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文档简介

1、microRNA在肿瘤发生发展中的作用*【摘要】 microRNA(miRNA)作为近年来发现的一种非编码RNA,广泛存在于动植物细胞中,与肿瘤和肿瘤干细胞关系密切,功能复杂,通过对靶mRNA的降解或对靶mRNA翻译的阻遏,起到肿瘤抑制或肿瘤促进的作用,本文对此做一综述。【关键词】miRNA,非编码RNA,癌症,肿瘤发生1 microRNA简介1.1 microRNA的发现和命名microRNA(miRNA)是一类由长约2123个核苷酸构成的非编码单链RNA分子,它们广泛存在于动植物细胞中。miRNA最早于1993年发现,Lee等1在线虫研究中发现一个小分子RNA:Lin-4。到目前为止,共发

2、现并且确认了超过600种人类miRNA的存在2。除最早发现的Lin-4和Let-7外,其他miRNA都用miR-#-#表示,其中miR表示miRNA,第一个#表示其序号,第二个#表示同一个miRNA基因能够转录出的不同转录本,如miR-6转录出3个miRNA则分别记为miR-6-1、miR-6-2和miR-6-3。1.2 miRNA的生物合成与生物学作用在细胞核内,miRNA的基因在RNA转录酶的作用下生成miRNA的原始转录本pri-miRNA,然后pri-miRNA在RNA聚合酶III的作用下,剪切miRNA前体(pre-miRNA)。pre-miRNA进一步切割产生成熟的miRNA,发挥

3、下游生物学功能。Pasquinelli等3在对线虫的研究中发现,22nt RNA通过与mRNA的3UTR区不完全互补结合,来抑制该mRNA的翻译。Yekta等4在研究中发现了与Pasquinelli不同的现象,miRNA与靶mRNA完全互补结合,并最终导致了靶mRNA的水解。提示miRNA主要是通过两种机制调节基因表达:对靶mRNA的降解或对靶mRNA翻译的阻遏;采用哪种机制取决于miRNA与靶mRNA的互补程度:若miRNA与mRNA两者完全互补,miRNA就引导靶mRNA的特异性溶解;若两者不完全互补则引起翻译抑制5-6。2 miRNA与肿瘤2.1 有抑癌基因作用的miRNA2.1.1 m

4、iR-15/miR-16最初认为miRNA抑制肿瘤的原因之一是Cimmino等7发现miR-15/miR-16-1可以通过调节Bcl-2基因诱导凋亡,而且Xia等8的实验也证实在胃癌SGC7901细胞株中miR-15b/miR-16可以通过调节Bcl-2基因来控制SGC7901细胞株的多药耐受性。但是,Linsley等9发现miR-15a/miR-16-1却不能调节Bcl-2,其mRNA和蛋白表达都没有变化,分析其实验结果与Cimmino等和Xia等不同的原因可能在于,miRNA的作用靶位并不保守10,同一miRNA在不同种动物的靶位可能有不同。2.1.2 Let-7Reinhart等11在线

5、虫中发现了Let-7, Let-7 对于诱导细胞周期的退出和终末分化是非常必要的。作为早期发现的miRNA之一,现阶段对于Ler-7已经有了比较多的认识,Let-7缺失将导致细胞不能退出细胞周期,不能分化,这种现象在癌症中很常见。Ras 蛋白家族是生物体内信号级联放大系统中的最重要的成分之一,具有原癌基因的活性,通常在肿瘤中表达异常,并与细胞的恶性化倾向有着密切联系,Johnson 等12研究发现 Let-7 家族通过与 Ras基因的 3UTR 区中多个Let-7 补充位点结合,负向调控Ras信号转导通路。Ortholan等13实验表明Let-7的表达水平在肺癌组织要低于正常肺组织,Let-7

6、a-3 前体 miRNA 可以作为肺癌中的调节性 miRNA 基因,具有原癌基因的潜能。Akao 等14的研究表明Let-7在结肠癌中也起着肿瘤抑制因子的作用。Takamizawa等15在143例肺癌患者中发现,Let-7表*国家973项目(2010CB529403)资助 冯华达水平显著下降,且其表达水平越低,患者的预后越差;体外细胞培养表明,肺癌细胞中若人工表达Let-7,会使细胞的增殖得到抑制。以上结果均提示,Let-7家族与Ras蛋白家族基因上特异位点结合,调节Ras蛋白表达水平,从而达到抑癌的作用:Let-7水平下降,Ras蛋白高表达,肿瘤恶性化水平加大;let-7水平上升,Ras蛋白

7、表达减少,抑制癌细胞增殖。2.1.3 miR-34/miR-155p53是一种肿瘤抑制基因,在所有恶性肿瘤中,50%以上会出现该基因的突变,这是肿瘤中最常见的遗传学改变。He等16在通过在体外培养细胞中人工扩增表达miR-34发现,miR-34家族(包括miR-34a、miR-34b、miR-34c)的表达增加,会通过p53导致细胞衰老和凋亡,但若miR-34表达降低,又会使p53的肿瘤抑制作用减弱,这提示miR-34家族对于肿瘤的作用是双向的。Gironella等17发现miR-155能抑制 TP53INP1的表达,TP53INP1是凋亡前p53靶基因,认为其抗肿瘤作用可能是活化了caspa

