微生物作业指导书

微生物作业指导书微生物作业指导书微生物作业指导书xxx公司微生物作业指导书文件编号：文件日期：修订次数：第1.0次更改批准审核制定方案设计，管理制度XHRXHR/JCZL-02-011-2014西安宏兴乳业有限公司 微生物检验作业指导书编制：审核：批准：受控状态：发放号：20142014-02-28实施西安宏兴乳业有限公西安宏兴乳业有限公司发布2014-02-25发布2014-02-25发布 目录目录目录·························································1§1菌落总数···················································2§2大肠菌群的测定·············································7§3沙门氏菌检验··············································10§4金黄色葡萄球菌检验········································15§5阪崎肠杆菌的检验··········································18 西安宏兴乳业有限公司菌落总数测定菌落总数测定1.术语和定义菌落总数(aerobicplatecount)食品检样经过处理，在一定条件下（如培养基、培养温度和培养时间等）培养后，所得每g（mL）检样中形成的微生物菌落总数。2.设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：2.1恒温培养箱：36℃±1℃。2.2冰箱：2℃～5℃。2.3烘箱。2.4天平：感量为0.1g。2.5均质器。2.6无菌吸管：1mL（具0.01mL刻度）、10mL（具0.1mL刻度）或微量移液器及吸头。2.7无菌锥形瓶：容量250mL、500mL。2.8无菌培养皿：直径90mm。2.9菌落计数器。2.10试管，18*180，20*200。3.培养基和试剂3.1平板计数琼脂培养基。3.2无菌生理盐水，0.85%。4.检验程序菌落总数的检验程序见下图：↓↓↓↓↓5.操作步骤5.1.样品的稀释5.1.1固体和半固体样品：称取25g样品置盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内，8000r/min～10000r/min均质1min～2min，或放入盛有225mL稀释液的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1min～2min，制成1:10的样品匀液。5.1.2液体样品：以无菌吸管吸取25mL样品置盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:10的样品匀液。5.1.3用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1mL，沿管壁缓慢注于盛有9mL稀释液的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1支无菌吸管反复吹打使其混合均匀，制成1:100的样品匀液。5.1.4按以上操作程序，制备10倍系列稀释样品匀液。每递增稀释一次，换用1次1mL无菌吸管或吸头。5.1.5根据对样品污染状况的估计，选择2个～3个适宜稀释度的样品匀液（液体样品可包括原液），在进行10倍递增稀释时，吸取1mL样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1mL空品可包括原液），在进行10倍递增稀释时，吸取1mL样品匀液于无菌平皿内，每个稀释度做两个平皿。同时，分别吸取1mL空白稀释液加入两个无菌平皿内作空白对照。5.1.6及时将15mL～20mL冷却至46℃的平板计数琼脂培养基倾注平皿，并转动平皿使其混合均匀。5.2培养5.2.1待琼脂凝固后，将平板翻转，36±1℃℃培养48h±2h。5.2.2如果样品中可能含有在琼脂培养基表面弥漫生长的菌落时，可在凝固后的琼脂表面覆盖一薄层琼脂培养基（约4mL），凝固后翻转平板，按5.2.1条件进行培养。