人员开题报告单瓣月季花与亮叶种间分化研究

体要求参见《西南林业大学关于学术型开题报告的规定（2012年修订）》3000字左右。（2）20篇（其中人文社科类不选题基本情况导师课题的一部分委培单位的课题其它（须具体说明√。选题分类1.基础研究(√应用研究 3.综合研究 他 选题来源 973、863项目 2.国家社科规划、基金项目))）3.教育部人文、社会科学研究项目)4.国家自然科学基金项目()5.、国家项目 6.省（、直辖市）项目7.国际合作研究项目 8.与港、澳、台合作研究项目9.企、事业单位委托项目 10.项目 11.学校自选项目 12.国防项目 13.非立项 14.其他 一、立题依选题的理论和实践意义35000100个在生产中得到广泛应用。主要害及缺乏花香等[1]。因此，利用蔷薇属野生资源中的优异种质或对现有品种进行改200种，广泛分布、欧、北非、各洲寒温带至亚热带地区[3]，蔷薇属植物的主要产地，产951/2，其中包括65个特有种[4]。根据中国植物志记载，中国蔷薇属被划分为单叶蔷薇亚属（Subgen.Hulthemia）（Subgen.Rosa）28个组，其中月季组（Sect.ChinensesD.C.）3个种，月季花（RosachinensisJacq.）、香水月季（Rosaodorata(Andr.)Sweet）和亮叶月季（Rosa.lucidissimaLévl.）[5]单瓣月季花（Rosa.chinensisJacq.var.spontanea(Rehd.etWils.)YüetKu）是蔷薇科(Rosaceae)蔷薇属(RosaL.)月季组（Sect.ChinensesDC.）月季花（Rosa.chinensis）L.)月季组（Sect.ChinensesDC.）植物，也是月季组的原始野生种之一[7]。352[8[9。分布的95种蔷薇属植物中，中甸刺玫等6种被《中国物种红色》列为“易危”物种0]。由于近年来生境破坏严重及人为采挖等导致野外种群和数急剧下降。单瓣月季花已处于“濒危”状态，亮叶月季则已处于“极危”状态[1]。对单瓣居群水平的研究是探究物种演化历史和确定近缘物种边界的有效方法[2]，对于蔷薇属等经历了快速分化、不完全谱系分选或网状进化的类群来说尤为关键。基采样来揭示种群历史、确定应获重点保护的居群或显著进化单元广泛应用[13]表型特征是和环境因子共同作用的结果，是组DNA样性的具体表现14]。形态特征多样性常被用来估计居群间或居群内的遗传变异。形态标记是利用植物的外部形态特征来区分某些特殊的标记方法。分为质量性状标记和数量性状标记[5]。因为表现型和型之间存在表达、调控、发育等复杂的中间环节，根据表型上的差异来反映型上的差异就是形态学水平检测的关键所在，可以在短期内对所研究物种的遗传变异水平有一个最基本的认识。因此形态标记是最直观也是最简单易行的方法。表型多样性是遗传多样性研究的重要内容之一，但由于表型性状受型和环境双重作用，相同的型在不同下常表现出不同的性状，而相同表型又可能涉及不同的型，因此表型变化有时不能真实的反映遗传变异，进而在遗传多样性研究中受到一定的限制6]。本研究在居群采样的基础上利用形态标记来探讨其单瓣月季花和亮叶月季种两个物种间内的种间分化关系，同时由于表型性状受型和环境双重作用，相同的型在不同下常表现出不同的性状，而相同表型又可能涉及不同的型，因此表型变化有时不能真实的反映遗传变异，进而在遗传多样性研究中受到一定的限制。DNA是遗传物质的载体，叶绿DNA片段、低拷贝核NAPDH和核糖体ITS，从分子水平探讨单瓣文献综述（国内外本研究领域的发展现状、趋势及问题等，并附参考文献1867年，杂种茶香月季品种‘法兰西’（R.‘LaFrance’）的育成开创了现代月季的新篇章，国际上将1867年定为“现代月季”和“古老月季”的分界线[19]。国外月季研究其中最重要的是4个中国古老月季的引入：1792年引进的‘月月红’，1793年引进的‘月月粉’，1809年引进的‘彩晕香水月季’，以及1824年引进的‘淡黄香水月季’，其中后3个中国古老月季为大花香水月季（母本）和月季花的杂交种， 在对蔷薇属植物的研究中，目前国外主要采用的是hdr(194)分类系统，国内则主要还是采《中国植物志《Floraofin作为分类系统[23]在系统发育研究方面，韦筱媚等对分布于横断山地区的绢毛蔷薇复合群（R.ica）进行了基于表型、花粉形态的分类系统研究孟静利用两个单拷贝核 PH和npGS及两个叶绿体片段(rnF和psbAtrn)对香水月季复合群(R.odoat)三个重瓣变种的杂交 和可能亲本进行了研究，结果表明香水月季三个重瓣变种为杂交 ；并推测大花香月季(.odoatavr.gigantea)应该是香水月季三个重瓣变种的母本，而栽培的月季花(R.hineni是其可能的父本[24~27。唐开学、许凤等和邱显钦等采用SSR分子标记对自云南的蔷薇资源进行了种间遗传多样性和亲缘关系研究，并构建了相应的系统树[27~30。由于蔷薇属的种间杂交普遍，受选择压力的影响表型变异较大，其分类非常 和困难。许多人都期望采用各种分子标记技术重建蔷薇属的分类系统。imann的系统与hdr的系统基本一致，仍将蔷薇属分为4个亚属(蔷薇亚属SubgnusRoa、单叶蔷薇亚属Subgnus Hultheia、小叶蔷薇亚属Subgenus Plathodon 和SubgnusHesperhodo)蔷薇亚属又包括芹叶组St.Pimpinllifolia蔷薇组St.Roa、狗蔷薇组St.anina、卡罗莱那组St.aolina、桂叶组St.innama、合柱组Sntyla、月季组St.Indiahinses)、木香组Set.Banksianae、金樱子组Sect.Laigatae和硕苞组St.Bateataoopman利用FP分子标记以来自全世界的蔷薇属4亚属中的3个亚属蔷薇亚属10组中的6个组狗蔷薇组(St.aninae全部4和小叶蔷薇亚属不应为亚属级别；卡罗莱那组S.aoline应与桂叶组St.namommeae合并。