-Polyacrylamidegelelectrophoresis,SDS1精选课件一、什么是SDS?十二烷基硫酸钠〔sodiumdodecylsulfate,SDS)是一种阴离子去污剂。它在水溶液中以单体〔monomer〕和分子团〔micellae〕的混合形式存在。2精选课件SDS的作用
破坏蛋白质分子之间以及其他物质分子之间的非共价键,使蛋白质变性而改变原有的构象,保证蛋白质分子与SDS充分结合而形成带负电荷的蛋白质-SDS复合物。3精选课件二、SDS的根本原理〔一〕蛋白质分子的解聚
样品介质和聚丙烯酰胺中参加离子去污剂和强复原剂后,蛋白质亚基的电泳迁移率主要取决于亚基分子量的大小,而电荷因素可以被忽略。4精选课件1、SDS
阴离子去污剂
变性剂
助溶性试剂
断裂分子内和分子间的氢键
分子去折叠
破坏蛋白质分子的二级和三级结构
5精选课件2、强复原剂
巯基乙醇〔β-mercaptoethanal〕
二硫苏糖醇〔dithiothreitol,DTT〕
使半胱氨酸残基之间的二硫键断裂。6精选课件7精选课件SDS和复原剂的作用:
〔1〕分子被解聚或组成它们的多肽键
〔2〕氨基酸侧链与SDS充分结合形成带负
电荷的蛋白质-SDS胶束。
〔3〕蛋白质-SDS胶束所带的负电荷大大超
过了蛋白质分子原有的电荷量,消除
了不同分子之间原有的电荷差异。8精选课件蛋白质-SDS胶束的特点
〔1〕形状像一个长椭圆棒
〔2〕短轴对不同的蛋白质亚基-SDS胶束根本上是相同的。
〔3〕长轴的长度那么与亚基分子量的大小成正比。9精选课件胶束在SDS系统中的电泳迁移率不再受蛋白质原有电荷的影响,而主要取决于椭圆棒的长轴长度,即蛋白质或亚基分子量的大小。
当蛋白质的分子量在15KD—200KD之间时,电泳迁移率与分子量的对数呈线性关系10精选课件3、影响SDS电泳的关键因素
〔1〕溶液中SDS单体浓度〔>1mmol/L)
大多数蛋白质与SDS结合的重量比为1:1.4
〔2〕样品缓冲液的离子强度〔不>0.26)
低离子强度的溶液中,SDS单体才具有较高的平衡浓度。
11精选课件〔3〕二硫键是否完全被复原
当二硫键被彻底复原后,蛋白质分子才能被解聚,SDS才能定量地结合到亚基上而给出相对迁移率和分子量对数的线性关系。12精选课件〔二〕缓冲系统的选择
一般情况下,在被分析的蛋白质稳定的pH范围,凡不与SDS发生相互作用的缓冲液都可以使用,但缓冲液的选择对蛋白质的别离和电泳的速度是非常关键的。
13精选课件电泳缓冲液的种类:
1、磷酸缓冲液
2、Tris-醋酸钠缓冲系统
3、咪唑缓冲液系统:
比磷酸缓冲系统的导电性低,电泳速
度要比后者快一倍。
4、尿素系统:
适用分子量低于15KD的蛋白样品。
5、Tris-甘氨酸系统:
使用最多的缓冲液
6、Tris-硼酸盐缓冲液:
测定糖蛋白的分子量
14精选课件〔三〕凝胶浓度的选择
由于SDS电泳别离并不取决于蛋白质的电荷密度,只取决于分子解聚后SDS-蛋白质胶束的大小,因此凝胶浓度的选择会直接影响分辨率。
不同分子量范围的蛋白质应选用不同的凝胶浓度.