5.3菌落计数可用肉眼观察，必要时用放大镜或菌落计数器，记录稀释倍数和相应的菌落数量。菌落计数以菌落形成单位（colony-formingunits，CFU）表示。5.3.1选取菌落数在30CFU～300CFU之间、无蔓延菌落生长的平板计数菌落总数。低于30CFU的平板记录具体菌落数，大于300CFU的可记录为多不可计。每个稀释度的菌落数应采用两个平板的平均数。5.3.2其中一个平板有较大片状菌落生长时，则不宜采用，而应以无片状菌落生长的平板作为该稀释度的菌落数；若片状菌落不到平板的一半，而其余一半中菌落分布又很均匀，即可计算半个平板后乘以2，代表一个平板菌落数。5.3.3当平板上出现菌落间无明显界线的链状生长时，则将每条单链作为一个菌落计数。6.结果与报告6.1菌落总数的计算方法6.1.1若只有一个稀释度平板上的菌落数在适宜计数范围内，计算两个平板菌落数的平均值，再将平均值乘以相应稀释倍数，作为每g（mL）样品中菌落总数结果。6.1.2若有两个连续稀释度的平板菌落数在适宜计数范围内时，按公式（1）计算：N=(1)式中：式中：N——样品中菌落数；∑C——平板（含适宜范围菌落数的平板）菌落数之和；n1——第一稀释度（低稀释倍数）平板个数；n2——第二稀释度（高稀释倍数）平板个数；d——稀释因子（第一稀释度）。示例：稀释度1:100（第一稀释度）1:1000（第二稀释度）菌落数（CFU）232，24433，35N==24727上述数据按7.2.2数字修约后，表示为25000或2.5×104。6.1.3若所有稀释度的平板上菌落数均大于300CFU，则对稀释度最高的平板进行计数，其他平板可记录为多不可计，结果按平均菌落数乘以最高稀释倍数计算。6.1.4若所有稀释度的平板菌落数均小于30CFU，则应按稀释度最低的平均菌落数乘以稀释倍数计算。6.1.5若所有稀释度（包括液体样品原液）平板均无菌落生长，则以小于1乘以最低稀释倍数计算。6.1.6若所有稀释度的平板菌落数均不在30CFU～300CFU之间，其中一部分小于30CFU或大于300CFU时，则以最接近30CFU或300CFU的平均菌落数乘以稀释倍数计算。6.2菌落总数的报告6.2.1菌落数小于100CFU时，按“四舍五入”原则修约，以整数报告。6.2.2菌落数大于或等于100CFU时，第3位数字采用“四舍五入”原则修约。后，取前2位数字，后面用0代替位数；也可用10的指数形式来表示，按“四舍五入”原则修约后，采用两位有效数字。6.2.3若所有平板上为蔓延菌落而无法计数，则报告菌落蔓延。6.2.4若空白对照上有菌落生长，则此次检测结果无效。6.2.5称重取样以CFU/g为单位报告，体积取样以CFU/mL为单位报告。6.2.5称重取样以CFU/g为单位报告，体积取样以CFU/mL为单位报告。7.备注本方法参考国标GB4789.2-2010。大肠菌群的测定（平板计数法）1.术语和定义大肠菌群的测定（平板计数法）1.术语和定义1.1大肠菌群coliforms在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。1.2最可能数mostprobablenumber，MPN基于泊松分布的一种间接计数方法。2.设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：2.1恒温培养箱：36℃±1℃。2.2冰箱：2℃～5℃。2.3烘箱。2.4天平：感量0.1g。2.5均质器。2.6无菌吸管：1mL（具0.01mL刻度）、10mL（具0.1mL刻度）或微量移液器及吸头。2.7无菌锥形瓶：容量500mL。2.8无菌培养皿：直径90mm。2.9菌落计数器。3.培养基和试剂3.1结晶紫中性红胆盐琼脂（VioletRedBileAgar，VRBA）。3.2煌绿乳糖胆盐（BrilliantGreenLactoseBile，BGLB）肉汤。3.3无菌生理盐水,0.85%。4.检验程序大肠菌群平板计数法的检验程序见下图:↓36℃±1℃↓18-24h↓36℃±1℃↓24-48h5.