传染性疾病标本采集方法

传染性疾病标本采集方法标本采集、运送与报告操作规程一、血培育指征患者消灭寒战，体温超过38℃或低体温，疑心血流感染时，尤其存在以下状况时，应抽血做细菌和真菌培育：医院内肺炎；留臵中心静脉导管超过72h；感染性心内膜炎；骨髓炎；有严峻根底疾病、免疫缺陷伴全身感染病症；临床医生疑心有血流感染可能的其他状况。二、采血时机一旦疑心有血流感染可能，应马上采血做血培育，最好在抗菌治24h三、采血流程〔一〕消毒1．培育瓶消毒程序：用消毒液消毒培育瓶橡皮塞，待枯燥后使用。皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒液挥发枯燥后〔常需30s以上〕穿刺采血。〔二〕静脉穿刺和培育瓶接种成人用注射器无菌穿刺取血后，排尽针头内空气，直接注入血培养瓶，勿换针头〔假设行其次次穿刺或用头皮针取血时，应换针头〕，先注于厌氧培育瓶，避开注入空气，然后注入需氧培育瓶，轻轻混匀以防血液凝固。近年来，临床普遍承受负压血培育瓶，将血从患者静脉直接吸入血培育瓶，削减污染环节。〔三〕留意事项1．检验单需注明抗菌药物使用状况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。2．采血部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非疑心有导管相关的血流感染，否则不应从留臵静脉或动脉导管取血，由于导管易被皮肤正常菌群污染。采血次数：对于成年患者，应当同时分别在两个部位采集血标本，在两个不同部位分别到同样菌种才能确定是病原菌。4．细菌性心内膜炎：在24h内取血3次，每次间隔不少于30min25．采血量：以培育基与血液之比10：1为宜，以稀释血液中的抗菌药物、抗体等杀菌物质。采血量过少会明显降低阳性率。成人每次8～10ml2ml。四、运送要求全部标本采集后都应马上送往试验室，最好在2h内。假设不能准时送检，宜臵于室温环境。血培育瓶送到检验科放入培育箱前，不应暂存于冰箱内。送检标本应正确粘贴条形码，注明采样时间和送检时间。安全防护：放标本的容器必需防漏，制止将渗漏的标本送往试验室。五、报告要求〔一〕紧急口头〔〕报告血培育消灭阳性报警时，马上进展革兰氏染色、镜检，并在最短时间内将结果向临床主管医生进展紧急口头〔〕报告。口头报告包含以下内容，并记录在案。报告者全名〔或工号〕；报告的时间；XXXXXXXX日XXXX〔24〕(3)所联系医生的全名〔或工号〕；(4)报告镜检结果并强调其紧急价值；(5)确认临床医生收到报告并复述结果。〔二〕最终结果〔书面〕报告(1)无菌生长〔5天无需氧菌和厌氧菌生长〕；(2)阳性培育结果〔最终鉴定结果、最终药敏结果〕。〔三〕其他报告和记录1．标本被拒收时，需即刻通知临床马上重采血，并记录在案。2．最终结果与紧急口头报告结果不符，需要变更时，需马上通知临床，同时必需在书面报告上供给正确的结果，注明变更的内容。3．其他需临床留意的事项的记录，如：采血量缺乏、标本转运时间过长、标本采集份数不够等信息。痰标本采集与运送标准操作规程一、采集目的一般可用于一般细菌、分枝杆菌、真菌和军团菌的涂片或培育检测，经气管穿刺吸引物可用于厌氧菌的检测。二、一般原则1．采集标本的最正确时机应在使用抗菌药物之前。宜采集早晨其次口痰液。对于一般细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3天。24h疑心分枝杆菌感染者，应连续收集3天早晨痰液送检。三、采集方法〔一〕自然咳痰法与雾化导痰法1．用物预备：无菌容器〔盒〕、生理盐水(250ml或500ml)、化验单。核对患者床号、姓名等。无痰或痰量极少者可用3%～5%氯化钠溶液5ml雾化吸入约5min后留取痰液。如有可能，应在医护人员直视下留取早晨其次口痰。叮嘱患者留取前摘去牙托，清洁口腔，如刷牙后反复用生理盐水漱口；深吸气后用力自气管深部咳出痰液，臵无菌容器内。应尽可能防止唾液及鼻咽局部泌物混入样品，不应用纸巾包裹痰液。〔二〕支气管镜法鼻或口腔插入支气管镜。常用采集方法有经支气管镜吸引、支气管肺泡灌洗、防污染毛刷采样或防污染支气管肺泡灌洗等。〔三〕经人工气道吸引法1．用物预备：负压吸引器、生理盐水、一次性吸痰管、无菌手套，无菌容器〔试管〕、化验单。核对患者床号、姓名等。将患者头部转向操作者一侧。进展手卫生后将一次性吸痰管末端拆开，连接吸引器，调整吸引器至适宜负压(成人：40.0～53.3kPa;小儿：＜40.0kPa)。5．将一次性吸痰管外包装去除，戴手套持吸痰管试吸生理盐水，检查管道是否通畅。6．折叠一次性吸痰管末端，插入口腔或鼻腔或人工气道至适宜深度，放开吸痰管末端，轻柔、敏捷、快速地左右旋转上提吸痰管吸痰。