实验三血清γ球蛋白的分离、纯化及鉴定七年制课件

血清γ球蛋白的

分离纯化与鉴定1【实验目的】1．学习盐析法、凝胶层析和离子交换层析分离纯化蛋白质的基本原理及应用2．掌握醋酸纤维薄膜电泳技术的原理及应用3．了解蛋白质分离纯化的总体思路2

【实验方法】

一、盐析法粗分γ-球蛋白二、凝胶过滤方法脱盐三、离子交换层析方法纯化γ-球蛋白四、醋酸纤维素薄膜电泳法鉴定γ-球蛋白的纯度

3分离蛋白质的方法分离方法沉淀法盐析法有机溶剂沉淀法层析法电学法电泳法等电聚焦超速离心法离子交换层析吸附层析凝胶过滤（分子筛）亲和层析在分离纯化时，根据情况选用几种方法，相互配合才能达到分离纯化一种蛋白质的目的。5【基本原理】

本实验采用硫酸铵盐析、葡聚糖凝胶过滤、离子交换层析方法，分离纯化血清γ-球蛋白。最后用醋酸纤维素薄膜电泳法鉴定γ-球蛋白的纯度。

6实验思路分段盐析去除杂蛋白凝胶层析脱盐交联葡聚糖吸水浓缩醋酸纤维素薄膜电泳鉴定先粗后细离子交换层析纯化7定义：加入大量中性盐以破坏蛋白质的稳定因素并使从溶液中沉淀析出的现象。原理:

破坏蛋白质两个稳定因素：

水化膜和电荷层中性盐：(NH4)2SO4、Na2SO4、NaCl等。优点：蛋白质不变性，常用。盐析法9盐析步骤取离心管一支加入血清2ml加入2ml0.9%氯化钠摇匀边搅拌混匀边缓慢滴加饱和(NH4)2SO44ml上清液（主要含清蛋白）倾去静置10min，再离心（5000转/分）10min沉淀用1ml0.9%氯化钠搅拌溶解逐滴加饱和(NH4)2SO42ml,摇匀静置10min，再离心（5000转/分）10min倾弃上清液（主要含α、β球蛋白）沉淀即为初步纯化的γ－球蛋白加入0.0175mol/L磷酸缓冲液（pH=6.3)1ml溶解γ－球蛋白粗提液10二、葡聚糖凝胶柱层析脱盐

欲去除盐析法分离得到的球蛋白粗提液中大量盐，通常有两种方法：

凝胶层析法、透析本试验采用葡聚糖凝胶——SephadexG25层析方法除去球蛋白粗提液中的盐硫酸铵，以便下一步用离子交换层析方法进一步提纯球蛋白。11凝胶层析法脱盐13凝胶柱层析脱盐14分子筛层析15Kd

—分配系数：精确衡量混合物中某一待分离成分在凝胶柱内的洗脱行为，反映物质分子进入凝胶颗粒的程度，是溶质分子大小的一个函数Ve—洗脱体积：分离物被洗脱时所用的洗脱液体积Kd=(Ve-Vo)/Vi

洗脱曲线：以洗脱体积为横坐标，各物质浓度/吸光度为纵坐标作图17（1）完全被排阻的极端大分子，Ve=Vo，Kd=0（2）中等分子，Ve=Vo+Kd·Vi，0<Kd<1（3）完全渗透的小分子，Ve=Vo+Vi，Kd=118▲SephadexG-25的准备▲装柱（15~20cm）操作步骤：1、层析柱保持垂直。2、放蒸馏水，排出空气，关闭出口。3、加入搅拌均匀的SephadexG-25悬液，调节流速10滴/min，使凝胶均匀沉降，不断补充，直至18cm。4、上留1-2mm的水，关闭出口。

