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文档简介
细胞增殖是生命的基本特征,种族繁衍、个体发育、机体修复等都离不开细胞增殖。–初生婴儿有1012个细胞,成人1014个,约200种类型。–成人体内每秒钟有数百万新细胞产生,以补偿衰老和死亡的细胞。动物任何组织细胞进行分裂增殖,都受细胞周期调节系统的调节,也受个体发育不同阶段的发育调节。这些调节的基础是基因按一定的时间和空间顺序选择性地进行表达。
第一页,共135页。20世纪70年代LelandHartwell提出了“细胞周期检验点”(cellcycle
checkpoint)概念。最先找到了用于研究真核细胞周期的合适模型——酵母细胞,通过研究他进一步提出了细胞分裂基因的概念,即cdc(celldivisioncycle)基因。20世纪80年代TimHunt发现周期蛋白
(cyclin)。1990年,PaulNurse发现周期蛋白依赖性蛋白激酶(cyclin-dependentkinase,CDK)。2001年10月8日美国人Leland
Hartwell、英国人PaulNurse、Timothy
Hunt因对细胞周期调控机理的研究而荣获诺贝尔生理医学奖。第二页,共135页。第三页,共135页。第一节生长因子信号转导活化细胞周期进程是细胞增殖的分子机制第四页,共135页。一、细胞经历细胞周期而增殖
FigureA.1.CellCycle.第五页,共135页。第六页,共135页。G1期(firstgapphase):限制点(restrictionpoint,R点);继续增殖,进入G0期,停止增殖。S期(syntheticphase):DNA复制,与组蛋白包装成染色质,合成PCNA(proliferatingcellnuclearantigen)G2期(secondgapphase):染色质螺旋化,合成MPF。M期(mitoticphase):有丝分裂。MG1SG2G0cyclinD1,D2,D3+CDK2,4,5,6cyclinE+CDK2cyclinA+CDK2cyclinA,B+cdc2R第七页,共135页。细胞周期的稽查点稽查点(checkpoint)限制点(restriction
point)细胞周期四个稽查点:
G1/SS/G2
G2/MM/G1第八页,共135页。第九页,共135页。二、有许多蛋白质参与调控细胞周期进程Cyclin周期素或周期蛋白Cdk:cyclin-dependentkinaseCKI:第十页,共135页。(一)周期蛋白和周期蛋白依赖性激酶复合物驱动细胞周期进展ComplexofcyclinA(yellow)withcyclindependentkinase2.MoleculeATPishighlightedintheactivesiteoftheCDK2.
第十一页,共135页。Cyclin:周期蛋白或周期素1.受生长因子的诱导表达;2.泛素介导的其蛋白质降解;3.含有周期蛋白框(cyclinbox)的一致性共有序列,是周期蛋白依赖激酶Cdk的调节亚单位。
Cyclinbox:一段含有约100个氨基酸序列的区域,是介导周期蛋白与Cdk催化亚基结合的关键部位。第十二页,共135页。第十三页,共135页。Cdk是组成型表达的核内丝-苏氨酸蛋白激酶。在细胞周期不同时相中,不同的cyclins的集聚与相应CDKs结合并被激活。CDK激活的底物主要有RB、转录因子、组蛋白、细胞结构蛋白等,具有促进细胞周期时相转变、启动DNA合成、运行细胞分裂、推进细胞周期运行的重要功能。第十四页,共135页。第十五页,共135页。CDK1;cyclinA,cyclinB
CDK2;cyclinA,cyclinE
CDK3
CDK4;cyclinD1,cyclinD2,cyclinD3
CDK5;CDK5R1,CDK5R2.CDKL5.CDK6;cyclinD1,cyclinD2,cyclinD3
CDK7;cyclinH
CDK8;CDK9;cyclinT1,,,cyclinK
CDK10
CDK11(CDC2L2)
;CDK12(CRKRS)
;CDK13(CDC2L5)
;AlistofCDKswiththeirregulatorprotein,cyclinorother第十六页,共135页。第十七页,共135页。StructureofpCDK2(ingreen)incomplexwithcyclinE1(incyan)withthe20-amino-acidsequence(residues230–249)thatareinvolvedincentrosomelocalisation(MatsumotoandMaller,2004)showninred.ThePSTAIRE(C-)helixandtheactivationsegment,thetwomajorregionsofcontactbetweenpCDK2andcyclinE1,areshowninmagenta.第十八页,共135页。(二)CKI抑制Cdk及Cyclin-Cdk复合物的活性Cyclin-dependentkinaseinhibitorsCKI分两类:1.Cdk4/Cdk6抑制因子家族有P15、P16、P18、P19等。抑制CyclinD与Cdk4/Cdk6结合,及其复合物的激酶活性。2.Cip/Kip家族Cytokine-inducibleprotein/kinaseinteractingprotein有P21、P27、P57等。是细胞接受到接触抑制、DNA损伤、低氧及某些细胞因子等信号后的产物;与Cyclin-Cdk复合物结合,抑制它们的活性。第十九页,共135页。1.Cdk4/Cdk6抑制因子家族2.Cip/Kip家族第二十页,共135页。(三)Rb蛋白与转录因子E2F-DP1的结合对G1期产生负调节作用Retinoblastomaprotein(pRbor
