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文档简介

1、3Westernblot3.1试剂配制1)30%聚丙烯酰胺储备液(Acr/Bis):丙烯酰胺(Acr),29g;N,N-亚甲基双丙烯酰胺(Bis),1g,去离子水溶解,37水浴助溶,定容至100mL。0.45Mm滤器过滤,棕色瓶4避光保存。2)10%十二烷基硫酸钠(SDS):SDS,10g;H2O,80mL。68加热溶解,浓HCl调pH至7.2,定容至100mL,室温保存。3)10%过硫酸铵(AP):AP,1g;H2O,10mL。避光,4保存。(42周)4)分离胶缓冲液(1.5MTris-HClpH8.8):Tris,18.17g;H2O80mL。用浓HCl调pH至8.8,定容至100mL,4

2、保存。5)浓缩胶缓冲液(1.0MTris-HClpH6.8):Tris,12.11g;H2O80mL。用浓HCl调pH至6.8,定容至100mL,4保存。6)电泳缓冲液(10义):甘氨酸(Glycine),188g;Tris30.2g;SDS,10g;H2O,800mL。调节pH至8.3,定容至1L,4保存(用时稀释为1义)。5义SDSloadingBuffer(5mL):1MTris-HCl(pH6.8),1.25mL;SDS,0.5g;溴酚蓝(BPB),25mg;甘油,2.5mL;加去离子水定容至5mL。充分混匀,分装成500mL/份,室温保存。使用前每份加入25MLp-巯基乙醇(2-ME

3、),加入2-ME的loadingbuffer可在室温下保存一个月左右。8)考马斯亮蓝染色固定液:40%双蒸水,10%醋酸,50%甲醇,室温保存9)考马斯亮蓝染色液:考马斯亮蓝R-250,250mg;甲醇,45ml;冰醋酸,10ml;H2O,定容至100ml。室温保存。10)考马斯亮蓝染色脱色液:醋酸,100ml;乙醇,50ml;dH2O850ml,充分混合,室温保存11)膜转移缓冲液:甘氨酸,2.9g;Tris,5.8g;SDS,0.37g;力口H2O600mL充分溶解,加200mL甲醇,混匀,定容至1匕,室温保存。TBS缓冲液:NaCl,8.8g;1MTis-HCL(pH8.0),20ml,

4、加入约800H2O搅拌溶解,定容至1L,4保存。TBST缓冲液:NaCl,8.8g;1MTis-HCL(pH8.0),20ml,加入约800H2O搅拌溶解,加入0.5mlTween20后充分混匀,去离子水定容至1L,4保存。1MTis-HCL(pH8.0)Tris.1g置于1L烧杯,加入约800ml去离子水,充分搅拌,加入浓HCL约42ml,定容至1L,高压灭菌,室温保存。3.2Westernblot电泳、转膜及显色过程清洗将玻璃板洗净,用ddH2O冲洗,然后晾干。封板时保证支架与底座胶条契合,固定时两边同时均匀用力旋动齿轮把手,固定即可,不要用力过大以免压碎玻璃。封好后可装ddH2O试试,确

5、定不漏后再灌胶。2、制胶SDS分离胶配方表(12%Gel)各种组分名称各种凝胶体积对应的各种组分的取样量(ml)10ml15ml20mlH2O3.34.96.630%Acrylamide4.06.08.01.5MTris-Hcl(pH8.8)2.53.85.010%SDS0.10.150.210%过硫酸铵(AP)0.10.150.2TEMED0.0040.0060.008SDS浓缩胶(5%Acrylamide)配方表各种组分名各种凝胶体积对应的各种组分的取样量(ml)称4ml5ml6mlH2O2.73.44.130%Acrylamide0.670.831.01.0MTris-Hcl0.50.6

6、30.75(pH6.8)10%SDS0.040.050.0610%过硫酸铵(AP)0.040.050.06TEMED0.0040.0050.0063、封胶按前面方法配分离胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。灌入2/3的分离胶后应立即封胶,胶上加一层水,液封后的胶凝的更快。(灌胶时开始可快一些,胶面快到所需高度时要放慢速度。操作时胶一定要沿玻璃板流下,这样胶中才不会有气泡。加水液封时要很慢,否则胶会被冲变型。当水和胶之间有一条折射线时,说明胶已凝了(至少等30-40min)。再等3min使胶充分凝固就可倒去胶上层水并用吸水纸将水吸干。按前面方法配5%的浓缩胶,加入TEMED后立即摇匀即可灌胶。

7、将剩余空间灌满浓缩胶然后将梳子插入浓缩胶中。灌胶时也要使胶沿玻璃板流下以免胶中有气泡产生。插梳子时要使梳子保持水平。由于胶凝固时体积会收缩减小,从而使加样孔的上样体积减小,所以在浓缩胶凝固的过程中要经常在两边补胶。4、拔梳子灌好浓缩胶,约40-60min凝胶后均匀用力拔除梳子,若上样孔有变形,可用适当粗细的针头拨正。5、上样测完蛋白浓度后,计算含M蛋白的溶液体积即为上样量。取出上样样品至5离心管中,加入5义5口5上样缓冲液至终浓度为1X。将加入loadingbuffer的蛋白样品放沸水中煮5-10分钟,高速离心30s即可上样。上样总体积一般不超过15Pl加样孔的最大限度可加p体积。加足够的电泳

