不同品种羊血液和肺脏中TLRs基因转录水平差异分析

1、 不同品种羊血液和肺脏中TLRs基因转录水平差异分析 唐沙 陈静 岳筠 李涛 李梅 文明 张双翔 程振涛Summary：【目的】分析不同品種羊Toll样受体（TLRs）基因转录水平的差异性，为揭示TLRs基因转录水平与羊疫病间的关联性提供参考依据。【方法】选取贵州省主要饲养的贵州黑山羊、贵州白山羊、黔北麻羊、波尔山羊和湖羊为研究对象，根据GenBank已公布的TLRs基因序列设计荧光定量PCR特异性扩增引物及TaqMan探针引物，利用TaqMan探针荧光定量PCR检测不同品种羊血液和肺脏中TLR1TLR10基因转录水平差异。【结果】TLR1TLR10基因在不同品种羊血液和肺脏中均有转录表达。不

2、同品种羊血液和肺脏中的TLRs基因转录水平均存在差异性，在波尔山羊血液中TLR2、TLR4和TLR5基因转录水平均极显著低于其他4种羊（P0.01，下同），TLR7和TLR8基因转录水平则极显著低于除黑山羊外的其他3种羊;在白山羊血液中TLR4、TLR7、TLR8和TLR9基因转录水平极显著高于其他4种羊;在湖羊肺脏中TLR2、TLR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平极显著低于其他4种羊，而在黔北麻羊肺脏中TLR5和TLR8基因转录水平极显著高于其他4种羊。此外，在5种羊血液中TLR2、TLR4、TLR7和TLR8基因转录水平均极显著高于其他TLRs基因转录水平;羊肺脏中TLR2、T

3、LR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平相对较高，在贵州白山羊、贵州黑山羊和波尔山羊均表现为极显著高于其他TLRs基因转录水平。【结论】不同品种羊血液和肺脏中TLRs基因转录水平具有差异性，以TLR2、TLR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平相对较高，提示TLRs在不同品种羊机体中发挥着清除病原体及维持机体稳态的作用，而TLRs基因转录水平差异可能是造成不同品种羊对疫病易感差异的原因之一。Key： 羊;Toll样受体（TLRs）;血液;肺脏;转录水平： S858.26 文献标志码： A ：2095-1191（2021）11-3130-09Differential analys

4、is of transcript levels of TLRs genes in the blood and lungs of different breeds of sheepTANG Sha1， CHEN Jing1， YUE Jun2， LI Tao2， LI Mei1， WEN Ming1，3，ZHANG Shuang-xiang2*， CHENG Zhen-tao1 ，3 *（1College of Animal Science， Guizhou University， Guiyang 550025， China; 2Animal Disease Prevention and Con

5、trol Center in Guizhou Province， Guiyang 550008， China; 3Key Laboratory of Animal Diseases and VeterinaryPublic Health in Guizhou Province， Guiyang 550025， China）Abstract：【Objective】To analyze the variability of transcript levels of Toll-like receptors （TLRs） genes in different breeds of sheep， and

6、to provide a reference basis for revealing the association between the transcript levels of TLRs genes and epidemic diseases in sheep. 【Method】In this study， Guizhou black goat， Guizhou white goat，Qianbei Ma goat，Boer goat and Hu sheep， which are the main breeding species in Guizhou Province， were s

7、elected for the study， and fluorescent quantitative PCR specific amplification primers and TaqMan probe primers were designed according to the published TLRs gene sequences in GenBank， and the differences in transcript levels of TLR1-TLR10 genes in blood and lung of different breeds of sheep were de

8、tected by using TaqMan probe fluorescent quantitative PCR.【Result】TLR1-TLR10 genes were transcriptionally expressed in the blood and lungs of different breeds of sheep. Differential transcript levels of TLRs genes were in both blood and lung of different breeds of sheep，the transcript levels of TLR2