Rb)Pocketproteinfamilyconsistsofthreeproteins:RB(P105RB)、P107和P130。Rb蛋白第二十一页,共135页。Rb/E2Ffamilies.ThereareonlytwomembersofE2Finfliescomparetoeightinmammals.第二十二页,共135页。游离的E2F-DP1活化靶基因转录,包括:①核苷酸及DNA合成酶的基因;②周期蛋白D、E、A、Cdk2等;③某些癌基因;④E2F基因本身。第二十三页,共135页。(四)使Cdk磷酸化和去磷酸化的酶也调节Cdk的活性第二十四页,共135页。CDK1的调节与活化;CAK=CDK1-ActivitingKinase第二十五页,共135页。(五)泛素-蛋白酶体介导蛋白质降解也起调节细胞周期的作用短命蛋白通过多泛素化途径降解,如Cyclin、P21、P27、E2F、Weel等。第二十六页,共135页。第二十七页,共135页。参与细胞周期调控的泛素连接酶至少有两类SCF(skp1-cullin-F-boxprotein,三个蛋白构成的复合体)负责将泛素连接到G1/S期周期蛋白(D、E)和p21、p27、E2F、Weel上;APC(anaphasepromotingcomplex)负责将泛素连接到M期周期蛋白(A、B)上。
第二十八页,共135页。第二十九页,共135页。第三十页,共135页。三、调控蛋白协同作用调控细胞周期(一)Cdk4/6和Cdk2的活化是限制点处调控的关键第三十一页,共135页。(二)Cdk1活化是G2M关卡处关键调控因素CyclinB在G1后期胞浆中合成,并在胞浆-胞核间穿梭,在核内与Cdk1结合形成复合物也加入穿梭行列,此时Cdk被磷酸化,无活性。在G2-M转折,Cdc25C被活化,使Cdk1的14位和15位氨基酸残基去磷酸化,而活化CyclinB-Cdk1,后者磷酸化地物蛋白,如组蛋白1、核纤层蛋白、肌球蛋白等,使染色体致密,核膜解体,纺锤体开始形成等。第三十二页,共135页。(三)APC介导的多泛素化蛋白降解是细胞离开M期进入G1期的关键调控因素第三十三页,共135页。(四)DNA损伤关卡与G1及G2期停滞相关1.G2期的停滞涉及一系列的磷酸化过程Sensorproteins传感蛋白ATMATR(ATMandRad3related)Chk(checkpointkinase)Cdc25C-14-3-3核内→胞浆核内的Cdk1不能被活化,停滞于G2。第三十四页,共135页。第三十五页,共135页。2.转录因子P53能使细胞停滞在G1期和G2期第三十六页,共135页。四、生长因子等细胞外因素通过信号转导调控细胞周期第三十七页,共135页。(一)细胞从G0期进入细胞周期依赖多种生长因子的协同促进作用有的组织细胞在从分裂期向S期发展时,在G1期中断,形成G0期细胞群的组织(水晶体上皮和膀胱上皮等),有的组织细胞在从S期向分裂期发展时,以G2期那样的状态中断,形成G0期细胞群的组织(耳的上皮)。但是,即使几乎完全失去分裂能力的已分化的组织细胞通常也可依靠人工培养、人工致癌等方法恢复其分裂能力。因此,所有的分化细胞都是G0期,G0期只不过是细胞周期中G1期或G2期的无限延长,而不是细胞周期中G1期或G2期的中断和脱离。第三十八页,共135页。(二)G1期的细胞也需要生长因子促进细胞周期的进程第三十九页,共135页。第二节细胞增殖异常与疾病AbnormalCellProliferationandRelatedofDisease第四十页,共135页。裸鼠的结肠癌病理模型复制胃癌手术后肿瘤细胞转移患者(患者处于恶液质状态)瘤细胞为什么会发生?第四十一页,共135页。细胞增殖分化异常与相关疾病增殖异常分化异常增殖分化异常再生障碍性贫血肥胖症恶性肿瘤白癜风遗传性血红蛋白病银屑病前列腺肥大肌营养不良畸胎瘤动脉粥样硬化先天畸形家族性红细胞增多症X-连锁-球蛋白缺乏症高IgM血症细胞周期异常与疾病(Abnormalcellcycle&diseases)细胞过度增殖或不足的本质是细胞周期调控异常。【Deregulationofcellcycle】■细胞周期的驱动失控(Cyclin、CDK和CDI表达异常)■监控(检查)机制受损(Theimpairmentofcheckpointsystem)细胞增殖异常第四十二页,共135页。1.细胞周期驱动机制失控
■Cyclins的过表达(Overexpressionofcyclins)肿瘤的发生与cyclin(D、E)过量表达有关。
【CyclinD1(Bcl-1)过表达原因】(原癌基因)
▲基因扩增(CyclinD1过表达的主要机制)乳腺癌、胃癌、食道癌存在CyclinD1基因扩增过度。细胞增殖异常▲染色体倒位(Chromosomeinversion)CyclinD1基因倒位于甲状旁腺启动子控制下CyclinD1蛋白合成↑
▲染色体易位(Chromosometranslocation)甲状旁腺腺癌Bcl-1t(11:14)(q13:q32)易位
CyclinD1受Ig重链基因增强子影响
CyclinD1表达↑(p15:q13)第四十三页,共135页。■CDK表达异常主要见于CDK4、CDK6过表达。CDK4↑+cyclinD结合↑CDK4/cyclinD↑CDKs表达↑
pRbpRb磷酸化↑细胞增殖过度
E2F↑G1/S过渡加速【CyclinD过表达致肿瘤机制】CyclinD过表达+生长因子
CDKs瀑布效应↑细胞增殖过度易发生细胞癌变细胞增殖异常▲基因突变CyclinD1T286突变CyclinD1泛素化受阻CyclinD1↑可能第四十四页,共135页。细胞增殖异常■CDI表达不足和突变
肿瘤细胞中常出现CDI(肿瘤抑制基因)表达不足或突变。
▲InK4失活
