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文档简介
血液组成当前第1页\共有22页\编于星期五\18点红细胞脆性与溶血:红细胞具有选择透过性,高渗失水,低渗吸水,低渗条件下或其他原因致使红细胞易破裂导致血红蛋白逸出称溶血。当前第2页\共有22页\编于星期五\18点【实验目的】1.学习鱼类采血的主要方法,掌握鱼类尾柄动脉采血技术;2.了解血液的组成,进一步深刻认识血浆与血清的主要区别。3.观察红细胞在不同浓度生理盐水中的细胞形态,进一步认识红细胞的渗透脆性。当前第3页\共有22页\编于星期五\18点【实验原理】当前第4页\共有22页\编于星期五\18点当前第5页\共有22页\编于星期五\18点当前第6页\共有22页\编于星期五\18点当前第7页\共有22页\编于星期五\18点当前第8页\共有22页\编于星期五\18点当前第9页\共有22页\编于星期五\18点当前第10页\共有22页\编于星期五\18点【实验对象】
鲫鱼【实验药品】
肝素钠溶液、MS-222溶液,生理盐水(1%,0.65%,0.3%)、蒸馏水。【仪器与器材】
解剖盘1个、毛巾1块,1mL注射器5个、烧杯(200mL)、1.5mL离心管(10个)、显微镜、载破片5片、滴管2支、拭镜纸。当前第11页\共有22页\编于星期五\18点【实验方法与步骡】1、血液采集
(1)实验鱼的麻醉
将鲫鱼先放入MS-222溶液的桶中,进行实验鱼的麻醉,当鲫鱼在麻醉剂溶液中缓慢运动或在桶中侧翻时,这时表明麻醉的程度比较适中。当前第12页\共有22页\编于星期五\18点鱼类麻醉前后对比示意图当前第13页\共有22页\编于星期五\18点
(2)取血的准备
将准备好的1mL注射器,一只不作任何处理,一只抽动活塞用肝素钠溶液将注射器内湿润,为血液的采集做好准备工作。当前第14页\共有22页\编于星期五\18点
(3)血液的采集
注射器的针头从臀鳍基部下针,将针头沿着垂直于尾柄的方向推进,使针头刚好尾部脊柱的下侧,此时保证针头的位置不随意挪动,右手大拇指和食指带动活塞向外运动,经大气压力将血液压入注射器中。当前第15页\共有22页\编于星期五\18点2、血清、血浆的制备①血清的制备
用未经肝素钠溶液处理的注射器所采集的血样,注入离心管后让其静止放置20分钟,待血液凝结后所析出的上清液即为血清。
当前第16页\共有22页\编于星期五\18点
②血浆的制备
经肝素钠溶液处理的注射器所采集的血样,注入离心管后放置1小时,或者3000转/分钟转速下离心5分钟,获得的上层淡黄色液体即为血浆。③比较血浆和血清两者存在的区别。当前第17页\共有22页\编于星期五\18点3、红细胞的渗透脆性①等渗观察
用滴管吸0.65%的生理盐水,吸1mL左右滴入1只新的离心管中,再将刚采取的新鲜血液(或去纤维蛋白血)用注射器轻轻推1-2滴到该生理盐水中,待轻轻颠倒混匀后,用吸管滴1滴到载玻片上,放于显微镜下观察细胞的形态。当前第18页\共有22页\编于星期五\18点
②渗透失水
用滴管吸1%的生理盐水,吸1mL左右滴入1只新的离心管中,再将刚采取的新鲜血液(或去纤维蛋白血)用注射器轻轻推1-2滴到该生理盐水中,待轻轻颠倒混匀后,用吸管滴1滴到载玻片上,放于显微镜下观察细胞的形态。当前第19页\共有22页\编于星期五\18点
③渗透吸水
用滴管吸0.3%的生理盐水,将1mL左右生理盐水滴入1只新的离心管中,再将刚采取的新鲜血液(或去纤维蛋白血)用注射器轻轻推1-2滴到该生理盐水中,待轻轻颠倒混匀后,用吸管滴1滴到载玻片上,放于显微镜下观察细胞的形态。
④脆性鉴定
再将新鲜血液滴入蒸馏水中,观察细胞的形态。当前第20页\共有22页\编于星期五\18点【注意事项】1.麻醉实验鱼时不要过度麻醉,会对血液的流动产生一定的影响,最终导致采血困难。同时,麻醉的时间也不能过短,否则影响采血操作。2.肝素钠溶液处理注射器时,一定要将注射器内部全部湿润,否则仍可能会产生凝血。当前第21页\共有22页\编于星期五\18点3.下针的位置有要准,一定要刺到脊柱腹侧,且针头不能轻易变动位
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