最新植物生理指标测定方法

1、实验一植物叶绿素含量的测定（分光光度法）（张宪政，1992）一、原理根据叶绿体色素提取液对可见光谱的吸收，利用分光光度计在某一特定波长测定其吸光 度，即可用公式计算出提取液中各色素的含量。根据朗伯一比尔定律，某有色溶液的吸光度 A与其中溶质浓度C和液层厚度L成正比，即A=aCL式中：a比例常数。当溶液浓度以百 分浓度为单位，液层厚度为1cm时，a为该物质的吸光系数。各种有色物质溶液在不同波长 下的吸光系数可通过测定已知浓度的纯物质在不同波长下的吸光度而求得。如果溶液中有数 种吸光物质，则此混合液在某一波长下的总吸光度等于各组分在相应波长下吸光度的总和。 这就是吸光度的加和性。今欲测定叶绿体色素

2、混合提取液中叶绿素a、b和类胡萝卜素的含量， 只需测定该提取液在三个特定波长下的吸光度A，并根据叶绿素a、b及类胡萝卜素在该波长 下的吸光系数即可求出其浓度。在测定叶绿素a、b时为了排除类胡萝卜素的干扰，所用单色 光的波长选择叶绿素在红光区的最大吸收峰。高等植物中叶绿素有两种：叶绿素a和b，两 者均易溶于乙醇、乙醚、丙酮和氯仿。叶绿素a和叶绿素b的比值反映植物对光能利用效率 的大小，比值高则大，则反之。二、材料、仪器设备及试剂试剂：1） 95%乙醇（或80%丙酮）三、实验步骤称取剪碎的新鲜样品0.20.3g，加乙醇10ml，提取直至无绿色为止。把叶绿体色素提取 液倒入光径1cm的比色杯内，以9

3、5%乙醇为空白，在波长663nm和645nm下测定吸光度。四、实验结果按计算丙酮法（Arnon法）【可以用于丙酮乙醇混合法和80%丙酮提取法的计算】叶绿素 a 的含量（mg/g） = （12.71xOD663 - 2.59xOD645） V/1000*W叶绿素 b 的含量（mg/g） =（22.88OD645 - 4.67OD663） V/1000*W叶绿素 a、b 的总含量（mg/g） =（8.04xOD663 +20.29xOD645） V/1000*W按Inskeep公式叶绿素 a 的含量(mg/g) = (12.63xOD663 - 2.52xOD645) V/1000*W 叶绿素 b

4、 的含量(mg/g) =(20.47OD645 - 4.73OD663) V/1000*W叶绿素 a、b 的总含量(mg/g) =(7.90 xOD663 + 17.95xOD645) V/1000*W 注：1、叶绿素a和叶绿素b的比值反映植物对光能利用率【1】比如阳生植物叶绿素a和叶绿素b的比值较大【2】阴生植物叶绿素a和叶绿素b的比值较小2、丙酮熔点:-94C ；沸点:56.48C ；是一种无色透明液体，有特殊的辛辣气味易溶于水和甲醇、乙醇、乙醚、氯仿、毗啶等有机溶剂.下一步实验方法比较【1】95%乙醇直接提取（/）【2】95%乙醇加热提取（冯瑞云，1985）【3】无水酒精和80%丙酮等体

5、积混合提取实验二、不良环境对植物细胞膜的伤害（张宪政，1992）原理植物组织在受到各种不利的环境条件（如干旱、低温、高温、盐渍和大气污染）危害时， 细胞膜的结构和功能首先受到伤害，细胞膜透性增大。若将受伤害的组织浸入无离子水中， 其外渗液中电解质的含量比正常组织外渗液中含量增加，组织受伤害越严重，电解质含量增 加越多。用电导仪测定外渗液电导率的变化，可反映出质膜受伤害的程度。在电解质外渗透 的同时，细胞内可溶性有机物也随之渗出，引起外渗液可溶性糖、氨基酸、核苷酸等含量增 加，氨基酸和核苷酸对紫外光有吸收，对紫外分光光度计测定受伤害组织外渗液消光值，同 样可反映出质膜受伤害的程度。用电导仪法和紫