【p16InK4基因失活原因】
突变或缺失、染色体易位、p16InK4高度甲基化。
【Mechanism】p16InK4基因表达↓CDK4与cyclinD结合↓细胞周期处在“易于”被启动状态
易发生细胞癌变
可能第四十五页,共135页。细胞增殖异常正常
【Mechanism】
p53基因突变P21cip1转录↓DNA受损细胞增殖↑▲
Kip/Cip含量减少(DeficientexpressionofKip/Cip)
P21cipl功能cyclins/CDKs活性↓细胞周期速度↓增殖细胞核抗原(PCNA)阻滞DNA复制2.细胞周期监控机制受损(Impairmentofcheckpointsystem)
主要原因:G1/S、G2/M检查点异常失察结果:探测DNA损伤功能降低
(如发现不了DNA损伤,会导致基因缺失、易位、染色体重排等)
第四十六页,共135页。表人类肿瘤p53基因突变热点和频率肿瘤型突变频率(%)突变热点肿瘤型突变频率(%)突变热点肺癌56157,248,273前列腺癌30不确定结肠癌50175,245,248,273肝细胞癌45249食道癌45不确定胶质癌25175、248卵巢癌44273乳腺癌22175、248、273胰腺癌44273子宫内膜癌22248皮肤癌44248、278甲状腺癌13248、273胃癌41不确定白血病12175、248头颈鳞癌37248宫颈癌7273膀胱癌34280软组织肉瘤31不确定细胞增殖异常第四十七页,共135页。
■G2/M交界处失察
G2/M交界处
DNA双链断裂激活DNA损伤检查点阻止细胞进入M期诱导修复基因转录完成断裂的DNA修复
▲失去G2/M检查点的阻滞作用染色体发生重排、丢失细胞增殖异常第四十八页,共135页。原发性血小板增多症(PT)■临床症状:以巨核细胞增殖为主的骨髓增生性疾病。伴有血小板持续增多和血小板功能异常,有反复自发性出血及血栓形成。■病因与机制:X染色体遗传、TGF-减少、辅助细胞缺乏等。良性前列腺增生■病因与机制:细胞凋亡出现下降,增殖不变,导致良性前列腺增生。银屑病■病因与机制:表皮生长因子受体的增加和受体的减少是引起表皮细胞增长过快的原因。第四十九页,共135页。
第三节
细胞分化调控机制
细胞分裂后逐渐产生与来源细胞在结构和功能上有着稳定差异的过程即为分化(differentiation)。一、细胞分化的特点1.稳定性:一旦确立,分化状态便稳定存在。2.全能性:共同来源于受精卵,并保留全部信息。3.选择性:基因表达呈选择性开闭,是不同分化细胞表型差异的原因。二、细胞分化的机制
分化是细胞内不同基因在不同发育阶段选择性激活的结果,细胞内不同基因在时空上有序表达的结果。1.“决定”先于分化细胞“决定”(determination):有些基因永久性地关闭,另一些基因顺序表达,使细胞具备有某一特定方向分化的能力。多能干细胞(pluripotentcell):具有多向分化潜能。第五十页,共135页。2.细胞质在细胞决定中的作用细胞质决定子(cytoplasmicdeterminant)某些特殊细胞发育途径的决定往往首先由细胞质控制。3.核质的相互作用细胞分化的基础是细胞核内基因组选择性地表达,而核内基因的活性又受核所在胞质环境的影响,是核质相互作用的结果。4.细胞间相互作用位置效应:细胞所在位置,与其他细胞间的关系。(1)细胞间直接接触进行信息传递;(2)细胞外基质、粘附分子、细胞因子的作用。第五十一页,共135页。三、干细胞与分化干细胞(stemcell):是一类增殖较慢,能自我维持增殖的细胞,具有定向分化的潜能。专能干细胞:干细胞分裂产生的子细胞只能分化为某一类型的细胞。多能干细胞:子细胞可以产生两种或两种以上类型的细胞。造血多能干细胞造血定向干细胞血细胞造血干细胞库第五十二页,共135页。四、调控细胞分化的信号通路(一)Ras-MAPK信号传递途径
1.RPTK介导的信号转导
许多细胞因子受体具有酪氨酸蛋白激酶(RPTK)活性,多为单跨膜糖蛋白,目前已发现50多种,分为14个家族,以非活性形式结合于细胞表面,当与其配体结合后以不完一致的方式被激活。胞外只有一个配体结合部位的RPTK,如EGFR、FGFR,配体结合后受体构象改变和二聚化,导致膜内激酶的活化;PDGF可同时与两个受体分子结合,因而同时发生二聚化与活化;胰岛素受体本身由两个α亚基和两个β亚基聚集而成,两个α亚基与配体结合引发β亚基构象改变,无需寡聚化就可活化。第五十三页,共135页。
RPTK胞浆区至少有1-3个酪氨酸残基,寡聚化后胞浆区激酶域相互靠近,发生自身磷酸化。自身磷酸化一方面使激酶活性显著增大,有能力催化其它靶蛋白的磷酸化;另一方面Tyr-为多种有SH2或PTB结构域的下游信号传递分子提供识别和结合部位。RPTK活化后以两种方式向细胞内传递信息:一是蛋白质磷酸化;二是蛋白质-蛋白质之间相互作用。无论何种方式,都对其靶蛋白的结构有严格的要求。正如图17所示,RPTK活化后可结合SH2分子。第五十四页,共135页。图17活化的RPTK通过SH2/SH3分子传递信息不同机制(a)RPTK通过自身磷酸化而激活,与PLCγ的SH2结合,将其Tyr残基磷酸化使之活化(b)活化的RPTK与PI-3K调节亚基p85的SH2结合,使其催化亚基p110从钝化状态变成活化构象;(c)通过接头分子Grb2-SOS活化Ras-MAPK通路第五十五页,共135页。2.Ras-MAPK信号传递途径
