叶绿体提取及观察

叶绿体提取及观察第一页，共十六页，2022年，8月28日叶绿体的发育过程叶绿体含有叶绿素和类胡萝卜素，是光合作用的场所。主要由叶绿体膜、类囊体和基质三部分构成，其中类囊体包括基粒类囊体和基质类囊体。叶绿体是由分生组织中小而无色的、未分化的前质体（proplastid）发育而来。黑暗条件下，前质体形成白化体（etioplast），当植物转入光下生长时，白化体即转化为叶绿体。第二页，共十六页，2022年，8月28日1.4Diagrammaticrepresentationofaplantcell第三页，共十六页，2022年，8月28日1.18(C)Granastacksandstromalamellae;(D)Chloroplast第四页，共十六页，2022年，8月28日Summary:Chloroplasts-responsibleforphotosynthesis(convertCO2intocarbohydratesusingsolarenergy)-containdoublemembranes(likenucleusandmitochondia)-thylakoidgranum(类囊体叶绿体基粒):siteforphotosynthesis-lightreaction-Stroma(基质):siteforphotosynthesis-carbonreaction 第五页，共十六页，2022年，8月28日实验原理离心技术（centrifugaltechnique）是根据颗粒在作匀速圆周运动时都会受到一个向外的力而发展起来的一种分离技术。可用于细胞器的分离。分离过程包括两个主要阶段：破碎细胞和细胞成分的分离。常用离心技术一般包括差速离心法和密度梯度离心法。

第六页，共十六页，2022年，8月28日1．差速离心法

采用逐渐增加离心速度或低速和高速交替进行离心，使沉降速度不同的颗粒在不同的分离速度和离心时间下，分批分离的方法，称为差速离心法。常用于从组织匀浆中分离各种细胞器，见表1。第七页，共十六页，2022年，8月28日表1差速离心形成的沉淀（植物）第八页，共十六页，2022年，8月28日2．密度梯度离心

当不同颗粒存在浮力密度差时，在离心力场下，在密度梯度介质中，颗粒或向下沉降，或向上浮起，一直移动到与它们各自的密度恰好相等的位置上形成区带，从而使不同浮力密度的物质得到分离。第九页，共十六页，2022年，8月28日

差速离心分离叶绿体

细胞经过破碎后制成匀浆，在等渗介质中进行差速离心，是分离细胞器的常用方法。利用细胞各组分质量大小、形状和密度的不同，选择不同的离心力和离心时间，即可分离得到所需要的细胞器或大分子组分。第十页，共十六页，2022年，8月28日分离完整叶绿体有三个主要困难：1）有细胞壁包裹。2）叶绿体中由于淀粉积累成致密颗粒,会在离心过程中使叶绿体破碎。3）匀浆过程中，液泡中储藏的有毒物质——酚类化合物会释放出来。菠菜是分离完整叶绿体的极好材料，其细胞中所含的质体较大，而且它们都能在不积累淀粉和酚类物质的条件下生长。第十一页，共十六页，2022年，8月28日一、器材主要设备：普通离心机、粗天平、光学显微镜。小型器材：研钵，滴管，50ml烧杯，离心管，漏斗，脱脂棉，玻璃载片和盖片二、材料新鲜菠菜三、试剂

0.35mol/L氯化钠溶液第十二页，共十六页，2022年，8月28日

实验方法一、叶绿体的分离和观察1、选取新鲜的菠菜叶子，洗净擦干或吸干表面水滴后，去除叶梗及粗脉，称取10g于50ml，0.35mol/LNaCl溶液中。2、将菠菜和NaCl溶液一起在瓷研体中研磨，磨成匀浆为止。

第十三页，共十六页，2022年，8月28日3、将匀浆用脱脂棉过滤于烧杯中。4、取滤液4ml在1000r/min下离心4min；弃去沉淀。5、将上清液在3000r/min下离心3min.弃去上清液，将沉淀即为叶绿体（混有部分细胞核）。6、将沉淀用0.35mol/LNaCl溶液悬浮。第十四页，共十六页，2022年，8月28日

实验结果观察一、用胶头滴管取叶绿体悬液分别在载玻片上滴一滴，加盖玻片后即可在普通光学显微镜下观察叶绿体的形态。二、在载玻片上滴一滴0.35mol/LNaCL溶液，用手术刀刮取一定的叶肉，将叶肉置于NaCL液滴中。