注意：★床面上要保持少许水，防止胶床露出液面。

★胶面不平，用玻棒轻轻搅动，让凝胶自然沉降，使表面平整。19脱盐

12345678910②上样γ－球蛋白，粗提液①装柱葡聚糖凝胶G-25，柱高18-20cm流速：每分钟10滴左右

③加入洗脱剂④收集20滴换一支试管21⑤.层析后洗脱液检测白色比色板,洗净备用。一块在各孔滴加奈氏试剂（检测NH4+）,另一块滴加20%璜基水杨酸（检测蛋白质）。不用滴管,避免污染,直接倒…用“-”表示无现象，用“+”,“++”,“+++”等表示颜色深浅⑥回收凝胶22注意事项：

1.凝胶柱的制备质量决定分离效果的好坏。

2.加样分离时，滴速越慢，分离效果越好。★

以管号为横轴，蛋白质含量为纵轴绘制洗脱曲线，分析实验结果。23离子交换层析的基本原理

离子交换层析是一种常用的、通过使用各种类型的离子交换剂达到分离纯化目的的层析方法。离子交换剂是通过化学反应将带电基团引入到惰性支持物上形成的固体物质，在实验中作为固定相。如果其带负电，则能结合阳离子，成为阳离子交换剂；如果其带正电，则能结合阴离子，称为阴离子交换剂。可根据实验需要，选择不同的离子交换剂进行离子交换层析。

DEAE（二乙基氨基乙基）－纤维素含有可离子化的碱基，可与氢离子结合，成为带正电荷的阴离子交换剂。25DEAE－纤维素离子交换层析纯化γ－球蛋白血清α、β、γ－球蛋白、清蛋白的等电点为：清蛋白pI=4.64，

α2球蛋白

pI=5.06，

β球蛋白pI=5.12，

γ球蛋白pI=7.3本实验采用0.0175mol/lpH6.5NH4Ac缓冲液进行洗脱。此pH，DEAE带正电荷，可与带负电荷的α、β-球蛋白和清蛋白结合，而带正电荷的γ-球蛋白不与DEAE结合，首先从层析柱中洗脱出来，首先收集到的既是纯化的γ-球蛋白。26四、γ－球蛋白纯化液的浓缩

利用葡聚糖凝胶富含羟基，吸水，不允许大分子蛋白进入微孔的特性，在样品溶液中加少量凝胶，离心，浓缩蛋白。

每ml纯化γ－球蛋白溶液加SephadexG-250.25g，摇动2～3分钟，离心3000r/min，5分钟，上清即为浓缩γ-球蛋白（或用冷冻干燥仪使其浓缩）。

29五、γ－球蛋白鉴定

用醋酸纤维素薄膜电泳的方法，以血清电泳图谱为对照，鉴定所分离的蛋白质种类和纯度（参见血清蛋白质醋酸纤维素薄膜电泳）。

30蛋白质的电离示意图

31基本原理1、以醋酸纤维薄膜作为支持体的一种电泳方法。2、在pH8.6巴比妥缓冲液中，血清蛋白质在电场中均带负电荷，向正极移动。3、带电荷多、分子量相对小的泳动速度快；带电荷少、分子量相对大的泳动速度慢。32血清蛋白质乙酸纤维素薄膜电泳33清蛋白12

加样线加样线纯化蛋白对照样品34醋酸纤维素薄膜电泳鉴定

点样：全血清：点样一次脱盐后的粗蛋白溶液：点样3～5次浓缩后的纯γ－球蛋白溶液：点样3～5次35醋酸纤维素薄膜电泳电泳条件：

电压：90－110V；时间：50分钟。染色：电泳毕，关电源。取出薄膜浸入盛有氨基黑10B染色液的染色缸中染色5分钟，用2.5%醋酸洗脱液漂洗，直至背景呈白色。以血清蛋白图谱为对照，观察提纯物属哪种蛋白，其纯度如何？

36操作步骤：1、装置电泳箱。区分电泳箱正负极。2、点样：浸于巴比妥溶液中的薄膜，滤纸轻轻吸干—半干燥态。铅笔标记；点样器沾适量新鲜血清，垂直点样。3、放入电泳槽，使膜保持水平。4、通电：110伏，1小时。断电后，取膜。5、染色：氨基