RPTK介导的细胞因子信号主要经Ras-MAPK途径传递。可溶性接头蛋白Grb2中部的SH2结构域与活化的RPTK中Y-结合,两端的SH3结构域与一种鸟苷酸交换因子Sos富含Pro残基的区域相结合,把它募集到质膜内侧,促使邻近的Ras-GDP转变成Ras·GTP而活化。活化的Ras即可激活MAPKKK,启动MAPK级联反应。MAPKKK中的一种Raf是Ser/Thr蛋白激酶,它与一种14-3-3蛋白结合而处于非活化状态。第五十六页,共135页。Ras·GTP可促使14-3-3解离并与Raf结合,从胞质转移至质膜,并发生Ser259自身磷酸化。膜中磷脂酰丝氨酸与Raf结合进一步活化。同时膜结合的一种非受体型酪氨酸蛋白激酶Src催化Raf中Tyr340和Tyr341磷酸化,使Raf完全活化。活化的Raf催化MAPKK上Ser磷酸而将其激活。活化的MAPKK是一种Thr/Tyr蛋白激酶,可催化MAPK中TXY模体中Thr和Tyr磷酸化。MAPK被激活后可进入细胞核,作用于许多转录因子,调节基因表达并促进细胞增殖。第五十七页,共135页。
Ras是一个小分子的单聚体G蛋白,位于质膜的内表面,它在多种细胞内信号传导途径中起着非常重要的作用。象其它G蛋白一样,Ras循环也在GDP结合的非活性形式和GTP结合的活性形式之间进行。
Ras的活性形式,能激活信号传导途径中位于其下游的效应分子。也和其它G蛋白一样,Ras也具有内在的GTPase活性,将结合的GTP水解成为GDP,其作用就象一个开头,关闭了Ras蛋白的活性。第五十八页,共135页。
导致肿瘤形成的Ras基因突变可使Ras蛋白失去GTase活性。其结果是:Ras突变产物在细胞中始终处于活性状态,沿着信号传导途径持续将信号传递至下游,使细胞一直处于增殖状态。另外,也发现一种Ras基因的突变产物不能结合GTP,导致细胞不能分裂。
Ras被认为参与了细胞内多种不同的信号传导途径,是这些信号传导途径的聚焦点。在将信号从细胞膜外传递至细胞核的过程中,Ras蛋白起着非常重要的作用。整个过程开始于生长因子(如EGF或PDFG)等与各自受体的细胞外功能域结合。
第五十九页,共135页。
生长因子与RTK结合后,RTK胞浆部分由自动磷酸化反应生成的磷酸酪氨酸就成为了一个被称之为Grb2(Growthfactorreceptorbindingprotein)的SH2底物蛋白分子结合点,然后Grb2在另一个叫做Sos(Sonofsevenless)的蛋白帮助下结合到细胞膜内表面,从这里开始Ras蛋白就参与进来了。在一个未激活的细胞内,Ras与GDP保持结合状态;当配体与RPTK结合后,吸引Grb2-Sos到细胞膜内表面,Sos蛋白与Ras蛋白结合,使GDP从Ras蛋白上脱离,由GTP取代,造成Ras蛋白被激活。Ras-GTP是最基本也可能是唯一的功能就是吸引另外一个叫做Raf的蛋白与之一同结合到质膜上。第六十页,共135页。Raf蛋白一旦定位在质膜上,就变成了一个有活性的蛋白激酶,激发一个称之为MAP(Mitogen-activatedprotein)激酶的级联式反应。MAP激酶级联式反应与葡萄糖总动员中由cAMP触发的级联式反应相似,但是它更复杂。级联式反应中的最后一个蛋白激酶MAPK(MAPkinase)进入到细胞核,将特异的转录因子磷酸化。这些被激活的转录因子可与被称之为血清反应元件(SRE)的特异DNA序列结合。之所以称之为血清反应元件是因为它们可由来自血清中生长因子所传导的信号所激活。这几个基因所编码的蛋白被认为在细胞周期的激活中起着重要作用,最终可起动DNA合成,导致细胞分裂。
第六十一页,共135页。第六十二页,共135页。
细胞核并不是MAPK级联式反应的唯一靶向地,最近的研究表明另一个靶向物是胞浆蛋白PHAS-1。
PHAS-1的非磷酸化状态,可与关键性起动因子之一的eIF4E结合。在真核细胞中,eIF4E可使核糖体锚定到mRNA分子上,开始蛋白质合成。当PHAS-1与该起动因子结合后,该因子就不能在蛋白质合成中发挥它的作用。在激活状态下,MAP激酶使PHAS-1磷酸化,其构象会发生改变,使其失去结合eIF4E的能力;换言之,也就是使得该起动因子在翻译过程中能够发挥它的作用。由此可以看出,在靶细胞中,MAP激酶级联式反应在转录和翻译的调控上都起着重要作用。第六十三页,共135页。第六十四页,共135页。IFNaJAK1TYK2Kinase-receptorComplexSTAT1pSTAT1pp48IFNgJAK1JAK2STAT1pSTAT1ppGATA2STAT1ppGATA2ISRESTAT1pSTAT1pGAS,IREp48STAT1ppGATA2p48STAT1ppGATA2(二)JAK-STAT信号传递途径
大多数造血细胞因子受体缺乏酪氨酸蛋白激酶活性,胞外区与配体结合后受体寡聚化,胞内区募集并激活胞浆中酪氨酸蛋白激酶,然后激活转录因子,调节基因的表达。第六十五页,共135页。
造血细胞因子受体家族虽来自同一始祖基因,长期进化使各成员同源性并不高。除红细胞生成素受体(EPOR)和生长激素受体(GHR)等少数例外,该家族多数成员都由几个亚基组成,至少有一条配体结合链和一条信号转导链,只有形成二聚体后才有功能。前者各不相同,专一地与配体结合,但亲和力很低,且无信号转导功能,又称“私有链”;后者参与多种受体的信号转导,但无配体结合能力,称为“公有链”。第六十六页,共135页。
按其结构特点将它们分为两类:第一类至少有20多种,其配体分别为IL-2、IL-7、IL-11、IL-12、IL-15、EPO、GH、G-SCF、GM-SCF、LIF等。第二类成员较少,其配体分别为INF-α/β、INF-γ和IL-10。此类受体至少有两个亚基参与信号转导。
被活化的造血细胞因子受体召募的胞浆PTK称为JAK,已发现JAK1、JAK2、JAK3和TyK2共4个成员,分子量120-140kDa。从C-端到N-端JAK分子中有7个高度保守的同源区。其中C-端的同源区1和2均为酪氨酸蛋白激酶活性区,遂以神话中的两面天神Janus命名为Januskinase,缩写为JAK。第六十七页,共135页。
被JAK磷酸化而激活的转录因子STAT(signaltransducersandactivatorsoftranscription)至少有7种,即STAT1-6,其STAT5有a和b两种。
