动物实验与血清学试验演示文稿

动物实验与血清学试验演示文稿本文档共29页；当前第1页；编辑于星期三\2点18分优选动物实验与血清学试验本文档共29页；当前第2页；编辑于星期三\2点18分进行实验操作前必须注意的事情1.实验动物作为人类的替难者进行各种生物医学研究。试验中要从动物福利和动物实验伦理学考虑，减少一些不必要的动物实验，如若不得不做的动物实验，要尽可能将动物的痛苦、压迫和不适降到最低。2.动物实验的实践性非常强，不能仅靠书本理论知识，需要通过反复实践加以掌握，以保证实验的顺利进行和减少动物承受的痛苦本文档共29页；当前第3页；编辑于星期三\2点18分国际上对动物实验伦理有如下五项要求:

⑴动物居住空间应符合标准,注意日常的饲育管理,不使动物饥饿、缺水和患病。⑵尽可能地采用代替法最少地使用和牺牲动物。⑶使用犬、猫和猴时，实验前应进行训练，尽可能地减少动物的恐惧和不安。⑷实验结束和动物不可能恢复时，应采取安乐死。⑸要爱护试验动物和对由于实验死亡的动物应持有怜悯和感谢之情。本文档共29页；当前第4页；编辑于星期三\2点18分一、动物的抓取本文档共29页；当前第5页；编辑于星期三\2点18分动物的抓取

小白鼠的捉持

捉拿时可先用右手抓住并提起鼠尾，置于实验台或鼠笼上，并稍向后拉；用左手的拇指和食指抓住小鼠两耳后颈背部的皮肤，将鼠置于左手心中，拉直后肢，以无名指及小指按住鼠尾或小鼠的左后肢即可。小鼠抓取方法本文档共29页；当前第6页；编辑于星期三\2点18分

大白鼠的捉持

大白鼠的捉拿时，可戴上手套。实验者可用右手捉住鼠尾，放在实验台或鼠笼上，并稍向后拉；左手掌面向鼠背，食指和中指压住鼠的头顶，拇指和无名指分别从鼠的两腋下插入，将鼠的两前肢卡住；或拽紧鼠后颈及后背皮肤即可。大鼠抓取方法动物的抓取本文档共29页；当前第7页；编辑于星期三\2点18分豚鼠的捉拿、固定

豚鼠胆小易惊，抓取时必须稳、准、迅速。先用手掌扣住鼠背，抓住其肩胛上方，将手张开，用手指环握颈部，另一只手托住其臀部，即可轻轻提起、固定。豚鼠抓取方法动物的抓取本文档共29页；当前第8页；编辑于星期三\2点18分家兔的捉持

用一手抓住家兔颈背部皮肤，将兔提起，另一手托其臀部，使兔呈坐位姿势。犬抓取注意点

不要轻易使用长柄铁钳，钳伤造成的伤害会使它对你更加恐惧，影响以后实验的进行。抓取后用绳子将嘴绑住。狗嘴的捆绑方法家兔的抓取

动物的抓取本文档共29页；当前第9页；编辑于星期三\2点18分二、实验动物的麻醉方法本文档共29页；当前第10页；编辑于星期三\2点18分实验动物的麻醉方法对实验动物进行麻醉的目的是：消除实验过程中引起的痛苦和不适，确保实验动物的安全和动物实验的顺利进行，是动物实验伦理的一个重要方面。应结合实验目的、实验动物种类、日龄及健康状况等因素进行综合考虑，决定选用的麻醉剂和麻醉方法。麻醉方法有全身麻醉和局部麻醉两种。在实验动物的麻醉中绝大多数采用全身麻醉。本文档共29页；当前第11页；编辑于星期三\2点18分吸入麻醉法：用挥发性麻醉药。常用麻醉药：乙醚氯仿全身麻醉注射麻醉法：用非挥发性麻醉药。常用麻醉药：戊巴比妥钠硫喷妥钠氯氨酮乌拉坦实验动物的麻醉方法本文档共29页；当前第12页；编辑于星期三\2点18分常用非挥发性麻醉药的剂量