8、液后开始准备上样,电泳液至少要漫过内测的小玻璃板,外侧漠过底部。所有蛋白样品调至等浓度后上样,样品两侧的泳道用等体积的Ixloadingbuffer上样。非预染蛋白准备:1Dp与5Xp混合成稀释液p然后再加入()5p、灭菌蒸馏水p混合成蛋白混合均匀后,煮沸处理5i分装保存,取5p进行1凝胶电泳。6、电泳先稳流30mA电泳至上下胶分界时改稳流45mA直接调总时间1.5h,到时候直接调电流。当loadingbuffer泳动到胶下缘时结束。电泳时间较长时,应用冰块放电泳槽两边防止溶胶。7、转膜剥胶:轻启玻璃板,将胶卸下,切除浓缩胶及无用胶,右上切角标记,在冷的电转液中平衡20-60min。材料准备:

9、转一张膜需要2张滤纸(伯乐专用滤纸)和1张0.45umPVDF膜,切滤纸和膜时一定要戴手套,因为手上的蛋白会污染膜。将切好的硝酸纤维素膜置于水上浸才可使用。用镊子捏住膜的一边轻轻置于有超纯水的平皿里,要使膜浮于水上,只有下层才与水接触。这样由于毛细管作用可使整个膜浸湿。若膜沉入水里,膜与水之间形成一层空气膜,这样会阻止膜吸水。处理:将与胶同样大小的滤纸放在转移液中浸泡片刻,PVDF膜需浸泡甲醇1-2min,再孵育于冰的电转液中5min。电转仪转膜:A、打开保护罩,按照如下准备凝胶三明治:B、从底部铂金正极开始放置:预湿-滤纸预湿-膜已平衡的胶预湿-滤纸注意:每层之间赶走气泡C、连接顶部不锈钢阴

10、极,盖上保护罩D、不同蛋白需要不同优化的条件:参考范围:小胶10V30min或者15V15min大胶25V30min或者15V60min注意:当前不要超过25V,且大胶不要超过3mA/cm2、小胶不要超过5.5mA/cm2E、关闭电源,拔掉电极,移除胶注:为了防止溶胶,可将转移缓冲液提前放4冰箱预冷过夜膜上蛋白检测:丽春红2%的丽春红储备液(1X):0.4g丽春红、6g三氯乙酸、6g磺基水杨酸溶于20ml。丽春红染色工作液:2%的丽春红储备液1:10稀释,即加9倍的ddH2O染色方法:将膜放入洗一次,再置于丽春红染色工作液中,在室温下摇动染色分钟,大量的水洗膜直至水变清无色,marker条带处

11、用铅笔做好标记。回收膜需用甲醇再活化后用洗后进行封闭。8膜的封闭膜用洗完后,移至含有封闭液加入一定量的磷酸酶抑制剂的平皿中,室温下脱色摇床上摇动封闭。再用洗秒,进入下一步抗体的孵育。配制脱脂奶粉或溶液:每中加入脱脂奶粉或,混匀后过滤,如不过滤会导致膜污染上细微黑颗粒。9一抗的孵育一抗的准备:将一抗按适当的比例用抗体稀释液稀释。加入一定量的磷酸酶抑制剂孵讪曲:按抗体说明书建议的稀释倍数,用TBST稀释一抗。一般参考推荐的稀释倍数1:100-1:3000,1:1000一抗浓度过高会导致产生非特异性条带。将PVDF膜浸没于含有一抗的抗体稀释液中室温(25左右)轻摇3小时或放4冰箱过夜。若放入4冰箱过

12、夜则第二天还应放室温缓慢摇荡1小时。o洗涤:一抗孵育结束后,用TBST漂洗膜后再浸洗三次(漂洗后应换容器浸洗),每次10min,以去除残留的一抗。洗涤结束后进行二抗的孵育。11、二抗的孵育孵育buffer和稀释倍数:用TBST按说明书推荐的倍数稀释二抗。常规稀释倍数1:1000-1:20,0001:1000,二抗的浓度过高也会导致非特异性条带。根据一抗来源选择合适的二抗(HRP标记),按相应比例用抗体稀释液稀释,室温轻摇1-2小时。12、洗涤:二抗孵育结束后,用TBST漂洗膜后再浸洗三次(漂洗后应换容器),每次10min,最后用TBS清洗一次。注:抗体稀释液稀释的一抗或二抗可回收重复利用数次,抗体稀释液稀释后的抗体可4保存约半个月时间。13、显色-辣根过氧化物酶显色试剂盒(生工)溶液A在使用之前,37温育10分钟,以免产生沉淀。在免疫印迹实验中,先将相应的HRP(辣根过氧化物酶)标记的二抗覆盖膜后,在37的情况下,于震荡器摇床上,震荡轻摇一个半

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