操作步骤5.1样品的稀释5.1.1固体和半固体样品：称取25g样品,放入盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内8000r/min～10000r/min均质1min～2min,或放入盛有225mL磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中，用拍击式均质器拍打1min～2min，制成1:10的样品匀液。5.1.2液体样品：以无菌吸管吸取25mL样品置盛有225mL生理盐水的无菌锥形瓶（瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠）中，充分混匀，制成1:10的样品匀液。5.1.3用1mL无菌吸管或微量移液器吸取1:10样品匀液1mL，沿管壁缓缓注入9mL生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1支1mL无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:100的样品匀液。5.1.4根据对样品污染状况的估计，按上述操作，依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释1次，换用1支1mL无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕，全过程不得超过15min。5.2平板计数5.2.1选取2个～3个适宜的连续稀释度,每个稀释度接种2个无菌平皿，每皿1mL。同时取1mL生理盐水加入无菌平皿作空白对照。5.2.2及时将15mL～20mL冷至46同时取1mL生理盐水加入无菌平皿作空白对照。5.2.2及时将15mL～20mL冷至46℃的结晶紫中性红胆盐琼脂（VRBA）约倾注于每个平皿中。小心旋转平皿，将培养基与样液充分混匀，待琼脂凝固后，再加3mL～4mLVRBA覆盖平板表层。翻转平板，置于36℃±1℃培养18h～24h。5.3平板菌落数的选择选取菌落数在15CFU～150CFU之间的平板，分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。典型菌落为紫红色，菌落周围有红色的胆盐沉淀环，菌落直径为0.5mm或更大。5.4证实试验从VRBA平板上挑取10个不同类型的典型和可疑菌落，分别移种于BGLB肉汤管内，36℃±1℃培养24h～48h，观察产气情况。凡BGLB肉汤管产气，即可报告为大肠菌群阳性。5.5大肠菌群平板计数的报告经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以8.3中计数的平板菌落数，再乘以稀释倍数，即为每g（mL）样品中大肠菌群数。例：10-4样品稀释液1mL，在VRBA平板上有100个典型和可疑菌落，挑取其中10个接种BGLB肉汤管，证实有6个阳性管，则该样品的大肠菌群数为：100×6/10×104/g（mL）=6.0×105CFU/g（mL）。6.备注本方法参考国标GB4789.3-2010。沙门氏菌检验沙门氏菌检验1.设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：1.1冰箱：2℃～5℃。1.2恒温培养箱：36℃±1℃，42℃±1℃。1.3均质器。1.4振荡器。1.5电子天平：感量0.1g。1.6无菌锥形瓶:容量500mL，250mL。1.7无菌吸管：1mL（具0.01mL刻度）、10mL（具0.1mL刻度）或微量移液器及吸头。1.8无菌培养皿：直径90mm。1.9无菌试管：3mm×50mm、10mm×75mm。1.10全自动微生物生化鉴定系统。2.培养基和试剂2.1缓冲蛋白胨水（BPW）。2.2四硫磺酸钠煌绿（TTB）增菌液。2.3亚硒酸盐胱氨酸（SC）增菌液。2.4亚硫酸铋（BS）琼脂。2.5HE琼脂。2.6木糖赖氨酸脱氧胆盐（XLD）琼脂。2.7沙门氏菌属显色培养基。2.8三糖铁（TSI）琼脂。2.9赖氨酸脱羧酶试验培养基。2.10生化鉴定试剂盒。3.