9、， TLR4 and TLR5 genes in the blood of Boer goats were extremely significantly lower than those of the other four species （P0.01， the same below），the transcript levels of TLR7 and TLR8 genes were extremely significantly lower than those of the other three species of sheep except black goats. The tran

10、script levels of TLR4， TLR7， TLR8 and TLR9 genes in the blood of white goats were extremely significantly higher than those of the other four species. The transcript levels of TLR2， TLR3， TLR4， TLR5 and TLR8 genes in the lungs of Hu sheep were extremely significantly lower than those of the other fo

11、ur sheep species， while the transcript levels of TLR5 and TLR8 genes were extremely highly significant higher in the lungs of Qianbei Ma sheep than in the other four species. In addition， the transcript levels of TLR2， TLR4， TLR7 and TLR8 genes in the blood of five sheep species were all extremely s

12、ignificantly higher than the transcript levels of other TLRs genes. Transcript levels of TLR2， TLR3， TLR4， TLR5 and TLR8 genes in sheep lungs were relatively high， in Guizhou white goat， Guizhou black goat and Boer goat all showed extremely significantly higher transcript levels than other TLRs gene

13、s. 【Conclusion】The transcript levels of TLRs genes in the blood and lungs of different breeds of sheep are different， with TLR2， TLR3， TLR4， TLR5 and TLR8 genes having relatively high transcript levels. It is suggested that TLRs play a role in the organism of different breeds of sheep in scavenging

14、pathogens and maintaining the homeostasis of the organism， and the difference in the transcription level of TLRs genes may be one of the reasons for the difference in susceptibility of different breeds of sheep to epidemic diseases.Key words： sheep; Toll-like receptors （TLRs）; blood; lung; transcrip

15、tion levelFoundation item： National Natural Science Foundation of China （31660723， 32060786）; Guizhou Provincial Scien-ce and Technology Project （Qiankehejichu20191181， Qiankehezhicheng20182271）0 引言【研究意義】贵州黑山羊、贵州白山羊和黔北麻羊具有生产性能优、适应范围广、抗病性强及耐粗饲等特点，是贵州省养羊业重点发展的地方种质资源（刘彬等，2014）;波尔山羊和湖羊具有适应性好、繁殖力强和耐粗饲等特点

16、，是贵州省引进的外来品种（陈其新等，2012）。近年来，贵州省羊疫病的频发与蔓延极大阻碍其产业的健康发展。Toll样受体（Toll-like receptors，TLRs）作为一类模式识别受体，能通过识别病原微生物保守的分子相关模式而实现对外来病原体的早期识别，具有激活机体天然免疫和调节机体获得性免疫的能力（Vidya et al.，2018;赵飞等，2019）。疫病流行病学调查显示，在应对羊疫病发生时不同品种的易感性存在明显差异，可能与不同品种羊的TLRs基因转录水平差异具有一定的相关性。因此，分析不同品种羊TLRs基因转录水平差异，对探究TLRs基因与羊疫病发生的关联性具有重要意义。【前人

17、研究进展】至今，已知TLRs家族包括TLR1TLR10，共10个成员，针对家畜TLRs的研究多见于马、牛和猪等物种（Wassef et al.，2004;Alvarez et al.，2006;Tirumurugaan et al.，2010）。赵一萍等（2012）对蒙古马不同组织器官中TLR4、TLR2、TLR1和TLR6的转录水平进行检测，结果发现TLRs基因mRNA在蒙古马各组织器官的转录水平差异明显，可能与其识别和抵抗病原体的能力有关。李鹏和王雅春（2019）对猪TLRs的种类、进化特点及免疫相关研究现状进行系统分析，发现猪TLRs广泛分布在各种组织细胞内，且在免疫相关组织或细胞上的数