STAT分子量为84-113kDa,由734-851个氨基酸组成。STAT通过分子中SH2结构域与Tyr被磷酸化的受体结合,并被结合在相应受体上的JAK磷酸化。
不同受体与不同JAK偶联可选择性激活不同STAT。活化的STAT需形成同源二聚体或STAT1-STAT2、STAT1-STAT3和STAT5a-STAT5b等异源二聚体,才能进入细胞核。
STAT中部DNA结合区高度保守,可与DNA上被称为IFN-γ活化位点(γinterferonactivationsite,GAS)的回文顺序相结合。目前已发现十余种GAS序列,不同STAT二聚体识别不同GAS序列,表现出相对特异的功能。
第六十八页,共135页。
干扰素γ受体(IFNGR)由两种亚基组成,亚基1含472个氨基酸残基,N-端1-228为胞外区,C-端252-472为胞内区,中间为跨膜区;亚基2含315个氨基酸残基,N-端1-226为胞外区,C-端251-315为胞区,中间为跨膜区。
IFNGR1胞内区近膜区有JAK1结合部位;IFNGR2胞内区近膜处有JAK2结合部位。当IFNγ二聚体与两个IFNGR1结合时,产生两个IFNGR2结合部位,形成受体活化形式四聚体。第六十九页,共135页。
受体链寡聚化和构象变化促使缔合在膜内区的JAK2和JAK1通过自身磷酸化相继活化,随即催化IFNGR1链Tyr440磷酸化,形成STAT1的识别和停靠位点。然后,两个STAT1以其SH2结合于IFNGR1C-端区,被JAK将其C-端附近的Tyr701磷酸化。活化的STAT1形成二聚体进入细胞核,被一种MAPK将其Ser727磷酸化,即可结合于专一的GAS元件并刺激基因转录(图18)。第七十页,共135页。图18干扰素γ信号转导模式图第七十一页,共135页。敲除的基因表现型敲除的基因表现型JAK1围产期死亡STAT4Th1分化障碍JAK2胚胎期死亡,造血缺陷STAT5a雌性乳腺发育受损JAK3重症联合免疫缺陷STAT5b雄性第二性征发育受损STAT1IFN信号转导缺陷STAT6Th2分化障碍STAT2无法获得胚胎STAT4和STAT6T细胞倾向Th1样发育STAT3胚胎期死亡STAT5a和STAT5b雌性不育,体形变小,脾大,夭折表5
JAK/STAT基因敲除小鼠的表现型
通过JAK-STAT调控转录的基因很多,JAK-STAT的功能极其广泛,表5列举了几种JAK-STAT基因敲除小鼠的表现型,或可为了解其生理意义提供有用的信息。第七十二页,共135页。(三)干扰素-α信号转导
干扰素(IFN)是细胞对相关刺激反应时所产生的细胞信号蛋白质,是细胞因子超家族中一个糖蛋白类同源细胞因子家族,称为IFN家族。已鉴定出该家族中3个主要成员:IFN-α、IFN-β和IFN-γ。对IFN-α生物学效应和信号转导机理的研究较为深入。IFN-α由白细胞和原始淋巴细胞分泌,现已经基因重组技术生产,并被广泛应用于治疗白血病、淋巴瘤、实体瘤及病毒、原虫、寄生虫和真菌感染,其治疗策略包括使用IFN-α单一治疗、辅助治疗和维持治疗。近期研究表明,IFN-α与其受体结合后,可激活多种信号转导途径,从而发挥其抗病毒、抗肿瘤(抗增殖)及免疫调节等多种生物学功能。第七十三页,共135页。
1.JAK-STAT途径
非受体性蛋白质酪氨酸激酶超家族中的Janus激酶(JAK)家族及信号转导子和转录活化子(STAT)家族是细胞对IFN-α等细胞因子反应的一些基本蛋白质分子,构成IFN-α及白细胞介素(IL)等细胞因子信号转导的经典途径,称为JAK-STAT途径。
IFN受体通过JAK-STAT途径转导IFN的信号主要导致细胞生长抑制和抗病毒效应。IFN-α与其效应细胞的膜受体结合后,活化一类特殊的受体相关性酪氨酸蛋白激酶,即JAKs蛋白质。活化的JAKs蛋白质即自身磷酸化并使受体复合物中其它成份磷酸化,并募集游离于胞浆的STATs并使其羧基端酪氨酸残基磷酸化。磷酸化STATs蛋白质与受体-JAKs复合物分离并经同源或异型二聚化后位移至胞核内,与其效应基因序列中的应答性调控元件结合而参与靶基因的转录活化。第七十四页,共135页。
研究JAKs突变的细胞株(γ2A细胞和U4C细胞)表明,在JAKs家族中,参与IFN-α信号转导的主要成员是JAK1和JAK2。JAK1和JAK2的氨基末端区是结合受体和活化STATs的活性功能区域。不同的JAKs家族成员参与不同类型细胞因子信号转导的主要原因在于,不同的JAKs家族成员与各类受体及JAKs下游信号转导蛋白之间的分子结构及其相互作用的差异。
Abril等研究了一种对IFN刺激无反应的胃癌细胞株AGS,发现AGS细胞内STAT1表达水平特别低,其细胞核提取物缺乏与IFN刺激性反应元件(ISREs)的结合活性,作者认为STAT1缺乏即是AGS细胞对IFN刺激无反应的原因,且表明该类缺乏STAT1的细胞对病毒感染高度敏感;同时STAT1缺乏将使肿瘤细胞具有选择性优势,即使之逃避IFN的细胞生长抑制效应和T-细胞的抗肿瘤效应。第七十五页,共135页。
动物实验表明,STAT1基因遭受破坏的小鼠丧失对IFN的反应性而极易受病毒和病原菌感染。Hung等研究发现,分化诱导剂丁酸钠能增强IFN-α诱导的STAT1蛋白质磷酸化及其活化,以及磷酸化抑瘤基因表达产物Rb蛋白质的积累,并增强IFN-α诱导恶变细胞凋亡的效应。
Jaster等报道参与IFN-α信号转导的转录因子主要是STAT1和STAT2,其中STAT1的作用更明确,而STAT5似乎并未参与介导IFN-α信号转导过程。第七十六页,共135页。
2.IRF途径干扰素调节因子(IRF)是众多经IFN诱导表达的蛋白质中一个转录调节因子家族,其中对IRF-1和IRF-2蛋白质的分子特性具有较多了解,近年研究发现该家族成员已超过10个。研究表明,IFN-α可诱导IRF表达上调,该效应不依赖于STAT活化途径,而是经活化性核因子Kappab介导,被激活的IRF(主要为IRF-1或IRF-2)与其靶基因2′-5′寡聚腺苷酸合成酶(OAS)基因启动子中IFN反应性元件结合而启动2-5OAS基因表达。第七十七页,共135页。