6、外法测定结果有很好的一致性。二、方法步骤1、取样及处理采用电导法（张宪政，1992）：将选取的幼嫩叶片和成熟叶片剪下，包在密封袋内置于冰盒 中带回实验室。将新鲜的叶样先用自来水轻轻冲洗叶片，除去表面沾污物，再用去离子水冲 洗12次，用滤纸轻轻吸干叶片表面水分，称0.20.3 g并剪成切段，放入50 mL带塞试管 中，加入20 mL去离子H2O,浸没样品45 h，各处理浸泡时间和测定温度一致，在室温下 进行，用DDs11型电导仪测其电导率，然后沸水浴15 min，冷却至室温再测一次总电导率 值。以相对电导率表示细胞质膜透性大小。2、计算：植物组织浸泡的电导率，特称外渗电导率，此测定方法称外渗电导

7、率法。（1）外渗电导率K （us/cm*g） =SQ=测定电导率/称取质量或 K （us/cm*g*ml） =SQ=测定电导率/称取质量*量取体积（2）相对电解质渗出率.电解质渗出率（%） = L1 （浸泡液电导率）/ L2 （煮沸后电导率）X100 电解质渗出率（%）= L1（浸泡液电导率）-本底电导率/ L2 （煮沸后电导率）-本底电导率X100 式中：L1：组织杀死前外渗液的电导值；L2组织杀死后外渗液的电导值。注：1、事先测定水的电导率2、用吸水纸吸干探头的水分实验三 植物体内游离脯氨酸含量的测定一、目的在逆境条件下（旱、热、冷、冻），植物体内脯氨酸的含量显著增加，植物体内脯氨酸含 量

8、在一定程度上反映了植物的抗逆性，抗旱性强的品种积累的脯氨酸多。因此测定脯氨酸含 量可以作为抗旱育种的生理指标。另外，由于脯氨酸亲水性极强，能稳定原生质胶体及组织 内的代谢过程，因而能降低冰点，有防止细胞脱水的作用。在低温条件下，植物组织中脯氨 酸增加，可提高植物的抗寒性，因此，亦可作为抗寒育种的生理指标。二、原理磺基水杨酸对脯氨酸有特定反应，当用磺基水杨酸提取植物样品时，脯氨酸便游离于磺 基水杨酸溶液中。然后用酸性茚三酮加热处理后，茚三酮与脯氨酸反应，生成稳定的红色化 合物，再用甲苯处理，则色素全部转移至甲苯中，色素的深浅即表示脯氨酸含量的高低。在 520nm波长下测定吸光度，即可从标准曲线上

9、查出脯氨酸的含量。三、材料、仪器及试剂试剂及配制：（1）2.5%酸性茚三酮溶液配制：将1.25g茚三酮溶于30ml冰醋酸和20ml 6mol - L-1 磷酸中（原液稀释2.3倍），搅拌加热（70C ）溶解，贮于4C冰箱中，2-3日有效。（2）3%磺基水杨酸配配制：3.496g磺基水杨酸加蒸馏水溶解后定容至100ml。（3）10p g - ml-1脯氨酸标准母液配制：精确称取20mg脯氨酸，倒入小烧杯内，用少 量蒸馏水溶解，再倒入200ml容量瓶中，加蒸馏水定容至刻度（为100. g - ml-1脯氨酸母 液），再吸取该溶液10ml，加蒸馏水稀释定容至100ml，即为10. gml-1脯氨酸标

10、准液。四、实验步骤1、脯氨酸标准曲线的制作1.1取6支试管，编号，按下表配制每管含量为012. g的脯氨酸标准液。加入表中试 剂后，置于沸水浴中加热30min。取出冷却。以去离子水溶液为空白对照，在520mm波长处 测定吸光度（A）值。试剂管号01234510gdl脯氨酸标准液（ml）00.20.40.60.81.0蒸馏水（ml）21.81.61.41.21.0冰醋酸（ml）2222223%磺基水杨酸2222222.5%酸性茚三酮（ml）444444每管脯氨酸含量（.g）02468101.3标准曲线的绘制以15号管脯氨酸含量为横坐标，吸光度值为纵坐标，绘制标准曲线。样品的测定2.1脯氨酸的提取