培养基和试剂3.1缓冲蛋白胨水（bufferpeptonewater，BPW）：制法：称取20g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.2±0.2，121℃高压灭菌15min后取出。3.2四硫磺酸钠煌绿（TTB）增菌液：制法：称取93.5g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.2±0.2，121℃高压灭菌20min后取出。临用前按每100mL加入P-72碘液一支和P-730.1%煌绿一支，混匀后分装。3.3亚硒酸盐胱氨酸（SC）增菌液：制法：称取23g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.0±0.2，加热煮沸灭菌，不要过度加热，定量分装备用。3.4亚硫酸铋（BS）琼脂：制法：称取49.6g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.5±0.1，加热煮沸至完全溶解，冷却至55℃左右，摇匀，倾注平板备用。临用前一天配制。3.5HE琼脂：制法：称取75.5g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.5±0.2，加热煮沸至完全溶解，冷却至55℃左右，倾注平板备用。3.6木糖赖氨酸脱氧胆盐（XLD）琼脂：制法：称取58.9g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.4±0.2，加热煮沸至完全溶解，冷却至55℃左右，倾注平板备用。不要过度加热.3.7沙门氏菌属显色培养基：制法：称取34.9g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.6±0.2，加热煮沸灭菌，冷却至55℃左右，摇匀后铺制成平板备用。3.8三糖铁（TSI）琼脂：制法：称取63.4g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.4±0.2，分装（每4mL左右为一管），115℃高压灭菌15min后取出，制成高层斜面备用。3.9赖氨酸脱羧酶试验培养基：制法：称取1.9g于100mL蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至6.8±0.2，分装（每个小离心管装0.5mL），115℃高压灭菌10min后备用。3.10细菌微量生化鉴定管：3.10.1M007-氨基酸脱羧酶对照3.10.2M002-色氨酸肉汤3.10.3M036-尿素酶3.10.4M151-氰化钾培养基3.10.5M152-氰化钾培养基对照3.10.5M152-氰化钾培养基对照3.10.6M016-β-半乳糖苷（ONPG）3.11沙门氏菌属诊断血清A-F4操作步骤4.1前增菌4.1.1固体和液体：称取25g（mL）样品放入盛有225mLBPW的均质袋中，用手缓缓地摇动至充分溶解，于36℃±1℃培养8h～18h。4.1.2物体表面：将检样混匀后，于36℃±1℃培养8h～18h。4.2增菌轻轻摇动培养过的样品混合物，移取1mL，转种于10mLTTB内，于42℃±1℃培养18h～24h。同时，另取1mL，转种于10mLSC内，于36℃±1℃培养18h～24h。4.3分离分别用接种环取增菌液1环，划线接种于一个BS琼脂平板和一个XLD琼脂平板（或HE琼脂平板或沙门氏菌属显色培养基平板）。于36℃±1℃分别培养18h～24h（XLD琼脂平板、HE琼脂平板、沙门氏菌属显色培养基平板）或40h～48h（BS琼脂平板），观察各个平板上生长的菌落,各个平板上的菌落特征见表1。表1沙门氏菌属在不同命选择性琼脂平板上的菌落特征选择性琼脂平板沙门氏菌BS琼脂菌落为黑色有金属光泽、棕褐色或灰色，菌落周围培养基可呈黑色或棕色；有些菌株形成灰绿色的菌落，周围培养基不变。HE琼脂蓝绿色或蓝色，多数菌落中心黑色或几乎全黑色；有些菌株为黄色，中心黑色或几乎全黑色。XLD琼脂菌落呈粉红色，带或不带黑色中心，有些菌株可呈现大的带光泽的黑色中心，或呈现全部黑色的菌落；有些菌株为黄色菌落，带或不带黑色中心。沙门氏菌属显色培养基菌落呈紫红色或紫色。