此外,活化性的IRF也可诱导p68激酶及RNA酶L(RNaseL)的表达,Northern印迹分析表明,经IFN-α治疗或体外培养的慢性期或急变期慢粒白血病(CML)患者的粒细胞、淋巴细胞及CD34+细胞中IRF-1、IRF-2、2-5oAS、p68激酶及RNA酶L的表达均增强。这些蛋白质均为IFN-α反应性基因产物,它们协同作用,介导IFN-α信号转导而主要呈现出IFN-α的抗细胞增殖效应。第七十八页,共135页。3.其它信号转导分子
细胞被病毒感染能有效产生IFNs,先期研究发现,受IFN刺激的IFN受体(IFNR)与ISREs结合而激活IFN诱导性基因表达,且证实转录因子复合物—干扰素刺激性基因因子3(ISGF3)是IFN信号转导的一类关键性介导复合因子。ISGF3由STAT1、STAT2和p48组成。近期研究表明,p48蛋白质基因被靶向性损毁的小鼠细胞中其病毒诱导性IFN-α/β基因表达量严重不足,缺乏IFN-α受体(IFN-αR)或STAT1的细胞中其病毒诱导性IFN-α/β基因的表达水平也明显降低,因而证实这类新发现的信号转导分子具有转导IFN信号及调节IFN基因表达的双重功能。进一步研究发现,ISGF3能与IFN-α/β基因启动子序列中的病毒诱导性元件结合而启始IFN基因表达。第七十九页,共135页。
腺病毒E1A蛋白可抑制p48及STAT1α蛋白质的产生,并通过降低一种酪氨酸蛋白激酶—Lak-1蛋白质水平而抑制STAT1α蛋白质的磷酸化过程,从而阻碍IFN-α和IFN-γ的信号转导。介导子p300和/或cAMP反应性元件结合蛋白(CBP)可与STAT2的羧基末端序列结合而活化STAT2,ELA通过抑制p300/CBP的活性而抑制STAT2转导,进而阻碍IFN-α信号转导。
Petricoin等研究表明,IFN-α通过T细胞受体(TCR)的信号转导过程不依赖于JAK-STAT途径,而是由酪氨酸激酶Lck、ZAP-70和酪氨酸磷酸酶CD45以及它们与IFN-α受体形成的信号转导复合物参与而共同介导。Estes等研究表明,B细胞受体(BFR)及膜蛋白CD40均参与了IFN-α诱导的由免疫球蛋白IgM、IgG2及IgA介导的免疫学反应,且证实BCR与IFN-α交联比BCR与IFN-α及CD40双交联能更有效地诱导IgG2介导的免疫学反应。第八十页,共135页。Miscia等采用IFNα处理Burkitt淋巴瘤细胞数小时发现,磷脂酰肌醇3(PI3)激酶过度表达,并伴有胞浆及核内P13激酶的磷酸化,提示P13介导了IFN-α在Burkitt淋巴瘤细胞内信号转导过程中胞浆—胞核的交互对话过程。Miyachi等研究发现,IFNα可诱导人类CML细胞株K562细胞的S期积累,丁酸钠明显增强该效应,但丁酸钠与IFN-γ联合应用则并不导致K562细胞S期积累,Western印迹分析表明,丁酸钠的效应依赖于IFN-α的信号转导因子中的一种34kDa的蛋白质激酶cdc2的酪氨酸磷酸化。
Uddin等在研究造血细胞中IFN-α信号转导时发现,src家族酪氨酸激酶Lyn通过其src同源区2(SH2)与Janus家族酪氨酸激酶Tyk-2偶联,即IFN-α活化Tyk-2后,其信号经Tyk-2的下游信号转导分子—Lyn转导并呈现IFN-α的生物学效应,作者认为这很可能是IFN-α的另一种信号转导途径。第八十一页,共135页。
Caraglia等研究发现,IFN-α增强人类表皮癌KB细胞内表皮生长因子受体(EGFR)的表达及其信号转导,且增强热休克蛋白(HSP)HSP-70,HSP-90及HSP-27的表达和激活氨基末端c-Jun激酶-1(JNK-1)以及激活由有丝分裂原p38活化的蛋白激酶,故认为EGF-R、HSP-70、HSP-90、HSP-27及JNK-1等均可能是IFN-α的信号转导分子。在不同类型细胞中虽可能存在结构相同的IFN-α受体及其信号转导的通用途径,但基于IFN-α对不同类型细胞产生的生物学效应差异甚大,例如抗病毒、抗细胞增殖、抗原虫、抗寄生虫及抗真菌感染等,故可以认为IFN-α在不同类型细胞中的信号转导将主要经与其生物学效应相匹配的途径和依赖于多种信号转导途径的交互作用。第八十二页,共135页。
如上所述,近年发现的参与IFN-α信号转导的各类信号转导因子及信号转导途径似乎尚有其独立性,但随着进一步的深入探讨,则必将发掘出其间的相互作用及其复杂的网络联系,例如IFN-α可经Fas介导的信号转导途径而下调CML细胞特征性蛋白p210bcl-abl的表达并恢复CML细胞对程序性死亡的敏感性。
细胞因子(包括IFN-α)信号转导途径是一极其复杂的网络系统,其研究虽已取得一些进展,但尚无实质性突破,将是后基因组时代的基础性研究工作和具有挑战性的研究课题。
第八十三页,共135页。
(四)MAPKs信号转导通路丝裂原活化蛋白激酶(MAPKs)是细胞内一类丝氨酸/苏氨酸蛋白激酶。MAPKs信号转导通路存在于大多数细胞内,在将细胞外刺激信号转导至细胞及其核内,并引起细胞生物学反应,如细胞增殖、分化、转化及凋亡等。研究表明,MAPKs信号转导通路在细胞内具有生物进化的高度保守性,在低等原核细胞和高等哺乳类细胞内,目前均已发现存在着多条并行的MAPKs信号通路,不同细胞外刺激可使用不同MAPKs信号通路,通过其相互调控而介导不同细胞生物学反应。第八十四页,共135页。1.胞外信号调节激酶(ERK)信号通路
1986年由Sturgill等人首先报道。最初其名称十分混乱,曾根据底物蛋白称之为MAP2K、ERK、MBPK、RSKK、ERTK等。此后,由于发现其具有共同结构和生化特征,而被命名为MAPK。近年来,随着不同MAPK家族成员发现,又重新改称为ERK。