药物及常用的溶液浓度剂量（mg/kg)麻醉持续时间与特点小鼠大鼠豚鼠家兔乌拉坦（20～25%）1000～1500（ip）1000～1500（ip）1000～1500（ip）1000～1200（iv）2～4小时。对呼吸和神经影响小，但可降低血压1000～1500（ip）戊巴比妥钠（1～4％）45～50（ip）40～50（ip）40～50（ip）30～40（ip）2～4小时。注射后作用迅速，一般最常用，肌松不够完全。20～25（iv）硫喷妥钠（2～4％）30～40（iv）约半小时。实验动物的麻醉方法本文档共29页；当前第13页；编辑于星期三\2点18分实验动物麻醉应注意的事项麻醉之前应禁食，准确称量动物体重，作为计算麻醉剂用量的依据。应注意不同麻醉药对动物的作用是不同的，如戊巴比妥钠、硫贲妥钠等能抑制心肌收缩力，使肌肉松弛，而氯胺酮则相反。大动物犬、猴、羊等麻醉前半小时应注射麻醉前给药如阿托品和苯巴比妥钠。静脉注射麻醉药是必须缓慢，边注射边观察动物。在麻醉过程中密切观察动物的反应，动物在麻醉期间体温下降，应注意保温。实验动物的麻醉方法本文档共29页；当前第14页；编辑于星期三\2点18分三、实验动物血液的采集方法本文档共29页；当前第15页；编辑于星期三\2点18分实验动物血液的采集方法1、大鼠、小鼠的采血方法

尾部采血眼眶后静脉丛采血颈(股)静脉或颈(股)动脉采血摘眼球采血断头采血心脏采血尾部采血心脏采血本文档共29页；当前第16页；编辑于星期三\2点18分大小鼠不同采血方法的比较采血方法采血量（ml）应用小鼠大鼠断头采血法0.2-1.01.5-5.0大批动物集中处死采血，速度快摘眼球采血法0.2-1.51.0-8.0大批动物集中采血，若一次少量采,可反复几次尾静脉切割采血法0.01-0.050.1-0.5用于用血量少的检验，如血常规，能长时期反复多次采血眼眶后静脉采血法0.02-0.10.2-1.0能反复多次采血腋窝动静脉采血法0.5-1.51.0-5.0需处死动物，麻醉后采血心脏采血法-0.2-1.0腹主动脉采血法-5.0-10.0需处死动物，麻醉后采血本文档共29页；当前第17页；编辑于星期三\2点18分2、豚鼠采血方法耳缘切口采血背中足静脉采血心脏采血

3、兔的采血方法耳缘静脉采血耳中央动脉采血颈静脉采血颈动脉采血心脏采血实验动物血液的采集方法本文档共29页；当前第18页；编辑于星期三\2点18分4、犬的采血方法

后肢外侧小隐静脉采血前肢背侧皮下头静脉采血颈静脉采血股动脉采血前肢静脉采血后肢小隐静脉采血实验动物血液的采集方法本文档共29页；当前第19页；编辑于星期三\2点18分

各种实验动物活体安全采血量和致死采血量动物种类最大安全采血量（ml）最小致死采血量（ml）小鼠0.30.5大鼠25豚鼠510兔1040犬50300猴1560实验动物血液的采集方法本文档共29页；当前第20页；编辑于星期三\2点18分四、动物各种体液的采集方法本文档共29页；当前第21页；编辑于星期三\2点18分动物各种体液的采集方法1、尿液的采集方法

常用的采集方法较多，一般在实验前需给动物灌服一定量的水。代谢笼法（适用于大、小鼠）导尿法（常用于雄性兔、狗）压迫膀胱法（适用于兔、狗等较大动物）

输尿管插管法膀胱插管法膀胱穿刺法剖腹采尿法反射排尿法本文档共29页；当前第22页；编辑于星期三\2点18分2、消化液的采集

唾液（直接抽取法；制造腮腺瘘法）

胃液（直接收集胃液法；制备胃瘘法）

胰液和胆汁（通过对胰总管和胆总管的插管而获得）3、脑脊液的采集

狗、兔脑脊液的采集通常采取脊髓穿刺法大鼠脑脊液的采集可采用枕大孔直接穿刺法4、其他体液的采集胸水的采集腹水的采集骨髓的采集精液的采集阴道内液体的采集

动物各种体液的采集方法本文档共29页；当前第23页；编辑于星期三\2点18分五、实验动物的处死方法本文档共29页；当前第24页；编辑于星期三\2点18分实验动物的处死方法安死术的概念

“安死术”是指以人道的方法处死动物的过程。在处死动物过程中减少动物的惊恐或焦虑，安静地、无痛苦地死亡。本文档共29页；当前第25页；编辑于星期三\2点18分1、大鼠小鼠处死方法颈椎脱臼法急性失血法麻醉致死法断头法击打法实验动物的处死方法本文档共29页；当前第26页；编辑于星期三\2点18分2、犬、兔、豚鼠处死方法空气栓塞法优点：方法简单、迅速，缺点：动物死于急性循环衰竭，各脏器凝血十分明显。急性失血法先行麻醉，再分离颈动脉或股动脉，将一根较粗的塑料管插入动脉内放血。动物在3～5min内即可死亡。优点：动物十分安静，对脏器无损伤，对活杀采集病理切片标本是一种比较好的方法。化学药物致死法通过注射一定量的化学药物而使动物迅速致死。例如：

10％氯