见吸痰管内有痰液吸出，即折叠一次性吸痰管退出，将一次性吸痰管与吸引器分别(使用人工呼吸机者，一次吸痰时间不超过15s，吸痰前1～2min)。7．将痰液注入无菌容器〔试管〕内，如痰液黏稠可用一次性针筒向吸痰管末端注入少量生理盐水，将痰液冲人无菌容器〔试管〕内。四、运送和保存应在2h之内送至试验室，否则应4℃冷藏，但放臵时间不行超过24h。尿液标本采集和运送标准操作规程一、采集时机宜为抗菌药物使用之前的早晨第一次尿液。二、采集方法〔一〕清洁中段尿女性：采样前用肥皂水或0.1%的高锰酸钾溶液等冲洗外阴，用手指分开阴唇，弃其前段尿，不终止排尿，留取中段尿10～20ml于无菌容器内。男性：采样前用肥皂水或0.05%～0.1%的聚维酮碘〔碘伏〕溶液等消毒液清洗尿道口，擦干后上翻，弃其前段尿，不终止排10～20ml〔二〕耻骨上膀胱穿刺主要用于厌氧菌培育或留取标本困难的婴儿、脊柱损伤患者的尿液采集。先用0.25%的聚维酮碘溶液等消毒液消毒穿刺部位皮肤，然后使用无菌注射器直接从耻骨联合与脐连线上高于耻骨联合2cm处刺10--20ml〔三〕导尿管尿直接导尿法：使用0.05%～0.1%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒会阴局部，用导尿管直接经尿道插入膀胱，先弃其前段尿液约15ml10～20ml留臵导尿管法：医院内尿路感染中，临床最常用此法。采集前先夹住导尿管，采集时则松管弃其前段尿液，使用0.25%～0.5%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒导尿管的采样部位，使用无菌注射器斜刺入导尿管〔从采样口或靠近尿道的导尿管管壁〕抽取10～20ml尿液于无菌容器内。．回肠造口导尿管法：摘除导管，弃去里面的尿液，先用0.05%～0.1%的聚维酮碘溶液等消毒剂消毒吻合口，再将导尿管插入到清洁的吻合口，直至筋膜的深部采集10—20ml尿液于无菌容器内。〔四〕小儿收集包对于无自控力量的小儿可应用收集包采集尿液，这种装臵由于很难避开会阴部菌群污染产生假阳性，所以只有在检验结果为阴性时才有意义。假设检验结果为阳性，应结合临床进展分析，必要时可使用耻骨上膀胱穿刺或导尿法留取尿液进展复检。三、标本运送标本采集后应准时送检并接种，室温下保存时间不应超过2h〔夏季保存时间应适当缩短或冷藏保存〕。假设不能准时运送或接种，应4℃冷8h。四、留意事项1．不应从集尿袋中采集尿液。尿液中不应加防腐剂或消毒剂。假设尿液培育前患者曾使用抗菌药物，应反复屡次送检。屡次采集或24h尿不应用于尿液培育。5-除非进展流行病学调查，不应对长期留臵导尿管患者常规进展尿液培育。6．培育结果应结合临床表现、菌落计数以及微生物种类等，进展综合推断。粪便标本采集法【目的】1、常规粪标本检查粪便的颜色、外形及有无脓血。2、隐血粪标本检查粪便内肉眼不能观察的微量血液。3、寄生虫及虫卵粪标本检查寄生虫成虫、幼虫及虫卵并计数，进行浓缩集卵、日本血吸虫毛蚴孵化等。4、培育粪标本检查粪便中的致病菌。【操作前预备】1、患者评估了解患者的临床诊断及合作力量。了解需做的检查工程，以明确收集粪便标本的种类及留意事项。2、患者预备使患者了解留取粪标本的目的、意义和方法，能够协作，3、用物预备干净便盆，常规检查应备集便盒〔2支〕，粪便培育应备培育皿，寄生虫检查应备寄生虫检便盆。【操作步骤】1、核对医嘱，贴检验单副联于集便盒上。2、核对患者姓名，做好解释。3、告知患者正确的留取方法。常规粪标本采集：用棉签取较中心的粪便或脓血黏液局部少许于集便盒内。培育粪标本采集：解大便之前用消毒液冲洗肛门，用无菌棉签取粪便中心处臵于培育皿中，盖好盖子。如患者无便意时可用无菌棉签蘸取等渗盐水，由肛门插入6-7cm，轻轻转动棉签取出粪便少许，插入培育试管中送检。寄生虫及虫卵标本采集：如查阿米巴原虫，便盆需要先加温，因阿米巴原虫在低温下失去活力难以找到，便后连同便盆马上送检；查绦虫有时需屡次收集粪便，查找绦虫头；查虫卵则需取大便的黏液脓血局部；查蛲虫虫卵，需在患者早晨起床前用特制的肛门拭子轻擦肛周皱褶处，放入臵有温盐水的试管中马上送检。4、标本准时送检，做好记录，追踪记录检验结果。【留意事项】1、采集培育标本应取未接触便盆的大便，留意无菌操作，以免因污染而影响培育效果。2、假设留取的标本时做隐血试验，则嘱患者在检查前三天禁食肉、肝、肉类食物、含大量叶绿素的食物和含铁剂的药物。3、如留取寄生虫或虫卵粪标本时，当服用驱虫剂或做血吸虫孵化检查，需留取全部粪便送检。急性缓慢性麻痹粪便标本：在麻痹消灭后14天内采集两份粪便标本〔临床高度疑似脊灰病例、高危病例和0剂次AFP病例采集3份〕至少间隔24小时，每份标本重量≥5