在哺乳类动物细胞中,与ERK相关的细胞内信号转导途径被认为是经典MAPK信号转导途径,目前对其激活过程及生物学意义已有深入认识。第八十五页,共135页。
研究证实,受体酪氨酸激酶、G蛋白偶联受体和部分细胞因子受体均可激活ERK信号途径。如:生长因子与细胞膜特异受体结合,可使受体形成二聚体,二聚化受体使其自身酪氨酸激酶被激活;受体上磷酸化的酪氨酸又与位于膜上的生长因子受体结合蛋白2(Grb2)SH2结构域相结合,而Grb2的SH3结构域则同时与SOS结合,后者使小分子鸟苷酸结合蛋白Ras的GDP解离而结合GTP,从而激活Ras;激活的Ras进一步与丝/苏氨酸蛋白激酶Raf1的氨基端结合,通过未知机制激活Raf1;Raf1可磷酸化MEK1/MEK2上2个调节性丝氨酸,从而激活MEKs;MEKs为双特异性激酶,可使丝/苏氨酸和酪氨酸发生磷酸化,最终高度选择性地激活ERK1和ERK2。第八十六页,共135页。
ERKs为脯氨酸导向的丝/苏氨酸激酶,可磷酸化脯氨酸相邻的丝/苏氨酸。丝裂原刺激后,ERKs接受上游信号,可转位进入细胞核。因此,ERKs不仅可磷酸化胞浆蛋白,而且可磷酸化一些核内转录因子如c-fos、c-Jun、Elk-1、c-myc和ATF2等,从而参与细胞增殖与分化的调控。另外,ERK还可磷酸化ERKs通路的上游蛋白如NGF受体、SOS、Raf1、MEK等,进而对该通路进行自身的负反馈调节。还有研究发现,ERKs可磷酸化胞浆内的细胞骨架成份,如微管相关蛋白MAP1、MAP2和MAP4,参与细胞形态调节及细胞骨架重分布。
最近,国外学者又新克隆出ERK5及其上游激酶MEK5,这条MAPKs信号通路可被H2O2及高渗激活,其底物为c-Myc。此外发现还有ERK3及ERK4两条通路存在,但目前对其激活信号、底物及生物学意义还不清楚。第八十七页,共135页。
而MKK4则可同时激活JNK1和p38。JNKK上游激活物为MEKK,MEKK1在体外过表达时可激活MEK,但MEKK1在体内高度选择性地磷酸化MKK4,从而激活JNK。MEKK2也可通过MKK4激活JNK和p38。
JNK/SAPK接受上游信号被激活后,可进一步使核内的转录因子c-Jun氨基末端63及73位的丝氨酸残基磷酸化,进而激活c-Jun而增强其转录活性。c-Jun氨基末端的磷酸化还可促进c-Jun/c-Fos异二聚体及c-Jun同源二聚体形成,这些转录因子可结合到许多基因启动子区AP-1位点,增加特定基因的转录活性。
此外,JNK/SAPK激活后还可使转录因子Elk1和ATF2发生磷酸化,并使其转录活性增强。第八十八页,共135页。2.JNK/SAPK通路
c-Jun氨基端激酶(JNK)又称应激活化蛋白激酶(SAPK),是哺乳细胞中MAPK另一亚类。目前,从成熟人脑细胞中已克隆了10个JNK异构体,它们分别由JNK1、JNK2和JNK3基因编码,JNK1和JNK2在各种组织细胞中广泛表达,而JNK3选择性在脑细胞中表达。
JNK/SAPK信号通路可被应激刺激(如紫外线、热休克、高渗刺激及蛋白合成抑制剂等)、细胞因子(TNFα,IL-1)、生长因子(EGF)及某些G蛋白偶联受体激活。外界刺激可通过Ras依赖或非Ras依赖两条途径激活JNK,小分子G蛋白Ras超家族的成员之一Rho可能也是JNK激活的上游信号,Rho蛋白Rac及cdc42的作用可能是与p21激活的丝/苏氨酸激酶PAK结合,使其自身磷酸化而被激活,而活化的PAK进一步使JNK激活。已有研究证实,双特异性激酶JNK
Kinase(JNKK)是JNK/SAPK上游激活物,包括MKK4(JNKK1)、MKK7(JNKK2),其中MKK7/JNKK2可特异性地激活JNK。第八十九页,共135页。3.p38MAPK通路
p38MAPK是1993年由Brewster等人在研究高渗环境对真菌的影响时发现。以后又发现它也存在于哺乳动物细胞内,也是MAPKs亚类之一,其性质与JNK相似,同属应激激活的蛋白激酶。
目前已发现p38MAPK有5个异构体,分别为p38α、p38β1、p38β2、p38γ、p38δ。其分布具有组织特异性:p38α、p38β1、p38β2在各种组织细胞中广泛存在,p38γ仅在骨骼肌细胞中存在,而p38δ主要存在于腺体组织。研究证实,p38MAPK通路激活剂与JNK通路相似。一些能够激活JNK的促炎因子(TNFα、IL-1)、应激刺激(UV、H2O2、热休克、高渗与蛋白合成抑制剂)也可激活p38,此外,p38还可被脂多糖及G+细菌细胞壁成分所激活。p38信号通路也由三级激酶链组成,其上游激活物为MKK3、MKK4及MKK6,与MKK4不同,MKK3、MKK6仅特异性激活p38。第九十页,共135页。
体外细胞转染实验表明,MEKK2。MEKK3可通过激活MKK4同时激活JNK和p38,而MEKK3通过激活MKK3特异性激活p38。不同的p38异构体对同一刺激可有不同的反应,IL-1对p38的激活明显强于p38β,TNF1-α使p38活性达到高峰的时间明显短于使p38β达到高峰的时间。不同的异构体对底物的作用也具有选择性,p38β2对ATF2的磷酸化作用明显强于p38,p38γ可以磷酸化ATF2,但却不能激活MAPKAP-K2和MAPKAP-K3;不同的异构体与不同的上游激酶偶联,MKK6可以激活p38α、p38β2、p38γ,而MKK3仅能激活p38α、p38γ。第九十一页,共135页。
第四节细胞分化障碍与疾病