15精选课件16精选课件17精选课件18精选课件19精选课件〔四〕分子量测定
1、相对迁移率〔Rf〕
Rf即用每个带的迁移距离除以溴酚蓝前沿的迁移距离得到的。
测量位置应在蛋白带的中央。
蛋白带迁移距离
Rf=————————
溴酚蓝迁移距离
20精选课件蛋白带迁移距离固定前的凝胶长度
Rf=—————————X—————————
枯燥后的凝胶长度溴酚蓝迁移距离
21精选课件2、作图
以蛋白质分子量的常用对数值为纵坐标,Rf为横坐标绘图22精选课件23精选课件3、通过测定未知蛋白质的Rf值,便可在标
准曲线上读出他的分子量
24精选课件三、去污剂的选择
无离子去污剂:LubroW;Brij35,Tween
Triton
阳离子去污剂:cetyltrimethylammonium
bromide〔CTAB〕
cetylpyyridinium〔CPC〕
阴离子去污剂:SDSdeoxycholate
25精选课件四、方法
1、分类
〔1〕根据对样品的处理方式的不同
复原SDS电泳
非复原SDS电泳
带有烷基化作用的复原SDS电泳
26精选课件〔2〕根据缓冲系统和凝胶孔径的不同
连续电泳
不连续电泳
〔3〕根据电泳的形式
圆盘电泳
垂直电泳
平板电泳
水平电泳
27精选课件28精选课件29精选课件30精选课件2、操作
〔1〕制备别离胶
〔2〕制备积层胶(堆积胶〕31精选课件32精选课件33精选课件34精选课件35精选课件36精选课件别离胶聚合之后37精选课件38精选课件39精选课件40精选课件41精选课件42精选课件43精选课件〔3〕加样品
样品的处理
在蛋白溶液中参加过量的SDS后,可引起以下的反响:
蛋白质本身的电荷被屏蔽
氢键断裂
疏水相互作用被取消
多肽被去折叠(二级结构破坏),并形成椭球形44精选课件①复原SDS处理
当参加复原试剂DTT或β-二巯基乙醇后,蛋白质被完全去折叠,只根据分子量别离。45精选课件②带有烷基化作用的复原SDS处理
烷基化作用可以很好地并经久牢固地保护SH基团,而得到窄的电泳带。
46精选课件③非复原的SDS处理
许多样品,如生理体液、血清或尿素,一般只需用1%SDS在100℃煮沸3分钟,并不需要加复原剂,此时二硫键不能被断裂,蛋白并没有完全被去折叠。
47精选课件〔4〕电泳〔5〕固定
48精选课件〔6〕染色
考马斯亮蓝〔coomassiebrilliantblue〕
①R-250
三苯基甲烷,红蓝色,每个分子含有两个SO3H基团,偏酸性,和氨基黑一样也是结合在蛋白质的碱性基团上。
49精选课件50精选课件②G-250
二甲花青亮蓝,蓝绿色。51精选课件52精选课件银染色
银染的机制是将蛋白带上的硝酸银〔银离子〕复原成金属银,以使银颗粒沉积在蛋白带上。
53精选课件54精选课件〔7〕照相,凝胶枯燥〔8〕定量测定
55精选课件3、电泳过程中的不正常现象
〔1〕“微笑〞现象
指示剂前沿呈现两边向上的曲线形,说明凝胶的不均匀冷却,中间局部冷却不好。56精选课件〔2〕“皱眉〞现象
由于垂直电泳槽的装置不适宜引起的,特别是当凝胶和玻璃板组成的“三明治〞底部有气泡或靠近隔片的凝胶聚合不完全。
57精选课件58精选课件〔3〕“拖尾〞现象
样品溶解不佳引起。59精选课件〔4〕“纹理〞现象
由于样品中的不溶颗粒引起的。60精选课件〔5〕偏斜现象
电极放置不平行引起或加样位置偏斜而引起61精选课件〔6〕带太宽
加样量太多或加样孔泄漏引起62精选课件63精选课件64精选课件MolecularmassversusmolecularweightMolecularmass(symbolm)isexpressedinDaltons(Da).OneDaltonisdefinedas1/12themassofcarbon12.MostmacromoleculesarelargeenoughtousethekiloDalton(kDa)todescribemolecularmass.Molecularweightisnotthesameasmolecularmass.Itisalsoknownasrelativemolecularmass(symbolMr,whererisasubscript).Molecularweightisdefinedastheratioofthemassofamacromoleculeto1/12themassofacarbon12atom.Itisadimensionlessquantity.WhentheliteraturegivesamassinDaorkDaitreferstomolecularmass.Itisincorrecttoexpressmolecularw
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