4.4生化鉴定4.4.1自选择性琼脂平板上分别挑取2个以上典型或可疑菌落，接种三糖铁琼脂，先在斜面划线，再于底层穿刺；接种针不要灭菌,直接接种赖氨酸脱羧酶试验培养基验培养基和对照培养基。同时，挑取可疑菌落接种于色氨酸（供做靛基质试验）、尿素琼脂、氰化钾（KCN）培养基、氰化钾培养基对照和ONPG。于36℃±1℃培养18h～24h，必要时可延长至48h，按表2、3判定结果。表2结果判定表试验项目阴性结果阳性结果说明三糖铁黄色或红色有黑色物质产生穿刺不可穿透琼脂至管底部。赖氨酸脱羧酶对照黄色对照黄色接种完可疑菌落后滴加3-4滴灭菌液体石蜡覆盖液面。试验黄色试验紫色色氨酸黄色玫瑰红色培养后滴加2-3滴靛基质试剂，即刻观察结果。尿素酶黄色或橙色玫瑰红色或红色氰化钾对照生长对照生长接种完可疑菌落后滴加3-4滴灭菌液体石蜡覆盖液面。试验不生长试验生长ONPG不变色黄色培养1-3h观察结果，如为阴性继续培养至24h.表3沙门氏菌属生化反应初步鉴定表反应序号硫化氢靛基质pH7.2尿素氰化钾赖氨酸脱羧酶A1+———+A2++——+A3————＋/－注：＋阳性；－阴性；＋/－阳性或阴性4.4.2.1反应序号A1：典型反应判定为沙门氏菌属。如尿素、KCN和赖氨酸脱羧酶3项中有1项异常，按表4可判定为沙门氏菌。如有2项异常为非沙门氏菌。表4沙门氏菌属生化反应初步鉴定表pH7.2尿素氰化钾赖氨酸脱羧酶判定结果———甲型副伤寒沙门氏菌（要求血清学鉴定结果）—++沙门氏菌Ⅳ或Ⅴ（要求符合本群生化特性）+—+沙门氏菌个别变体（要求血清学鉴定结果）注：＋表示阳性；＋表示阴性4.4.2.24.4.2.2反应序号A2：补做甘露醇和山梨醇试验，沙门氏菌靛基质阳性变体两项试验结果均为阳性，但需要结合血清学鉴定结果进行判定。4.4.2.3反应序号A3：ONPG阴性为沙门氏菌，同时赖氨酸脱羧酶阳性；甲型副伤寒沙门氏菌为赖氨酸脱羧酶阴性。4.5血清学鉴定在清洁玻片上滴1滴血清，然后挑取1环待测菌与血清混匀，轻轻摇动玻片，1分钟内肉眼判断结果，试验应以生理盐水溶液作为阴性对照。于1分钟内呈明显凝集者为阳性，呈浑浊者为阴性。结果与报告综合以上生化试验和血清学鉴定的结果，报告25g（mL）样品中检出或未检出沙门氏菌。注意事项6.1一般干粉培养基应密封保存于阴凉干燥处，沙门氏菌显色培养基制备好的平板于2～8℃避光保存，其他配制好的药品无特殊要求可直接保存于冰箱中。6.2TTB增菌液应现配现用，不宜久置。沙门氏菌属显色培养基、亚硫酸铋（BS）琼脂、HE琼脂、木糖赖氨酸脱氧胆盐（XLD）琼脂、亚硒酸盐胱氨酸（SC）增菌液均勿需高压灭菌。6.3划线接种时应采用三区法划线，并且接种针和接种环都必须灭菌彻底（连续灼烧三次）。前增菌以后的工作需在生物安全中进行。6.4在实验过程中若有菌液不慎洒出先用75%酒精棉球擦拭干净，实验完后用3%甲酚皂溶液擦拭消毒。并应定期对无菌室进行清洗消毒。6.5所有安瓿瓶无需加盖。对赖氨酸脱羧酶培养基、赖氨酸脱羧酶对照培养基、氰化钾培养基和氰化钾对照培养基在接种完菌落后需加液体石蜡2-3滴封口。6.6已经开袋的均质袋应保存于无菌室内，并尽快使用，避免污染。6.7将已挑取菌落平板保存于2～5℃的冰箱内，至少保留24h以备必要时复查。6.8废弃的培养液和培养基需经高压灭菌锅121℃灭菌30min后再废弃或清洗。7.备注本方法参考国标GB4789.4-2010。金黄色葡萄球菌的测定金黄色葡萄球菌的测定1设备和材料：除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：1.1恒温培养箱：36℃±1℃。1.2冰箱：2℃～5℃。1.3恒温水浴锅：37℃～65℃。1.4天平：感量0.1g。1.5无菌吸管：1mL（具0.01mL刻度）。1.6无菌均质袋：尺寸180×320×0.091.7无菌培养皿：直径90mm。1.8精密pH试纸。2培养基和试剂：下面所用培养基，如需调整pH值，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调2.17.5%氯化钠肉汤：制法：称取7.5%氯化钠肉汤90g于1L蒸馏水中，调pH值为7.4±0.2，121℃高压灭菌15min后，冷却后放入冰箱备用。