18、量较多，在抵御病原入侵的过程中发挥重要作用。唐娜等（2020）研究表明，TLRs在水牛组织中也有广泛分布，在脾脏、肺脏和肝脏等组织中均有表达，并证实TLR1、TLR2及TLR4在牛抗病免疫方面发挥重要作用。近年来，TRL2和TLR4作为抗病原体免疫应答功能的家族成员得到广泛关注及深入研究（Barton and Medzhitov，2003;ONeill et al.，2013）。TLR2可调控细胞内的信号传导，且在机体识别病原微生物方面发挥重要作用，在抗菌抗病毒过程中能直接或间接对炎症因子的合成与释放起促进作用，与机体的免疫作用紧密相关（杨庆利和冷静，2021）。TLR4能介导革兰氏阴性菌及其

19、脂多糖（LPS）的宿主反应，还能刺激机体产生相关细胞因子以抵抗病毒侵入，对机体识别病原体和增强抗病性能具有重要意义（赵明明等，2016）。刘洁等（2020）对支原体肺炎小鼠的TLR2/TLR4、MYD88和NF-B20P65表达水平及其相关性进行分析，结果发现TLR2和TLR4表达水平在支原体肺炎小鼠中升高，且参与支原体感染的免疫损伤修复。【本研究切入点】目前，关于羊TLRs基因转录水平的研究尚无详细报道，针对不同品种羊TLRs基因转录水平与其疫病易感性差异的研究更是鲜见报道。【拟解决的关键问题】选取贵州省主要饲养的5种羊为研究对象，基于TaqMan探针荧光定量PCR分析不同品种羊TLR1TL

20、R10基因转录水平的差异性，为揭示TLRs基因转录水平与羊疫病间的关联性提供参考依据。1 材料与方法1. 1 试验材料每个品种羊10份抗凝血液及10份肺脏组织，分别采自健康无病的贵州黑山羊、贵州白山羊、黔北麻羊、波尔山羊和湖羊;各品种羊样本则由贵州省各品种羊规模养殖场提供，3月龄，未注射任何疫苗，且利用PCR和血清学诊断方法（赵萍等，2010;冯杰等，2016）对25只羊进行山羊支原体山羊肺炎亚种（Mccp）、丝状支原体山羊亚种（Mmc）、绵羊肺炎支原体（MO）、布氏杆菌（Brucella）、口蹄疫（FAM）、小反刍兽疫（PPR）、山羊痘（GP）的病原学和血清抗体检测，结果均呈阴性。RNApr

21、ep Pure血液总RNA提取试剂盒购自天根生化科技（北京）有限公司;RNAiso Plus组织总RNA提取试剂和PrimeScript RT Master Mix购自TaKaRa公司。1. 2 引物设计与合成参考GenBank已公布的TLRs基因序列，选择5种羊TLRs基因保守区域序列，使用Primer Premier 5.0分别设计TLR1TLR10基因特异性扩增引物和TaqMan探针引物（表1），并委托生工生物工程（上海）股份有限公司合成。1. 3 RNA提取及cDNA合成参照RNAprep Pure血液总RNA提取试剂盒说明提取5种羊50份血液样本总RNA，同时采用TRIzol法提取5

22、种羊50份肺脏组织总RNA，以PrimeScriptTM RT Master Mix试剂盒制备cDNA。反转录过程：0.12.0 g总RNA加RNase-free ddH2O至8.0 L，再加入5PrimeScriptTM RT Master Mix 2.0 L，混匀。37 反转录15 min，然后85 灭活5 s，-20 保存备用。1. 4 不同品种羊血液及肺脏组织中TLRs基因转录水平检测将已制作好的TLR1TLR10标准质粒稀释成整数倍，再按10倍梯度进行稀释，选取其中5个梯度（107103）绘制标准曲线，并拟合回归方程。采用TaqMan探针荧光定量PCR对不同品种羊的10份血液和肺脏样

23、本cDNA进行TLR1TLR10基因检测，根据回归方程与样品检测得到的Ct，计算出待测样品中的基因拷贝数，分别记录5种羊血液及肺脏组织中TLR1TLR10基因的拷贝数。1. 5 TLRs基因转录水平差异显著性分析运用SPSS 20.0对TLR1TLR10基因在不同品种羊血液及肺脏组织中的转录水平进行差异显著性分析，并以Graphpad Prism 6.4进行绘图。2 结果与分析2. 1 TaqMan探针荧光定量PCR标准曲线TLR1TLR10基因TaqMan探针荧光定量PCR标准曲线见图1，对应的回归方程分别为：yTLR1=-3.359x+41.996（R2=0.9990）;yTLR2=-3.