分化障碍是肿瘤细胞的基本特征。一、肿瘤细胞的诱导分化诱导分化:在诱导分化剂的作用下,肿瘤细胞的形态、生物学特性、生化标志等与正常细胞接近或相同,即由恶性表型转为正常表型,又称逆转。分化诱导剂:能使肿瘤细胞分化,出现类似正常细胞表型及功能的物质。1.外源性分化诱导剂:机体自身不能合成,为非生理性。(1)极性化合物,如DMSO;(2)佛波酯类,如TPA;(3)抗生素类,如放线菌素D、阿霉素(高浓度时为毒性作用);(4)抗癌药物类,如5-Fu等。第九十二页,共135页。2.内源性分化诱导剂:机体自身可以产生,为生理性。(1)维生素类,如VitaminA、VitaminD;(2)激素类,如甾体激素、T3等(3)细胞因子,IFN、TGF、EPO、GM-CSF、TPO等;(4)cAMP,激活PKA。临床上,目前最为有效的诱导分化疗法是RA治疗粒系白血病。第九十三页,共135页。二、癌基因与细胞癌变(一)癌基因的概念、分类和命名
1.概念及发现过程
Oncogene:指能引起肿瘤的基因,即这类基因表达时能使正常细胞转化为恶性细胞。
1911年Rous发现了第一种逆转录病毒RSV,并证明鸡肉瘤滤液
具致瘤性,推测RSV为致瘤因子。
1970年Martin发现一株温度敏感RSV,即tsRSV。用tsRSV感染
鸡胚成纤维细胞,35℃时可使之转化,但41℃可又使之
恢复正常。
Vogt分离到一转化缺陷突变株tsRSV,并证明所却失的
序列位于3端的一段RNA片段,命名为v-src(病毒肉瘤
基因)。这是第一个发现的病毒癌基因。第九十四页,共135页。1972年Bishop实验室(法国学者Stehelin)首先制备出32p-src探针,并以此探针证明鸡及其他禽类细胞以及人类细胞中均含有与v-src同源的序列,且具有真核基因的特点(含内含子及外显子)。命名为细胞src(c-src),以后陆续发现了其他许多种细胞癌基因。目前,多数学者认为v-onc起源于c-onc。原癌基因(proto-oncogene)
正常细胞中存在着c-onc样序列,与c-onc的同源性很大,差别极小,但不具转化活性;发生突变后即转为c-onc,具转化活性,因此称原癌基因。第九十五页,共135页。
2.癌基因的分类癌基因产物称癌蛋白(oncoproteins)或转化蛋白(transformingproteins)。可定位于细胞各部位,从功能上看,可以是:生长因子类;生长因子受体类;蛋白激酶类;G蛋白类;DNA结合蛋白类(转录因子)。
3.癌基因的命名病毒癌基因v-src,v-erb-A/B,N-myc,E1A,E1B等。细胞癌基因c-src
癌蛋白p:p150c-ablpp60v-srcp160v-gag-abl第九十六页,共135页。(二)原癌基因的生理功能原癌基因实际上是与调节细胞增殖分化密切相关的基因。
1.原癌基因与生长因子(1)sis基因与PDGFProto-sis就是编码PDGFB链的基因,而v-sis为proto-sis不完整的变异体,v-sis(p28v-sis)为猴肉瘤病毒癌基因。
PDGF由A、B两链构成,B链N端109位aa和p28v-sis(66~175aa)几乎完全相同;p28v-sis能和PDGFR结合并引起受体的酪氨酸磷酸化,表明p28v-sis和PDGF具相似的生物学活性。第九十七页,共135页。(2)int-2和hst/k-fgf与FGFint基因:MMTV引起肿瘤时,随机整合至鼠基因组时引起一种特异性mRNA的转录,由此克隆出的proto-onc称为int,int-2为其中的一个。
hst为人胃肿瘤(humanstomachtumor)中克隆出来的转化基因,编码产物与Kaposi肉瘤DNA转染NIH/3T3细胞后克隆出的k-fgf产物相同,为同一基因。现已发现,int-2、hst基因产物和FGF同源。
2.跨膜生长因子受体有些癌基因产物位于膜上,为生长因子受体,具一跨膜疏水区,膜内具酪氨酸激酶(TPK)活性,如:proto-erbB和proto-neu/erbB2EGFR;proto-fmsM-CSFR;proto-kitPDGFR;proto-ros胰岛素受体;proto-mas血管紧张素受体等。第九十八页,共135页。
3.G蛋白类
p21ras能与GTP结合,具GTPase活性。
4.与核内DNA结合的proto-oncmycjunfosmyb等。(三)原癌基因的激活与肿瘤的发生
1.激活(1)点突变;(2)插入诱变:逆转录病毒;(3)Geneamplification:拷贝数增加;(4)染色体重排。2.癌基因在肿瘤发生中的作用(1)作为生长因子,以自分泌方式刺激细胞生长;(2)作为生长因子受体,仿效受体复合物,在无外源性生长因子时也能引起细胞增殖;(3)作为生长因子,绕过受体,成为受体与核间信息传递的介导者;(4)作为在核内对生长信号的应答者。第九十九页,共135页。(四)肿瘤抑制基因肿瘤抑制基因(tumorsuporessorgene)又称抑癌基因、抗癌基因(antioncogene)或隐性癌基因(recessiveoncogene)等。是指一些在细胞增殖、分化等过程中起负调节作用的野生型等位基因。丢失或灭活时有致瘤作用。
1.肿瘤抑制基因存在的依据(1)细胞杂交实验将正常细胞与恶性细胞融合产生的杂种细胞可出现恶性,且播种至宿主后也不再长瘤。微细胞(microcell,仅含少数几条乃至一条染色体)融合技术进一步证实某些关键染色体可能带有肿瘤抑制基因。有时,两种不同瘤细胞系融合后也会失去恶性表型,说明不同瘤细胞系的遗传缺陷是不同的肿瘤抑制基因的丢失或失活,融合后得到相互补充。第一百页,共135页。(2)遗传型肿瘤的研究
70年代初Knudson提出的两次突变假说:遗传性肿瘤(如Rb等),第一次突变为生殖细胞突变,第二次为体细胞突变;而散发型两次均为体细胞突变。(3)肿瘤中体细胞杂合性的丢失杂合性是指细胞中含有一对或数对不同等位基因。可用RFLP检出。以遗传性视网膜母细胞瘤为例:正常体细胞(杂合子):两条带;肿瘤细胞(纯合子):一条带。第一百零一页,共135页。3.肿瘤抑制基因产物的生化功能(1)Rb
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