11、称取0.20.3g叶片于20ml试管+ 10ml 3%磺基水杨酸溶液一沸水浴10min （提取过 程中要经常摇动）一冷却过滤于干净的试管中一脯氨酸提取液。2.2测定吸取酶提取液2ml + 2ml H2O + 2ml冰醋酸+ 4ml 2.5%酸性茚三酮一沸水浴30min一溶 液呈红色一冷却一取上层液于比色杯520mm处测定吸光度（A）值。五、计算结果从标准曲线上查出样品测定液中脯氨酸的含量，按下公式计算样品中脯氨酸含量：XX提取液总量（ml）脯氨酸含量（pgg-1Fw） =样品鲜重（g）X测定时提取液用量（ml）公式中：X 从标准曲线中查得的脯氨酸含量（pg）实验四 植物体内丙二醛含量的测定一、

12、原理丙二醛（MDA）是由于植物官衰老或在逆境条件下受伤害，其组织或器官膜脂质发生过氧 化反应而产生的。它的含量与植物衰老及逆境伤害有密切关系。测定植物体内丙二醛含量， 通常利用硫代巴比妥酸（TBA ）在酸性条件下加热与组织中的丙二醛产生显色反应，生成红棕色 的三甲川（3、5、5三甲基恶唑2、4二酮），三甲川最大的吸收波长在532nm。但是测定 植物组织中MDA时受多种物质的干扰，其中最主要的是可溶性糖，糖与硫代巴比妥酸显色反 应产物的最大吸收波长在450nm处，在532nm处也有吸收。植物遭受干旱、高温、低温等逆 境胁迫时可溶性糖增加，因此测定植物组织中丙二醛与硫代巴比妥酸反应产物含量时一定要

13、 排除可溶性糖的干扰。此外在532nm波长处尚有非特异的背景吸收的影响也要加以排除。低 浓度的铁离子能显著增加硫代巴比妥酸与蔗糖或丙二醛显色反应物在532、450nm处的吸光度 值，所以在蔗糖、丙二醛与硫代巴比妥酸显色反应中需要有一定的铁离子，通常植物组织中 铁离子的含量为100 300. gg1Dw，根据植物样品量和提取液的体积，加入Fe3 +的终浓 度为0.5nmol L1。在532nm、600nm和450nm波长处测定吸光度值，即可计算出丙二醛 含量。二、实验步骤提取采用硫代巴比妥酸显色法(赵世杰等，2002)。称取0.20.3 g样品，口 10%三氯乙酸2mL 和少量石英砂，研磨至匀浆

14、，再加8ml三氯乙酸进一步研磨，匀浆后4000 rpm，离心10min。显色取上清液5 mL，叫.6% TBA 5 mL，混合后在100C水浴上煮沸30 min，迅速在冰浴上冷 却后再离心一次。分别测定上清液在450nm、532 nm和600 nm处的吸光度值，方法一：MDA 质量摩尔浓度(nmol/g)= ( A532-A600)xVZxV1/(0.155xWxV2)式中：VZ:反应液总量(4 mL)；V1:提取液体积(10 mL)；V2:测定用用提取液量(2 mL)；W:取样叶鲜重(g)0.155:为MDA的消光系数(nmol/l)方法二：方程组：A450= (85.4X10 3) C 糖

15、(A532A600) = (155X10 3) CMDA+ (7.4X103) C 糖解得：A450C 糖=11.71A450 (mmol L1)85.4X103Cmda= 6.45 (A532A600)0.56A450 (M molLD公式中：A450在450nm波长下测得的吸光度值A532在532nm波长下测得的吸光度值A600在600nm波长下测得的吸光度值* 1.55X105为摩尔比吸收系数C糖、CMDA分别是反应混合液中可溶性糖、MDA的浓度。按下式计算提取液中MDA浓度反应液体积(ml)CMDA X1000提取液中MDA浓度(.mol ml1)=测定时提取液用量(ml)2.按下式计