关于蔷薇属系统分类的 研究是Fougèrnntl.(2014)利用叶绿体NA片断(pbtrnHpr,trnLintro,trnFpr,trnSGprndtrnGintron核 PH属101个物种进行了系统重建，推断了属内的分化时间，重建了古老区域。该研究表明：传统分类所采用的亚5个叶绿体片段将薇属分成了分别以桂味组和合柱组为代表的两个大支，以此为基础进行分化时间推断。以合柱组为代表的那一大支主要发生在亚洲和欧洲，欧洲 的物种构成单系而亚洲 的物种构成了并系；桂味组为代表的另一大支中较早分化出来的类群包括芹叶组、单叶蔷薇亚属、小叶蔷薇亚属、硕苞组、金樱子组及木香组均只分布 洲。古老区域重建包括化石 表明亚洲和美洲约30.1a前合柱组为的那一大支分布区从洲扩展到洲，约17.4a达 的 约13.1a和 的 到8.4M，芹叶组和桂味组的祖先却严格地仅分布 洲，表明现存的美洲蔷薇中只有prhodos亚是由于早的广泛布形成，其它的美物种是后(13.4a左右)洲rolonition。 的 。 的 约5.3a但 的 4.1Mya。蔷薇属中没有发现东亚 或欧洲的物种之间紧密相关。非洲的R.abyssinica大 9.3-6.9Mya之间从桂味组捕 组。欧洲的桂味组物种是亚洲的桂味组物种在2.5-0.6Mya年前迁移过 蓄水池(geneticreservoir) [31~33]在表型特征方面，唐开学（2008）、周 等（2010）[34]、邱显钦等（2010）[35、陈琳等（2010[36]珠（2010）[37分别对川蔷、峨蔷薇（.oeiensi）、复伞房蔷薇(.bunonii)、木香(.bania)大花香水月季等分布于云南的居群进行了基于表型性状的多样性研究。结果显示它们的表型在居群间和居群内均存在着丰富的变异，但不同物种的表型变异与地理距离之间的关系不同。孟静对大花香水月季基于SSR核 APH、无性繁殖以及间普遍存在的种内杂交现象是大花香水月季维持较高遗传多样性的主要原因[38]。Rusanovetal.对欧洲和亚洲目前玫瑰精油工业中常用的大马士革蔷薇(R.damascena）进行了遗传多样性研究，发现其遗传背景非常狭窄[39]。Aguirreetal.研究了从欧洲引入阿根廷却变成了物种的R.rubiginosa在两个生态区域的居群遗而具有高度的相似性，独立建群后则由于不同生态区域而产生了明显的居群内分化[40hoh到 Ohio州后成为 种的野蔷薇进行了遗传多样性和遗传结构研究，结果表明其遗传多样性非常低，但居群间的分化较明显，认为 的 方式(鸟类取食 )所形成的奠基者效应以及人工引种后的选择等是导致这种结果的原因，并据此提出了相应的管理和控制措施[41。ki用FP对来自伊朗的单叶蔷薇.prsa了多研结表明遗变自 ，群ndrijnbrugge自Flandrs的.arnsis进行了基于FP遗传多样性和形态变异特征的保护生学研究。FP和形态特征都检测到了强烈的居群间遗传分化，并在其中一个区域的样品中发现了来自不同 库的样品。他将这种观察到的遗传分化归因于适应性分化、奠基者效应以及历史上与狗蔷薇曾经有ürns对狗蔷薇在区域内和整个分区范围内的遗传多样性和遗传分化进行于PD分子记的研究结果表狗薇的遗传多性为中等高，异交繁育系统及 方式是其遗传多样性偏高的可能原因。在整个分布区范围内狗蔷薇的遗传分化较高，表明随着距离增加 流降低， 区域性种植时进行种源选择的必要性[42]。［1］LiorzouM,PernetA,LiSB,Chas lierA,ThouroudeT,MichelG,MalécotV,GaillardS,BriéeC,FoucherF,Oghina-PavieC,ClotaultJ,GrapinA.NineteenthcenturyFrenchrose(Rosasp.)germplasmshowsashiftovertimefromaEuropeantoanAsiangeneticbackground[J].JournalofExperimentalBotany.2016,67(15):4711-4725.［2］NoackR.Breeding/selectionstrategiesfordiseaseandpest .EncyclopediaofRoseScience[J].RobertsAV,DebenerTandGudinS(eds),Oxford:ElsevierAcademicPress,2003.286-292.［3］Fougère-DanezanM,JolyS,BruneauA,GaoXF,ZhangLB.Phylogenyandyofwildroseswithspecificattentiontopolyploids[J].AnnalsofBotany,2014,115(2): RehderA.ManualofcultivatedtreesandshrubshardyinNorthAmerica[M].NewYork:Macmillan,1940. 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