2.2血琼脂平板2.3Baird-Parker琼脂平板：制法：称取63.0g于1L蒸馏水中，加热煮佛至完全溶解，调pH值为7.0±0.2，121℃高压灭菌15min后，冷至50℃时，每95ml加入1支亚碲酸钾卵黄增菌液，混匀后倾注平板后放入冰箱备用。2.4脑心浸出液肉汤（BHI）：制法：称取24.5g于1L蒸馏水中，加热煮佛至完全溶解，调pH值为7.4±0.2，分装试管，每管5ml，121℃高压灭菌15min备用。2.5CM304冻干兔血浆：用途：用于金黄色葡萄球菌的血浆凝固酶试验。用法：每支安瓿瓶中加入0.5ml灭菌生理盐水，至完全溶解；然后，挑取可疑菌落溶入混匀或（加入0.3ml菌悬液混匀后），置36℃±1℃培养，在6h内定时观察结果。2.6革兰氏染色液2.7无菌生理盐水：。制法：称取8.5制法：称取8.5g氯化钠溶于1000ml蒸馏水中，121℃高压灭菌30min。3操作步骤3.1样品的处理：3.1.1样品：称取25g样品置盛有225mL7.5%氯化钠肉汤的无菌均质袋内，混合均匀。3.2增菌和分离培养：3.2.1将上述样品匀液于36℃±1℃培养箱内培养18h—24h。3.2.2将上述培养物，在生物安全柜内分别用三区法划线接种到Baird-Parker平板和血平板上，血平板36℃±1℃培养18h—24h，Baird-Parker平板36℃±1℃培养18h—24h或45h—48h。（使用前，如Baird-Parker平板表面有水珠，可放在25℃～50℃的培养箱里干燥，直到平板表面的水珠消失。）3.3菌落形态：金黄色葡萄球菌在Baird-Parker平板上，菌落直径为2mm—3mm，颜色呈灰色到黑色，边缘为淡色，周围为一混浊带，在其外层有一透明圈。用接种针接触菌落有似奶油至树胶样的硬度，偶然会遇到非脂肪溶解的类似菌落；但无混浊带及透明圈。长期保存的冷冻或干燥食品中所分离的菌落比典型菌落所产生的黑色较淡些，外观可能粗糙并干燥。在血平板上，形成菌落较大，圆形、光滑凸起、湿润、金黄色（有时为白色），菌落周围可见完全透明溶血圈。挑去上述菌落进行革兰氏染色镜检及血浆凝固酶试验。4鉴定：4.1染色镜检：金黄色葡萄球菌为革兰氏阳性球菌，排列呈葡萄球状，无芽胞，无荚膜，直径约为0.5m～1m。4.1.1染色流程：初染→媒染→脱色→复染→镜检。①取一干净的载玻片，滴一滴蒸馏水，再向蒸馏水中挑取一环可疑菌落，涂抹均匀，将涂片面朝上在酒精灯上方稍微加热，使其干燥；②初染：用结晶紫染色1min—2min后用蒸馏水冲洗至洗出液为无色再将涂片面朝上在酒精灯上方稍微加热，使其干燥；③媒染：用碘液媒染约1min后用蒸馏水洗干净再将涂片面朝上在酒精灯上方稍微加热，使其干燥；④脱色：用95％乙醇脱色20s—30s后用蒸馏水洗干净再将涂片面朝上在酒精灯上方稍微加热，使其干燥；⑤⑤复染：用沙黄复染约2min左右后用蒸馏水洗干净再将涂片面朝上在酒精灯上方稍微加热，使其干燥；⑥镜检：最后在显微镜下用油镜观察，判断菌体染色反应性。4.2血浆凝固酶试验：挑取Baird-Parker平板或血平板上可疑菌落1个或以上接种到5mLBHI中，36℃±1℃培养18h～24h。取冻干兔血浆1支加入0.5mL灭菌生理盐水，充分溶解，再加入BHI培养物0.2mL～0.3mL摇匀，置36℃±1℃培养箱内，每半小时观察一次，观察6h，如呈现凝固（即将试管倾斜或倒置时，呈现凝块）或凝固体积大于原体积的一半，被判定为阳性结果。5结果与报告：5.1结果判定：符合4.3，5.1和5.2，可判定为金黄色葡萄球菌。5.2结果报告：在25g（mL）样品中检出或未检出金黄色葡萄球菌。6注意事项：6.1一般干粉培养基应密封保存于阴凉干燥处，Baird-Parker倾到好的平板应在48h内使用。其他配制好的药品无特殊要求可直接保存于冰箱中。6.2买来的血平板需放到冰箱中2℃—8℃避光冷藏存放。6.3划线接种时，接种环烧红为灭菌彻底。前增菌以后的工作需在生物安全柜中进行。6.4在实验过程中若有菌液不慎洒出先用75%酒精棉球擦拭干净，实验完后用3%甲酚皂溶液擦拭消毒。并应定期对无菌室进行清洗消毒。6.5已经开袋的均质袋应保存于无菌室内，并尽快使用，避免污染。