16、算样品中MDA含量提取液中MDA浓度（|J mol-ml-1）X提取液总量（ml）MDA 含量（p mol g1 Fw）=植物组织鲜重（g）试剂：1、10%三氯乙酸：称取三氯乙酸55.5556g加水溶解定容至500ml2、0.6%硫代巴比妥酸（用10%三氯乙酸配制）：称0.6707g TBA用少量1mol/L氢氧化 钠溶解后加10%TCA溶解定容至100ml （4C贮存）实验五、SOD活力测定（NBT还原法）植物叶片在衰老过程中发生一系列生理生化变化，如核酸和蛋白质含量下降、叶绿素降 解、光合作用降低及内源激素平衡失调等。这些指标在一定程度上反映衰老过程的变化。近 来大量研究表明，植物在逆境胁

17、迫或衰老过程中，细胞内自由基代谢平衡被破坏而有利于自 由基的产生。过剩自由基的毒害之一是引发或加剧膜脂过氧化作用，造成细胞膜系统的损伤， 严重时会导致植物细胞死亡。自由基是具有未配对价电子的原子或原子团。生物体内产生的 自由基主要有超氧自由基（O2）、羟自由基（OH.）、过氧自由基（ROD）、烷氧自由基（RO） 等。植物细胞膜有酶促和非酶促两类过氧化物防御系统，超氧化物歧化酶（SOD）、过氧化氢 酶（CAT）、过氧化物酶（POD）和抗坏血酸过氧化物酶（ASA-POD）等是酶促防御系统的重要 保护酶。抗坏血酸（VC）、VE和还原型谷胱甘肽（GSH）等是非酶促防御系统中的重要抗氧化 剂。SOD、C

18、AT等活性氧清除剂的含量水平和O2 、H2O2、OH.和O2等活性氧的含量水平可 作为植物衰老的生理生化指标。超氧自由基（O2.）是生物细胞某些生理生化反应常见的中间产物。自由基是本身带 有不成对价电子的分子、原子、原子团或离子，化学性质非常活泼，是活性氧的一种。如果 细胞中缺乏清除自由基的酶时，机体就会受到各种损伤。超氧化物歧化酶（ Superoxide Dismutase），简称SOD，能通过歧化反应清除生物细胞中的超氧自由基（O2.），生成H2O2 和O2。H2O2由过氧化氢酶（CAT）催化生成H2O和O2，从而减少自由基对有机体的毒害。一、原理超氧物歧化酶（superoxidedism

19、utase， SOD）普遍存在于动、植物体内，是一种清除超 氧阴离子自由基的酶。本实验依据超氧物歧化酶抑制氮蓝四唑（NBT ）在光下的还原作用来确 定酶活性大小。在有氧化物质存在下，核黄素可被光还原，被还原的核黄素在有氧条件下极 易再氧化而产生O2-，可将氮蓝四唑还原为蓝色的甲腙，后者在560nm处有最大吸收。而SOD 可清除O2-，从而抑制了甲腙的形成。于是光还原反应后，反应液蓝色愈深，说明酶活性愈 低，反之酶活性愈高。据此可以计算出酶活性大小。二、试剂（一）试剂（1） 0.2 mol/L pH7.8 磷酸钠（Na2HPO4-NaH2PO4 ）缓冲液：A 液（0.2 mol/L NaH2PO

20、4 溶液）：准确称取 NaH2PO42H2O （MW=156.01） 15.715g 于50mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入500mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分 混匀。4C冰箱中保存备用。B 液（0.2 mol/L Na2HPO4 溶液）：准确称取 Na2HPO412H2O（MW=358.14） 71.63g 于 100mL小烧杯中，用少量蒸馏水溶解后，移入1000mL容量瓶中用蒸馏水定容至刻度，充分混 匀。4C冰箱中保存备用。取上述A液34mL与B液366mL充分混匀后即为0.2mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液。4C 冰箱中保存备用。0.05 mol/L pH7.8磷酸钠缓冲

21、液取0.2 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液250mL，移入1000 mL容量瓶中用蒸馏水定容至 刻度，充分混匀。4C冰箱中保存备用。130mmol/L蛋氨酸(Met)磷酸钠缓冲液准确称取L-蛋氨酸(C5H11NO2S, MW=149.21) 0.9699g于小烧杯中，用少量0.05 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液溶解后，移入50mL容量瓶中并用0.05 mol/L pH7.8的磷酸钠缓冲液 定容至刻度，充分混匀(现用现配)。【溶于水，3.3g/100ml 25C，不溶于有机溶剂】4C保 存可用12d.750p mol/L氮蓝四唑溶液：称取0.03066g NBT用磷酸缓冲液定容至5