8、se途径从而引起细胞凋亡;但miR-155在胰腺导管癌细胞中过度表达。故仅由miR-155对TP53INP1有抑制表达作用就推断miR-155具有抗肿瘤作用应持谨慎态度。2.2 有癌基因作用的miRNA2.2.1 miR-155myc基因参与细胞凋亡,其在肿瘤细胞中常过量表达。Metzle等18在儿童Burkitt淋巴瘤患者中证实miR-155与MYC,尤其是c-MYC协同作用,使 c-MYC在胞浆内合成后,与其它蛋白形成寡聚体,再转移到核内,并结合到特异性的 DNA序列上,从而激活和抑制许多靶基因的转录,引起细胞生长和分化的改变,发挥其生理调节功能及恶性转化作用,这提示了miR-RNA的肿瘤

9、基因作用。2.2.2 miR-17-92基因簇He等19发现在多种淋巴瘤中常常有13q31位点的扩增,这一位点编码了miR-17-92基因簇,其中包含了7个miRNAs:miR-17-5p,miR-17-3p,miR-18a,miR-19a,miR-19b-1,miR-20a和miR-92-1,通过小鼠实验研究证明,同时过表达MYC和miR-17-92基因簇,则细胞的存活率提升,提示miR-17-92基因簇可以协同地行使肿瘤基因的功能,诱导细胞不受控制地增殖,这导致了肿瘤发生。值得注意的是,O'Donnell等20发现MYC诱导了mir-17-92的表达,而这些miRNA可以抑制E2F

10、1的翻译,在这一实验中,miR-17-92基因簇所起的作用似乎是抑癌基因的作用,这与He等19的结果是相反的。可能与E2F1可以促进细胞增殖,但是当E2F1的表达水平超过一阈值,它也可以引起凋亡有关。3 miRNA与肿瘤干细胞(CSCs)Yu等21通过体外培养和小鼠体内培养两种方法,分别让Let-7通过慢病毒载体导入CSCs中,让Let-7恢复表达,作用于Let-7的靶点H-RAS 和HMGA2,使二者表达降低。其中,H-RAS的低表达降低了肿瘤细胞的增值速度,但没有影响分化;而HMGA2的低表达则加强分化,但并不会影响增殖的速度。Buckley等22发现,作为干细胞调控因子的REST,若表达

11、降低50%,则激活miR-21表达,进而使CSCs的全能型表达得到抑制,这提示miR-212可以降低CSCs成瘤能力。Garzia等将miR-199b-5p作用于转录因子HES1,使HES1表达降低,进而通过调节Notch途径,降低髓母细胞瘤(MBs)的增殖率,实验中还发现,miR-199b-5p的过表达会使去胸腺裸鼠体内CSCs基因的表达受阻,同时影响小脑中正常细胞的癌变率,Garzia等2在临床61例MBs患者中发现,非转移性肿瘤中miR-199b-5p的表达率远高于转移性肿瘤中的表达率,这提示miR-199b-5p除了影响CSCs的增殖、分化外,还降低了其转移可能。Gal等23发现在脑胶

12、质瘤中,CD133-细胞有六种miRNA(miR-16, miR-107, miR-185, miR-425, miR-451, miR-486)表达上调,若提高脑胶质瘤干细胞中SMAD3和SMAD4的含量,可上调miRNA-451,促进干细胞分化为CD133-细胞。Silber等24发现miR-124和miR-137在正常神经干细胞(NSCs)中高表达,但在脑胶质瘤干细胞,尤其是恶性多形性胶质瘤干细胞(hGSCs)中低表达,而它们的表达不但可诱导胶质瘤干细胞的分化,还可使脑胶质瘤干细胞的细胞周期停留在G0/G1期,降低了成瘤性。4 miRNA的研究意义4.1 预测肿瘤发展、演进趋势在近年对m

13、iRNA的研究中可发现,miRNA在健康人群和肿瘤患者中的表达水平存在较大差异,且不同类型肿瘤中异常表达的miRNA不尽相同,这提示了可以通过检测miRNA水平,对细胞癌变趋势进行有效监测。除了现阶段常用的Northen杂交、RT-PCR以外,Yin等25筛选出255个来源于编码基因内含子的siRNA和靶 mRNA,这一发现在现有水平上为miRNA临床检测和miRNA组学的研究提供了技术方法。4.2 人工调节miRNA水平到目前为止,尚未有在体调节miRNA水平,用以控制、治疗肿瘤的报道,主要因为目前对于miRNA的影响因素尚未确定。离体实验中,可行的调节方法也较少,将外源miRNA导入,如利