24、404x+44.028（R2=0.9982）;yTLR3=-3.292x+42.556（R2=0.9998）;yTLR4=-3.227x+46.483（R2=0.9988）;yTLR5=-3.370 x+46.124（R2=0.9995）;yTLR6=-3.220 x+41.190（R2=0.9930）;yTLR7=-3.277x+43.399（R2=0.9985）;yTLR8=-3.233x+43.393（R2=0.9908）;yTLR9=-3.159x+43.389（R2=0.9996）;yTLR10=-3.411x+43.059（R2=0.9992）。2. 2 不同品种羊血液中TLRs基

25、因转录水平差异对5种羊血液中的TLR1TLR10基因转录水平差异进行分析，结果（图2）显示，不同品种羊血液中TLR1基因转录水平排序为贵州白山羊贵州黑山羊波尔山羊黔北麻羊湖羊，TLR2基因转录水平排序为波尔山羊贵州黑山羊湖羊贵州白山羊黔北麻羊，TLR3基因转录水平排序为贵州黑山羊波尔山羊黔北麻羊贵州白山羊湖羊，TLR4基因转录水平排序为波尔山羊黔北麻羊贵州黑山羊湖羊贵州白山羊，TLR5基因转录水平排序为波尔山羊湖羊贵州黑山羊黔北麻羊贵州白山羊，TLR6基因转录水平排序为黔北麻羊湖羊贵州黑山羊波尔山羊贵州白山羊，TLR7基因转录水平排序为波尔山羊贵州黑山羊黔北麻羊湖羊贵州白山羊，TLR8基因转录

26、水平排序为波尔山羊贵州黑山羊黔北麻羊湖羊贵州白山羊，TLR9基因转录水平排序为贵州黑山羊波尔山羊黔北麻羊湖羊贵州白山羊，TLR10基因转录水平排序为黔北麻羊贵州黑山羊湖羊贵州白山羊波尔山羊。在波尔山羊血液中TLR2、TLR4和TLR5基因转录水平均极显著低于其他4种羊（P0.01，下同），TLR7和TLR8基因转录水平则极显著低于除黑山羊外的其他3种羊;在白山羊血液中TLR4、TLR7、TLR8和TLR9基因转录水平极显著高于其他4种羊。2. 3 不同品种羊肺脏中TLRs基因转录水平差异对5种羊肺脏中的TLR1TLR10基因转录水平差异进行分析，结果（图3）显示，不同品种羊肺脏中TLR1基因转

27、录水平排序为贵州黑山羊湖羊黔北麻羊波尔山羊贵州白山羊，TLR2基因转录水平排序为湖羊波尔山羊贵州白山羊黔北麻羊贵州黑山羊，TLR3基因转录水平排序为湖羊黔北麻羊波尔山羊贵州白山羊贵州黑山羊，TLR4基因转录水平排序为湖羊贵州白山羊贵州黑山羊波尔山羊黔北麻羊，TLR5基因转录水平排序为湖羊贵州黑山羊波尔山羊贵州白山羊黔北麻羊，TLR6基因转录水平排序为湖羊贵州白山羊波尔山羊贵州黑山羊黔北麻羊，TLR7基因转录水平排序为黔北麻羊贵州白山羊湖羊贵州黑山羊波尔山羊，TLR8基因转录水平排序为湖羊贵州黑山羊波尔山羊贵州白山羊黔北麻羊，TLR9基因转录水平排序为湖羊贵州白山羊贵州黑山羊波尔山羊黔北麻羊，T

