各种临床检验标本的正确采集方法

各种临床检验标本的正确采集方法第1页/共39页标本送检须知检验标本包括血液标本和其他各种体液标本。检验标本的采集是保证检验结果准确的前堤。因此，要求各临床科室医护人员、送检人员及相关人员严格按以下方法操作。第2页/共39页采集前，根据检验要求选择适当的容器，外贴标签，表明科别。床号，姓名，性别，送检日期。采集时认真核对以上项目，做好解释。采集后及时送检。第3页/共39页1尿液标本的留取尿常规检查标本目的；检查尿意的颜色,透明度,测比重,检查有无细胞管型,尿蛋白,尿糖定性·。

第4页/共39页1.1使用清洁干燥容器，住院病人以清晨第一次尿为主，门、急诊患者可随时留取新鲜尿液30-50毫升。测尿比重需留100毫升。晨尿浓度较高且未受饮食影响检验准确。第5页/共39页1.2昏迷或尿储留患者可通过导尿术留取尿标本。应避免经血、白带、精液、粪便等混入。第6页/共39页1.3标本留取后及时送检，不得超过1小时，以免细菌在尿中生长繁殖，菌体蛋白与病理性蛋白尿相互干扰；以及尿素酵解、葡萄糖降解、尿pH升高；使有形成份破坏(细胞管型分解、红细胞溶解)，化学成分变性、分解，尿中盐类析出结晶）。第7页/共39页尿培养标本取未被污染的尿液标本做细菌学检查。方法包括导尿术和留取中段尿法。需留取清洁中断尿，注意无菌操作，避免污染，应在患者膀胱充盈时留取。前段尿可以达到冲洗尿道作用。第8页/共39页

病人按导尿术清洁消毒外阴。自行排尿，弃去前段尿，用无菌尿杯接取5-10毫升后立即送检。患者应停用抗生素三天后作尿培养检查。尿中应加防腐剂。第9页/共39页24小时尿标本；做各种定量检查，如纳，钾，17-酮类固醇，肌酐，尿酸，尿糖定量，尿浓烁查。结核杆菌。准备清洁干燥带盖的广口容器，容量为3000—5000mL。病人于晨7时将尿全部排尽弃去，然后开始留尿，将24小时内历次所排尿液均留于容器中，包括次日晨7时所排最后一次尿。第10页/共39页

测量尿液总量(ml数)并记录在化验单上，将全部尿液充分混均后，取出20—50m1，置于清洁干燥有盖容器总立即总检。将盛放容器置阴凉处若天气炎热，可根据检验要求放入适量的防腐剂。甲

苯：适用量20ml／1000ml尿，用于尿液生化检验(G、Pr、Ca、P、Cr等)。保持尿中化学成分不变。甲醛；防腐，固定尿中有机成分。每30毫升加40甲醛1滴第11页/共39页12h尿标本留取12h尿标本，可以从晚上7时开始至次晨7时止(具体方法同24h尿标本采集)。第12页/共39页2粪便标本的留取粪便常规检查标本；检查粪便的性状，颜色，混合物及寄生虫卵。2.1粪便检验应取新鲜标本，容器要清洁，及时送检，于1h内检查完毕。第13页/共39页2.2采集标本时应用干净竹签选取含有粘液、脓血等病变成分的粪便，外观无异常的粪便须从表面、深处及粪端多处取材，其量至少为指头大小。2.3粪便标本中不可混有尿液、消毒剂、污水、植物、泥土等。第14页/共39页2.4无粪便而又必须检查时可经肛门指诊获取粪便，灌肠后的粪便常因过稀及混有油滴等而不适于作检查标本。2.5应根据检查项目的要求进行准备和留取标本。第15页/共39页粪便寄生虫检查标本查痢疾阿米巴滋养体时应于排便后立即检查。寒冷季节标本传送及检查时均需保温，从脓血和稀软部分取材。

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检查日本血吸虫卵时应取粘液、脓血部分，孵化毛蚴时应至少留取30g粪便，且需较快处理。检查蛲虫卵须用透明薄膜拭子于晚12时或清晨排便前自肛门周围皱裂处拭取并立即镜检。第17页/共39页粪便培养标本；检查粪便中的致病菌。粪便培养标本应无菌操作收集。第18页/共39页

患者在清洁便盆内排便，用无菌棉签取大便的脓血或粘液部分少许，或在肛门插入约6-7cm，轻轻旋动取出大便少许，放入无菌容器中送检。标本中不可混入尿液等异物及其它化学药品。第19页/共39页3血液标本的采集静脉血采集静脉血标本采集前病人应注意的问题

3.1避免剧烈运动，一般主张抽血前24h内不做剧烈运动，清晨取血，住院病人可在起床前取血，匆忙赶到门诊的人应至少休息15分钟后取血。第20页/共39页3.2注意合理饮食。除了急诊或其它特殊原因外，一般主张在禁食12h后空腹取血，延长空腹时间(饥饿)或餐后血液的化学成分都会引起变化，饮酒实验亦有影响。

3.3药物的影响。很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果，病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。第21页/共39页

静脉采血时医生应注意的问题采用一次性真空采血管，多项化验采血顺序应首先将血注入培养瓶，血常规管，然后是抗凝管，最后是干燥拭管。血常规、血凝、血沉抽血量务必准确抽取规定的量，并轻轻颠倒混匀。