14、用病毒载体转导20。若能够阐明miRNA在体内的上游调控机制,对于人工调节miRNA水平,对于肿瘤的治疗、改善预后具有重要意义。4.3 人工调节miRNA靶位由于miRNA对其靶位的调控是通过3TUR位点完成的,因此,可以通过设计miRNA结合位点,人工限制miRNA与靶位的结合,降低mRNA受其的影响,减少其过表达所造成的负面影响;人工加强miRNA与靶位的结合,达到限制肿瘤发展演进的目的。自2005年Nature Cell等杂志连续刊登多篇有关miRNA相关研究的文章后,miRNA已经逐渐变成继肿瘤干细胞后的另一肿瘤领域的研究热点。miRNA不仅对于预测肿瘤发生、辅助肿瘤治疗、控制肿瘤发展

15、、参与术后恢复等方面有着重要意义,为进一步理解RNA对生命过程的影响提供了另一扇窗口。虽然目前对于miRNA的认识还十分有限,但随着新研究技术不断出现和新miRNA的不断发现,miRNA的研究一定会在肿瘤预防、治疗方面扮演更加重要的角色。参考文献:1 Lee RC, Feinbaum RL, Ambros V. The C. elegans heterochronic genelin-4 encodes small RNAs with antisense complementarity to lin-14J.Cell, 1993 , 75 (5): 843-854.2 Garzia L, An

16、dolfo I. MicroRNA-199b-5p impairs cancer stem cells through negative regulation of HES1 in medulloblastomaJ,PLoS-ONE. 2009; 4(3): e49983 Pasquinelli AE, Ruvkun G. Control of development timing by microRNAs and their targetsJ. Annu Rev Cell Dev Biol, 2002, 18: 495-513.4 Yekta S, Shih IH, Bartel DP. M

17、icroRNA directed cleavage of HOXBMrnaJ. Science, 2004,304(5670): 594-596.5 Zeng Y, Wagner EJ, Cullen BR. Both natural and designed miRNAs can inhibit the expression of cognate mRNAs when expressed in humancellsJ. Mol Cell, 2002, 9: 1327-1333.6 Zeng Y, Yi R, Cullen BR. MicroRNAs and small interfering

18、 RNAs can inhibit mRNA expression by similar mechanismsJ. Proc NatlAcad SciUSA, 2003, 100: 9779-9784.7 Cimmino A, Calin GA, Fabbri M, et al. MiR-15 and miR-16 induce apoptosis by targeting BCL2J. Proc N atl Acad Sci USA, 2005, 102 (39) : 13944 - 9.8 Xia L, Zhang D, Du R, et al . MiR215b and miR216 m

19、odulate multidrug resistance by targetingBCL2 in human gastric cancer cellsJ. Int J Cancer, 2008, 123(2):372-9.9 Linsley S, Schelter J, Burchard J, et al . Transcripts targeted by the microRNA-16 family cooperatively regulate cell cycle progression J. M ol B iol, 2007, 27(6):2240-52.10 Yvonne T. Mic

20、roRNAs to Nanog, Oct4 and Sox2 coding regions modulate embryonic stem cell differentiationJ. Nature. 2008 Oct 23; 455(7216): 1124-811 Reinhart BJ, Slack FJ, Basson M, et al. The 21-nucleotide let-7 RNAregulates developmental timing in Caenorhabditis elegans J. Nature,2000, 403: 901-906.12 Johnson S

21、M, Grosshan H, Shingara J, et al. Ras is regulated by the let-7 microRNA familyJ. Cell, 2005, 120(5): 635-647.13 Ortholan C; Puissegur M P,MicroRNAs and Lung Cancer: New Oncogenes and TumorSuppressors, New Prognostic Factors and Potential Therapeutic Targets. Curr-Med-Chem. 2009;16(9): 1047-6114 Aka

22、o Y, Nakagawa Y, Naoe T. Let-7 microRNA functions as a potentialgrowth suppressor in human colon cancer cells J. Biol Pharm Bull,2006, 29: 903-906.15 Takamizawa J, Konishi H. Reduced expression of the let-7 microRNAs in human lung cancers in association with shortened postoperative survivalJ. Cancer

23、-Res. 2004 Jun 1; 64(11): 3753-6 16 He X, He L, Hannon GJ. The guardians little helper: microRNAs in the p53 tumor suppress or network J. Cancer Res, 2007,67 (23) : 11099-101.17 Gironella M, Seux M, Xie MJ, et al. Tumor protein 53-induced nuclear protein 1 expression is repressed by miR-155, and its

24、 restoration inhibits pancreatic tumor developmentJ. Proc Natl Acad Sci USA. 2007 Oct 9; 104(41): 16170-518 Metzler M, Wilda M, Busch K, et al. High expression of precursor microRNA-155/BIC RNA in children with Burkitt lymphoma J. GenesChromosomes Cancer, 2004, 39: 167-169.19 He L, Thomson JM. A microRNA polycistron as a potential human oncogeneJ. Nature, 2005 Jun 9; 435(7043): 828-3320 O'Donnell KA. C-MYC-regulated

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