实验五药物对离体肠的

实验五药物对离体肠的第1页，共15页，2023年，2月20日，星期六一、实验原理本实验制备兔离体肠道标本，与张力换能器相连，在BL-420型生物信号显示与处理系统上显示用药后的肠运动状态（张力、幅度和节律），从而观察药物对离体肠运动的影响。第2页，共15页，2023年，2月20日，星期六二、实验目的学习兔离体肠道标本的制备方法观察药物对离体兔肠运动的影响第3页，共15页，2023年，2月20日，星期六三、实验材料（一）动物

家兔（二）器材

BL-420型生物信号显示与处理系统，数显恒温平滑肌槽，术剪，眼科镊，注射器，培养皿，缝针，棉线。（三）药品0.05%硫酸新斯的明，0.01%肾上腺素，0.05%硫酸阿托品，0.001%乙酰胆碱，台氏液，未知名的药物（XGJ）第4页，共15页，2023年，2月20日，星期六四、实验步骤与观察项目离体兔肠段标本的制备：取空腹家兔1只，左手持髂上部，右手握木棒，猛击枕骨部致死。迅速开腹，自幽门下6cm处剪取空肠，立即置入盛有冷台氏液的培养皿中，剪去肠系膜，清洗肠内容物，将肠管剪成2～3cm的小段，两端各穿一线备用。第5页，共15页，2023年，2月20日，星期六2.连接实验装置

标本一端用线系于Z型沟的弯钩上，并置于数显恒温肌槽的内槽中，另一端系在已调好的BL-420型记录仪的张力换能器上，缓缓通入空气（每秒钟气泡1～2个）。浴槽的营养液以能浸没标本为宜。水浴温度为38±0.5℃。第6页，共15页，2023年，2月20日，星期六3.软件操作打开分机，再开电脑。点击打开BL-420型生物信号显示与处理系统→点击“实验项目”→“消化实验”→“消化道平滑肌的生理特性”，编辑标记条。第7页，共15页，2023年，2月20日，星期六4.实验步骤

1．待离体肠适应后（收缩张力和频率规则后）,打开记录仪描记一段离体小肠平滑肌的正常收缩曲线，注意观察肠平滑肌张力及收缩幅度的变化情况。第8页，共15页，2023年，2月20日，星期六2.给药记录正常曲线后，在药槽中加入0.05%硫酸新斯的明0.5ml，观察肠平滑肌张力及收缩幅度的变化情况，放掉药槽中的台氏液，加入预先准备好的38℃新鲜台氏液，重复更换2~3次新鲜台氏液，待肠段活动恢复至对照水平时，进行下一项实验。在药槽中加入0.０1%肾上腺素2~4滴，观察肠平滑肌张力及收缩幅度的变化情况。后续处理同上。在药槽中加入0.001%乙酰胆碱2~4滴，观察后续处理同上。观察及后续处理同上。在药数显恒温平滑肌槽中加入0.05%阿托品2~4滴，待作用明显后，描记变化情况，立即加入0.001%乙酰胆碱2~4滴，后续处理同上。滴加XGJ2~4滴，观察肠平滑肌张力及收缩幅度的变化情况。第9页，共15页，2023年，2月20日，星期六五.实验结果对图形进行分析，比较给药前和给药后离体肠收缩曲线的张力、强度（幅度）、频率（次/10分钟），分析讨论药物对离体肠作用的特点和机理。打印曲线并粘贴在实验报告上。第10页，共15页，2023年，2月20日，星期六六．注意事项1.游离及取出肠段时，动作要快，要轻柔。为保持离体肠段的活性，游离肠段及穿线在预冷的营养液中进行。2.悬挂肠段不宜在空气中暴露过久，以免影响其活性。3.加药时不要把药液直接加到肠管上，以免影响结果。4.记录电位时，要保持安静，避免振动实验台，以免影响实验结果。第11页，共15页，2023年，2月20日，星期六七.思考题1．进行哺乳类动物离体组织器官实验时，需控制哪些条件?2.加入阿托品后再加入乙酰胆碱，肠段活动将如何变化，为什么?八.创新与探索设计实验，观察致泻药或止泻药物对离体肠段平滑肌的影响。第12页，共15页，2023年，2月20日，星期六九.实验报告书写实验报告时除需遵守以前的要求外，还必须打印出不同组肠运动曲线，并对实验结果进行分析。实验设计随实验报告交上来。第13页，共15页，2023年，2月20日，星期六介绍数显恒温平滑肌槽1.控氧：打开供氧开关，调节通气量，以每秒钟气泡1～2个为宜；2.控温：打开设定开关，设定为37℃，调节恒温开关加热；关闭设定开关，打开测量开关，检测温度，当温度显示为37℃时，将恒温旋钮调至最低，此时开始保持恒温。由于很多仪器的数显不很准确，为避免影响实验，用温度计进行监控是可靠的办法。第14页，共15页，2023年，2月20日，星期六3.冲洗：（1）放出内槽中的溶液：用夹子夹紧保温液和营养液之间的胶管，阻断水流。打开调节阀一，内槽溶液从换液口流出；（2）补充内槽溶液：待内槽溶液流尽后