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采血时的体位建议以坐位5分钟后取血为宜，止血带使用应少于1分钟，以免引起血液淤滞，造成血管内溶血或血液某些成分改变。第23页/共39页

当一侧手臂输液时应从对侧手臂取血，以免影响血糖、血钾等的浓度。血标本应防止溶血，影响溶血的因素有：用止血带时间过长；抗凝管使用不当或抗凝混合时过度振荡；容器污染；血液中泡沫注入试管；标本放置时间长或突然冷却和受热；离心力过大等等。第24页/共39页

正确使用抗凝剂：枸橼酸钠：用于血沉试验肝

素：用于血氨、血气试验

EDTA

-

K2：用于血常规试验

第25页/共39页采血后实验室应注意的问题

3.9标本采集后应及时分离血清，标本应尽快检验。

3.10实验室室温应保持20℃-25℃，防止标本水分蒸发，标本浓缩。

3.11标本避免光直接照射。第26页/共39页毛细血管血采集从末梢采血，儿童和成人从手指内侧采血，半岁以下的婴幼儿在足跟或拇指两侧取血，用于全血细胞分析、血液涂片等。采血部位必须无水肿、炎症或冻疮等血循环障碍现象，冬季患者从户外进来，应先按摩采血部位，使局部血液循环恢复常态后才能采血。第27页/共39页

穿刺处先用酒精消毒，再使用消毒干棉球拭净，采血器材须一人一针一管的一次性器材。采血后用消毒干棉球擦去第一滴血，轻轻加压穿刺点周围部位，尽量使血液自然流出，若血流不畅，不可用力挤压，应重新穿刺，采血完毕，用干棉球压住伤口止血。标本使用EDTA-K2：抗凝，测定血常规的采血管须用硅化玻璃管或专用有盖塑料管，采集后立即送检。第28页/共39页动脉血标本采集：用于血气分析，采血做细菌培养。用一次性肝素化注射器，从患者股动脉、肱动脉或桡动脉取血，血抽出后用一块小橡皮塞针头以隔绝空气，并将注射器放在手中双手来回搓动，充分混匀。抽血过程中出现的小气泡须在抽血后立即排出，血液不得放置过久，应立即送检，如不能及时送检，应放入冰水中保存，但切勿用冰块。若自制肝素化注射素，应避免加入过多的肝素溶液，使测定产生偏差。第29页/共39页血培养标本采集一般应在病人发热初期或发热高峰时或用抗生素之前采集，以无菌方法抽取静脉血，成人10—20ml，婴儿和儿童1—2ml，采血后立即接种于血培养瓶中混匀，送检培养。注意培养瓶的选择，培养瓶有需氧菌培养瓶、厌氧菌培养瓶、综合抗生素培养瓶等，根据病情选择。第30页/共39页

全血标本；测定血液中物质的含量。如肌酐，尿酸，尿素氮，血糖等采集时，取下针头，缓慢注入抗凝管，轻轻转动防止血液凝固。血清标本；测定血清酶，电解质，肝功，脂类。采集后，取下针头，缓慢注入干燥抗凝管，勿将泡沫注入，避免震荡，防治红细胞破裂。第31页/共39页痰液标本常规标本。经特殊染色查虫卵，癌细胞，细菌。患者晨起刷牙或用清水漱口数次后，用力咳出气管深处痰液，盛于清洁有盖容器内立即送检。对于无痰、少痰或痰脓不易吸出者，可用45℃加温生理盐水雾化吸入，以使痰液易于咳出，对于小儿可轻压胸骨柄上方以诱导咳痰。第32页/共39页24小时标本。观察痰液的性状，协助诊断，检查24小时痰量。正常人24小时痰量约25毫升或无。留取须在容器上注明起止时间。晨7点至次晨7点痰液培养标本。检查痰液中的致病菌，为选择抗生素提供依据。病人晨起用复方硼砂液和清水先后漱口，深吸气用力咳出第一口痰液留于无菌容器及时送检。如查癌细胞，应用百分10甲醛或95酒精固定后立即送检；收集时间宜在清晨，此时痰量多，痰内细菌也较多，可提高养性结果。第33页/共39页浆膜腔积液标本人体的胸腔、腹腔、心包腔等统称浆膜腔，由医生穿刺取样。需作多项检测时，应分装于两个无菌容器内送检，一个加106mm01／l枸橼酸钠抗凝剂，标本与抗凝剂比例为10：1；另一个不加抗凝剂，用以观察有无凝固现象。需做细菌培养、药敏试验，须用无菌小瓶留取标本。第34页/共39页附:真空采血管采集血液标本一览试管分类抗凝剂类型采血量检查项目兰色3.8％枸橼酸钠2ml*凝血检查紫色EDTA—K22ml血常规、血型绿色肝素钠3ml血液流变学黑色3.8％枸橼酸钠1.6ml**血沉红色无抗凝剂4ml生化类、PCR定量等黄色无抗凝剂4ml免疫类第35页/共39页注:1、抗凝剂与血液的比例为l：9。抗凝剂与血液的比例为1：4。2、有多项检查时，请按兰、紫、黑、红、黄的秩序