28、LR10基因转录水平排序为黔北麻羊贵州白山羊湖羊贵州黑山羊波尔山羊。在湖羊肺脏中TLR2、TLR3、TLR4、TLR5、TLR6、TLR8和TLR9基因转录水平均低于其他4种羊，其中TLR2、TLR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平极显著低于其他4种羊;而在黔北麻羊肺脏中TLR5和TLR8基因转录水平极显著高于其他4种羊。2. 4 同一品种羊血液中TLRs基因转录水平差异对同一品种羊血液中的TLR1TLR10基因转录水平差异进行分析，结果（图4）显示，在波尔山羊血液中TLR2、TLR4、TLR7、TLR8和TLR10基因转录水平较高，均极显著高于其他TLRs基因转录水平;在其他4种羊

29、血液中TLR2、TLR4、TLR7和TLR8基因转录水平也极显著高于其他TLRs基因转录水平。TLR2、TLR4、TLR7和TLR8基因转录水平在贵州白山羊、贵州黑山羊和湖羊血液中均表现为TLR2基因TLR7基因TLR8基因TLR4基因，在黔北麻羊血液中表现为TLR7基因TLR2基因TLR4基因TLR8基因，在波尔山羊血液中表现为TLR2基因TLR8基因TLR7基因TLR4基因。可见，在黔北麻羊血液中TLR8基因具有相对较高的转录水平，而其他4种羊均以TLR4基因具有相对较高的转录水平。2. 5 同一品种羊肺脏中TLRs基因转录水平差异对同一品种羊肺脏中的TLR1TLR10基因转录水平差异进行

30、分析，结果（图5）显示，羊肺脏中TLR1基因轉录水平相对较低，而TLR2、TLR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平相对较高，在贵州白山羊、贵州黑山羊和波尔山羊均极显著高于其他TLRs基因。TLR2、TLR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平在贵州白山羊肺脏中表现为TLR2基因TLR3基因TLR8基因TLR4基因TLR5基因，在贵州黑山羊肺脏中表现为TLR8基因TLR3基因TLR2基因TLR5基因TLR4基因，在黔北麻羊肺脏中表现为TLR3基因TLR2基因TLR4基因TLR8基因TLR5基因，在波尔山羊肺脏中表现为TLR3基因TLR2基因TLR8基因TLR4基因TLR5基因，在

31、湖羊肺脏中表现为TLR8基因TLR2基因TLR3基因TLR4基因TLR5基因。可见，TLR4基因在贵州黑山羊肺脏中具有相对较高的转录水平，但在其他4种羊肺脏中均表现为TLR5基因具有相对较高的转录水平。3 討论TLRs可激活机体免疫应答并对其免疫功能进行调节，在机体的炎症反应及相关信号传导过程中发挥重要作用（赵飞等，2019）。TLRs在哺乳动物各组织中广泛表达，已证实TLRs可减少和清除机体的细菌性病原感染（Albiger et al.，2010）。TLRs家族对不同组织病原体的识别作用直接受其在该组织中转录水平的影响，即TLRs转录水平决定了动物个体或组织器官应对外源微生物侵染的能力（Me

32、nzies and Ingham，2006;Tirumurugaan et al.，2010）。赵一萍等（2012）对蒙古马不同组织器官的TLR3、TLR7、TLR8和TLR9基因转录水平进行研究，结果发现TLRs基因转录水平在蒙古马各组织器官中存在明显差异，可能与其对病原体的识别和抵抗能力有关;陈亚冰等（2014）对牦牛不同组织TLR3和TLR5基因转录水平进行研究，发现TLRs基因在不同组织器官的转录水平差异明显，推测其与病原体识别有关。本研究采用TaqMan探针荧光定量PCR检测TLR1TLR10基因在贵州黑山羊、贵州白山羊、黔北麻羊、波尔山羊及湖羊等5种羊血液和肺脏组织中的转录水平差，