6.6将已挑取菌落平板保存于2～5℃的冰箱内，至少保留24h以备必要时复查。6.6废弃的培养液和培养基需经高压灭菌锅121℃灭菌30min后再废弃或清洗。6.7脱色是革兰染色操作的关键环节，以免脱色不完全造成假阳性；脱色过度，阳性菌被误染成阴性菌，脱色时间一般为20s—30s。7.备注本方法参考国标GB4789.10-2010。阪崎肠杆菌的测定阪崎肠杆菌的测定1设备和材料除微生物实验室常规灭菌及培养设备外，其他设备和材料如下：1.1恒温培养箱：36℃±1℃，44℃±0.5℃，25℃±1℃，30℃±1℃。1.2冰箱：2℃～5℃。1.3恒温水浴箱：44℃±0.5℃。1.4天平：感量0.1g。1.5无菌吸管：1mL（具0.01mL刻度）、10mL（具0.1mL刻度）。1.6无菌培养皿：直径90mm。1.7无菌锥形瓶：容量100mL、1000mL。1.8无菌均质袋：尺寸180×320×0.091.9精密pH试纸。1.10接种环。1.11矿物油（液体石蜡）。1.12无菌吸管。1.13氧化酶测定试剂盒。1.14API20E试条。2培养基和试剂2.1缓冲蛋白胨水（bufferpeptonewater，BPW）：制法：称取20g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.2±0.2，121℃高压灭菌15min后取出。2.2改良月桂基硫酸盐胰蛋白胨肉汤-万古霉素（modifiedlaurylsulfatetryptosebroth-vancomycinmedium，mLST-Vm）：制法：称取64.6g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至6.8±0.2，121℃高压灭菌15min后取出。临用前每100mL基础无菌加入P-08B万古霉素1支，共配制3个100mL。2.3阪崎肠杆菌显色培养基：制法：称取45.33g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.3±0.2（25℃），121℃高压灭菌3min后取出，冷却至50℃铺制平板备用。2.42.4胰蛋白胨大豆琼脂（trypticasesoyagar，TSA）：制法：称取38g于1L蒸馏水中，用1mol/L氢氧化钠或1mol/L盐酸调节PH至7.3±0.2，121℃高压灭菌15min后取出，冷却至50℃铺制平板备用。2.5API20E试条2.60.85%氯化钠培养基：制法：称取8.5g于1L蒸馏水中，121℃高压灭菌30min.2.7无菌蒸馏水3操作步骤3.1前增菌3.1.1固体和液体：取三个检样各100g（mL）加入已预热至44℃装有900mL缓冲蛋白胨水的均质袋中，用手缓缓地摇动至充分溶解，36℃±1℃培养18h±2h。3.1.2物体表面：将检样混匀后，于36℃±1℃培养18h±2h。3.2增菌3.2.1固体和液体：移取10mL转种于100mLmLST-Vm肉汤，44℃±0.5℃培养24h±2h。3.2.2物体表面：移取1mL转种于10mLmLST-Vm肉汤，44℃±0.5℃培养24h±2h。3.3分离3.3.1轻轻混匀mLST-Vm肉汤培养物，各取增菌培养物1环，分别划线接种于两个阪崎肠杆菌显色培养基平板，36℃±1℃培养24h±2h。3.3.2挑取1个～5个可疑菌落（蓝绿色），划线接种于TSA平板上。25℃±1℃培养18-24h用于氧化酶试验的测定，培养48h±4h用于生化鉴定中其他试验的测定。3.4鉴定3.4.1氧化酶试验（OX）：拿住安瓿瓶中间，轻按将安瓿瓶压破，准确加1滴试剂到空白纸片上（如称量纸），用无菌塑料吸管挑取TSA平板上黄色可疑菌落与纸片的试剂中，观察结果，结果根据以下结果判读表判读。3.4.2API20E试条的接种：自TSA平板上直接挑取黄色可疑菌落与5mL0.85%氯化钠培养基中制成菌悬液备用。在API20E培养盘中加入约5mL无菌蒸馏水与盘的蜂窝小凹中，造造成一个湿室。将试条置于盘中用无菌吸管加入菌悬液，其中：CIT、VP和GEL小管菌液需充满管部和杯部，其它管仅充满管部；在试验ADH、LDC、ODC、H2S、URE小杯内加入矿物油以形成厌氧环境。盖上培养盒，于36℃±2℃孵育18