22、0ml，避光4C保 存，先用现配.100p mol/L EDTA-Na2 溶液：称取 0.03721g EDTA-Na2 用水定容至 1000ml【称取 7.442 g EDTA-Na2用水定容至200ml，吸取1ml用水定容1000ml】20p mol/L核黄素溶液：称取0.0753g核黄素用蒸馏水定容至1000ml避光保存【称取 1.8825g核黄素用少量NaOH溶解并用蒸馏水定容至25ml，吸取1ml用水定容1000ml】。4C 保存8-10天。三、实验步骤酶液提取取植物叶片0.2g0.3g于预冷的研钵中，加2ml预冷的0.05 mol/L pH7.8磷酸缓冲液 在冰浴上研磨成浆，加缓冲

23、液使终体积为10ml。于4000rpm下离心15min，上清液即为SOD 粗提液。2.显色反应取试管3支，1支为测定管，另2支为对照管，按下列加入一依次加入各溶液:名称样品管对照管1对照管250mmol/L磷酸缓冲液(ml)5.05.05.0130mmol/L Met 溶液（ml）0.30.30.3750. mol/L NBT 溶液（ml）0.30.30.3100. mol/L EDTA-Na2 液（ml）1.01.01.0去离子水(ml)2.02.02.020p mol/L 核黄素（ml）0.30.30.30.3 (酶液)0.3 (缓冲液)0.3 (缓冲液)混匀后将1支对照管置暗处，其它各管

24、于4000Lx日光下反应20min，然后立即遮光，以 遮光管为对照调零，于560nm下测定光密度。(要求各管受光情况一致，温度高时间缩短，低 时延长)。3.SOD活性测定与计算至反应结束后，以不照光的对照管做空白，分别测定其它各管的吸光度。四、结果计算已知SOD活性单位以抑制NBT光化还原的50%为一个酶活性单位表示，按下式计算SOD活 性。SOD 总活性=(Ack-AE)XV/(AckX0.5XWXVt)= (Ack-AE)/(AckX0. 015XW)SOD比活力=SOD总活性/蛋白质含量上式中：SOD总活性以每克鲜重酶单位表示;表示SOD比活力：单位以酶单位/ mg蛋白Ack：照光对照管

25、的吸光度AE：样品管的吸光度V：样品液总体积（ml）Vt测定时样品用量（ml）实验六、过氧化物酶活性测定一、试验目的：过氧化物酶是植物体内普遍存在的活性较高的一种酶，他与呼吸作用、光合作用以及生 长素的氧化等都有密切关系。在植物生长发育过程中他的活性不断发生变化，因此测量这种 酶，可以反映某一时期植物体内代谢的变化。通过本实验了解过氧化物酶的作用，掌握常用 的测定过氧化物酶的方法一一愈创木酚法。二、实验原理：在过氧化物酶催化下，双氧水将愈创木酚氧化成茶褐色产物，此产物在X470 nm处有最 大吸收峰，故可以通过测其吸光度的变化测定过氧化物酶的活性。三、实验试剂1、0.05 mol/L PH 7

26、.0的磷酸缓冲液：0.2M A 液（Na2HPO4）61ml 和 0.2M B 液（NaH2PO4）39ml 混合 100ml，用去离子 水定容400ml2、0.05 mol/L愈创木酚溶液：取0.6207g定容100ml1%愈创木酚溶液：吸取1毫升愈创木酚，加入少量95%酒精溶解，用水定容100ml， 放于棕色试剂瓶中保存备用3、2%双氧水溶液:：取30% H2O2 10ml用去离子水定容150ml4、反应混合液取50mmol/L磷酸缓冲液（pH7.0）30mL，2%过氧化氢10mL，1%愈创木酚10mL混合。四、操作步骤酶液提取：清洗干净叶片擦干，称取0.20.3 g叶片，剪成小片，放入研