33、与程晓薇等（2017）检测家禽-连环蛋白基因在不同脏器表达水平应用的绝对荧光定量PCR相同，但与陆珂静等（2019）检测小鼠TLRs mRNA表达量的相对荧光定量PCR不同。与相对荧光定量PCR相比，绝对荧光定量PCR更准确，且特异性更好（朱振洪等，2011）。病原致病性存在种间和种内差异，即不同物种或同物种不同品种对同一病原的感染存在易感差异性，如Mmc在自然状态下只感染山羊，一般不感染绵羊（樊庆德等，2011）。陶岳等（2006）对新疆石河子地区湖羊流行病学进行调查，结果发现传染性胸膜肺炎对不同品种羊的感染性存在明显差异。本研究结果表明，不同品种羊血液和肺脏中的TLRs基因转录水平均存在差

34、异，其中，波尔山羊血液中TLR2、TLR4和TLR5基因转录水平均极显著低于其他4种羊，TLR7和TLR8基因转录水平则极显著低于除黑山羊外的其他3种羊。这与本课题组前期对贵州省山羊支原体肺炎易感性调查发现波尔山羊较其他品种山羊具有更高发病率的结论相吻合，提示波尔山羊对羊支原体肺炎易感性可能受TLRs基因转录水平差异的影响。越来越多研究证实，同一TLRs基因在同科不同属，甚至同种动物间也存在微小的差异（曾爽等，2015）。TLRs基因在不同品种羊中的转录水平具有一定差异性，可能是造成不同品种羊对疫病易感差异的原因之一。本研究发现，在贵州黑山羊、贵州白山羊、黔北麻羊、波尔山羊及湖羊等5种羊血液中

35、TLR2、TLR4、TLR7和TLR8基因具有较高的转录水平，均极显著高于其他TLRs基因转录水平;肺脏中TLR2、TLR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平相对较高，在贵州白山羊、贵州黑山羊和波尔山羊均极显著高于其他TLRs基因转录水平。TLR3具有识别病原双链RNA的能力，云云和黄升海（2007）从转录水平证实TLR3基因显著上调表达受呼吸道合胞病毒感染的影响;TLR5是细菌鞭毛蛋白受体，家禽各组织中TLR5基因表达能促进机体针对病原菌的免疫反应（王琨等，2020）;TLR7和TLR8能促进树突状细胞的分化与迁移，进而产生TNF-、IFN-和IL-2等炎性细胞因子（Crespo e

36、t al.，2013）。在黔北麻羊肺脏中TLR5和TLR8基因转录水平极显著高于其他4种羊，是否与黔北麻羊在抵抗细菌及产生炎性细胞因子方面具有优势尚有待进一步探究。血液作为检测TLRs基因转录水平的样本具有易获得且对动物个体伤害小等优点，而肺脏是羊感染MO和Mmc后发生病变的主要器官。本研究以不同品种羊血液及肺脏为样本进行TLR1TLR10基因转录水平差异检测，结果发现TLR2和TLR4基因在不同品种羊血液及肺脏中均有较高的转录水平，与Lanki等（2018）、石安惠和牟杰（2020）的研究结果一致，进一步证实TLR2和TLR4是免疫应答的重要调控因子，有助于机体抵抗病原菌侵染。可见，TLRs

37、在不同品种羊机体中发挥着清除病原体及维持机体稳态的作用，为探究不同品种羊TLRs基因转录水平与羊疫病的相关性提供了重要的参考依据。4 结论不同品种羊血液和肺脏中TLRs基因转录水平具有差异性，以TLR2、TLR3、TLR4、TLR5和TLR8基因转录水平相对较高，提示TLRs在不同品种羊机体中发挥着清除病原体及维持机体稳态的作用，而TLRs基因转录水平差异可能是造成不同品种羊对疫病易感差异的原因之一。Reference：陈其新，张建红，宋彦军，董济福. 2012. 我国主要肉羊品种肉用性能的初步评价J. 中国草食动物科学，（S1）：357-362. Chen Q X，Zhang J H，Son

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