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文档简介
1、L o g o微生物来源的微生物来源的SOD制备与活力测定制备与活力测定1SOD研究背景研究背景v 一种金属酶类一种金属酶类v 与细胞的需氧代谢密切相关与细胞的需氧代谢密切相关v 存在广泛存在广泛v大量数据表明,大量数据表明, 所有需氧细胞包括最简单的微生所有需氧细胞包括最简单的微生物体内都含有物体内都含有SOD。迄今人们已分别从细菌、真菌。迄今人们已分别从细菌、真菌, 原原生动物生动物, 藻类藻类, 昆虫昆虫, 植物如茶叶植物如茶叶, 大豆大豆, 小麦叶片和小小麦叶片和小白菜等)白菜等), 动物如肝脏、血液)动物如肝脏、血液) 等生物材料中分离等生物材料中分离得到得到SOD。2v 根据根据
2、SOD分子中所含的金属离子不同,可大致分为以下分子中所含的金属离子不同,可大致分为以下三类:三类:Cu/ Zn-SOD, Mn-SOD, Fe-SOD。此外,有研究表。此外,有研究表明,在牛肝中还发现一种明,在牛肝中还发现一种Co/Zn- SOD。v 三类三类SOD的性质和存在的性质和存在SOD研究背景研究背景 3v 不同生物材料SOD含量差别很大, 既使同一生物, 不同组织中的SOD含量差别也各不相同。v 其中以动物肝脏组织中SOD含量最为丰富。v 动物来源的SOD制备技术也最为成熟,主要是从动物肝脏和血液中提取。v 价廉而富含SOD的植物组织和微生物也是制备SOD的理想原料。v v SOD
3、研究背景研究背景4v SODSOD是需氧微生物在有氧环境中生存的必要条件,细菌是需氧微生物在有氧环境中生存的必要条件,细菌SODSOD主要是主要是Mn-SODMn-SOD和和Fe-SODFe-SOD,也有少量细菌中含有,也有少量细菌中含有Cu/ Zn-SODCu/ Zn-SOD。v 本实验拟用伤寒沙门氏菌提取本实验拟用伤寒沙门氏菌提取SODSOD微生物细胞中微生物细胞中SOD的提取纯化工艺的提取纯化工艺5v 提取思路提取思路培养细菌培养细菌微生物细胞中微生物细胞中SOD的提取纯化工艺的提取纯化工艺破壁破壁离心收上清离心收上清盐析盐析溶解目的蛋白溶解目的蛋白阴离子离子交阴离子离子交换色谱换色谱洗
4、脱洗脱6SOD等电点:4-5SOD存在于胞浆微生物细胞中微生物细胞中SOD的提取纯化工艺的提取纯化工艺v 具体操作具体操作v v 伤寒沙门氏菌伤寒沙门氏菌37,120r/min摇床培养24h4000r/min 离心 5min收集细菌55% 硫酸铵盐析 80%硫酸铵盐析洗3次,悬浮于其中菌体重悬液菌体重悬液超声波法破碎细胞透析液透析液3000r/min 0.05mol/L pH7.8 磷酸钾缓冲液分级沉淀蛋白沉淀蛋白沉淀20mmol/L 磷酸盐缓冲液溶解透析至外液不含NH4+上清液上清液7接种于LB培养基微生物细胞中微生物细胞中SOD的提取纯化工艺的提取纯化工艺依次用不同浓度pH7.8的磷酸钾缓
5、冲液洗脱20mmol/L 100ml, 30mmol/L 100ml, 30-100mmol/L 200ml流速为0.5ml/min洗脱液洗脱液旋转蒸发仪浓缩至1/3倍体积浓缩液浓缩液过DEAE纤维素层析柱DE-32)DE-32 预先用10mmol/L磷酸钾缓冲液平衡10-100mmol/L 磷酸钾缓冲液100ml活性产物活性产物-30保管保管8透析液透析液过DEAE纤维素层析柱DE-32)DE-32 预先用20mmol/L磷酸钾缓冲液平衡洗脱v 含量测定含量测定-分光光度法分光光度法v Mn-SOD与与Fe-SOD在在280nm有最大吸收有最大吸收v 测样品测样品A280,参考标准酪蛋白在,
6、参考标准酪蛋白在A280处做出的标准曲处做出的标准曲线,确定浓度。线,确定浓度。v SOD酶活测定酶活测定-邻苯三酚自氧化法邻苯三酚自氧化法v SOD存在下,体系中邻苯三酚自氧化速率降低,自氧存在下,体系中邻苯三酚自氧化速率降低,自氧化中间产物积累减少。化中间产物积累减少。v 连续测定体系的连续测定体系的A420。v 通过与不含通过与不含SOD的空白组自氧化速率控制在的空白组自氧化速率控制在0.060A/min做比较,计算出自氧化速率在做比较,计算出自氧化速率在0.030A/min时时的酶量,即为一个酶活力单位。的酶量,即为一个酶活力单位。v SOD含量测定与活力测定含量测定与活力测定9讨论讨论v 优点:本方法采用硫酸铵分级沉淀提取法,避免了因有优点:本方法采用硫酸铵分级沉淀提取法,避免了因有机溶剂处理使机溶剂处理使SOD失活的缺点。而且可以同时分离得到失活的缺点。而且可以同时分离得到Mn-SOD与与Fe-SOD。v 缺乏:整个过程较为复杂,至少需要缺乏:整个过程较为复杂,至少需要2-3次上柱层析次上柱层析v 总结:总结: 从微生物中提取从微生物中提取SOD主要受以下三个方面影响:主要受以下三个方面影响:提取方法、菌龄、菌种。提取
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