27、钵加入适 量10%PVPP （除去酚类物质）、石英沙、及2ml 50mmol的PH 7.0（5.5-7.5）的磷酸缓冲液PBS （0.02-0.1mmol ）进行研磨，磨碎后在加入8mlPBS溶液洗涤研钵一并装入离心管内，4C下 4000rmin-1离心15min，收集上清液4C保存备用。显色反应类别对照管样品管反应液3.0 mL温度25C缓冲液0.5 mL酶液0.5 mL测定波长470nm五、计算过氧化物酶活性（左OD470/（min.g） = （AA470XVT） / （WXVSX001Xt）式中：人彳?。为反应时间内吸光度的变化，W为叶片鲜重g，t为反应时间min，Vt为提取 酶液总体积

28、ml，Vs为测定时取用的酶液体积ml。实验19植物组织中可溶性蛋白质含量的测定I考马斯亮蓝G -50染色法一、原理考马斯亮蓝G - 250 （ Coomassie brilliant blue , G-250 ）法是利用蛋白质-染料结 合的原理，定量地测定微量蛋白质浓度的快速、灵敏的方法。考马斯亮蓝G-250存在着两种不同的颜色形式，红色和蓝色。它和蛋白质通过范德瓦尔 键结合，在一定蛋白质浓度范围内，蛋白质和染料结合符合比尔定律。此染料与蛋白质结合 后颜色由红色形式转变成蓝色形式，最大光吸收由465 nm变成595 nm，通过测定595 nm 处光吸收的增加量可知与其结合蛋白质的量。蛋白质和染

29、料结合是一个很快的过程，约2 min即可反应完全，呈现最大光吸收，并可 稳定1h，之后，蛋白质-染料复合物发生聚合并沉淀出来。此法灵敏度高（比Lowry法灵 敏4倍），易于操作，干扰物质少，是一种比较好的定量法。其缺点是在蛋白质含量很高时 线性偏低，且不同来源蛋白质与色素结合状况有一定差异。二、实验材料、试剂与仪器设备（一）试剂标准蛋白质溶液（100瞄/mL牛血清白蛋白）：称取牛血清蛋白25 mg，加水溶解 并定容至100 mL，吸取上述溶液40 mL，用蒸馏水稀释至100 mL即可。考马斯亮蓝试剂：称取100 mg考马斯亮蓝G-250，溶于50 mL 90 %乙醇中， 加入100 mL 85

30、%（ W/V）的磷酸，再用蒸馏水定容到1000 mL，贮于棕色瓶中。常温下 可保存一个月。三、实验步骤标准曲线的绘制取6支试管，按表26-1加入试剂，摇匀，向各管中加入5 mL考马斯亮蓝试剂，摇匀， 并放置5 min左右，以0号试管为空白对照，在595 nm下比色测定吸光度。以蛋白质含 量为横坐标，以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。试剂管号012345标准蛋白质（mL ）00.200.400.600.801.00蒸馏水量（mL ）1.000.800.600.400.200蛋白质含量（瞄）020406080100样品测定（1 ）样品提取称取鲜样0.250.5 g，用5 mL蒸馅水或缓冲液研磨成匀浆后

31、， 3000 r/min离心10 min，上清液备用。（2 ）吸取样品提取液0.3 mL （视蛋白质含量适当稀释），放入试管中（每个样品重 复2次），加入5 mL考马斯亮蓝试剂，摇匀，放置2 min后在595 nm下比色，测定吸光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。四、结果计算样品中蛋白质的含量=xlOOO（mg/g）式中：C查标准曲线值，曜。T提取液总体积，mL。WF样品鲜重,g。S测定时加样量,mL。注意点：1，考马斯亮蓝G-250所配溶液不稳定，所以每次实验都必须新配，且必须新做标准曲线;考马斯亮蓝G-250配制完毕，如果发现溶液中有絮状沉淀，可以试用滤纸过滤后使用， 如果实验中发现使用过

32、滤后的考马斯亮蓝G-250溶液在与样品接触后短时间内便又发生絮 凝，基本上推测该考马斯亮蓝G-250过期（比较容易出现）。实验七、过氧化氢酶的活性测定一一高锰酸钾滴定法【原理】过氧化氢酶（CAT ）属于血红蛋白酶，含有铁，它能催化过氧化氢分解为水和分子氧， 在此过程中起传递电子的作用，过氧化氢则既是氧化剂又是还原剂。据此，可根据h2o2的消耗量或O2的生成量测定该酶活力大小。在反应系统中加入一定 量（反应过量）的h2o2溶液，经酶促反应后，用标准高锰酸钾溶液（在酸性条件下）滴定多 余的h2o25HO+2KMnO+4HSO _ 5O +2KHSO +8H O+2MnSO2 2424 2424即可

33、求出消耗的H2O2的量。【试剂】【1】3M H2SO4:吸取浓硫酸80ml用去离子水定容至500ml【2】0.2mol/L磷酸缓冲液pH7.0；【3】0.1mol/L高锰酸钾标准液：称取KMnO4 （AR） 16 g，用新煮沸冷却蒸馏水配制成 1000ml，用0.1mol/L草酸溶液标定；0.1mol/L H2O2:市售 30% H2O2 大约等于 17.6mol/L，取 30% H2O2 溶液 4.87ml，稀释至 500ml，用标准0.1mol/ KMnO4溶液（在酸性条件下）进行标定；【实验步骤】1、酶液提取 取叶片0.20.3g加入2ml pH7.0的磷酸缓冲液少量研磨成匀浆，在加缓

34、冲液定容转移至10ml后转入离心管中，4000rpm离心15min，上清液即为过氧化氢酶的粗提 液。2.滴定反应管号对照管样品管粗酶液（ml）0.20.23mol/L H2SO4 (ml)50PH 7.0磷酸缓冲液1.81.80.1mol/L H2O2 (ml)55条件加入H2O2立即计时于35C恒温水浴中保温3min3mol/L H2SO4 (ml)05用01mol/L KMnO4标准溶液滴定H2O2，至出现粉红色（在？0min内不消失）为终点所用KMnO4体积（ml）|AB【结果计算】：酶活性用每克鲜重样品1min内分解H2O2的毫克数表示:（A - B） x VT x 1.7酶活（岫2。

35、/即. min）= gw x V X t一式中A一对照KMnO4滴定毫升数；B一酶反应后KMnO4滴定毫升数；VT一酶液总量（ml）；V1反应所用酶液量（ml）;W一样品鲜重（g） ；1.71ml 0.1mol/L 的 KMnO4 相当于 1.7mg H2O2。过氧化氢酶的活性测定一一紫外吸收法一、原理H2O2在240nm波长下有强烈吸收，过氧化氢酶能分解过氧化氢，使反应溶液吸光度（A240 随反应时间而降低。根据测量吸光率的变化速度即可测出过氧化氢酶的活性。二、实验步骤1、 酶液提取 取叶片0.20.3g加入2ml pH7.0的磷酸缓冲液少量研磨成匀浆，在加缓 冲液定容转移至10ml后转入离

36、心管中，4000rpm离心15min,上清液即为过氧化氢酶的粗提 液。4C下保存备用。测定：取10ml试管3支，其中1号为样品测定管，1号为空白管，按表40-2顺序加入 试剂。表40-2紫外吸收法测定H2O2样品液配置表管号样品管对照管粗酶液（ml）0.2（煮死酶液）0.2pH7.0 磷酸(ml)1.51.5蒸馏水（ml）1.01.025C预热后，逐管加入05ml 0.1mol/L的H2O2，每加完一管立即记时，并迅速倒入石英比色杯中，240nm下测定吸光度，每隔1min读数1次，共测4min,待3支管全部测定完后， 按下式计算酶活性。结果计算：以1min内A240减少0.1的酶量为1个酶活单位(u)。过氧化氢酶活性(u/gFW/min) = 人240 X Vt式中 A240= AS0-以$1 ； A2)0.1 x V1 x t x FWAS0加入煮死酶液的对照管吸光值；AS1 AS2一样品管吸光值；Vt粗酶提取液总体积(ml)；V1测定用粗酶液体积(ml)；FW一样品鲜重(g)；0.1一A240每下降0.1为1个酶活单位(u)；t一加过氧化氢到最后一次读数时间(min)。高锰酸钾滴定液的配制和标定1 .高锰酸钾滴定液(0.1mol / L )的配制市售高锰酸钾常含有少量MnO2等杂质，蒸馏水也常有微量的灰尘，溶液在配制初期不 够稳定，浓度常降低，因此