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文档简介
1、第26卷,第10期光谱学与光谱分析Vol 126,No 110,pp1895218982006年10月Spectroscopy and Spectral Analysis October ,2006溴化乙锭探针研究劳氏青莲与脱氧核糖核酸的相互作用刘雪平,冯素玲3,潘自红,樊静河南师范大学化学与环境科学学院,河南新乡453007摘要用光谱探针溴化乙锭对劳氏青莲与脱氧核糖核酸的作用机制进行了研究。通过对体系的荧光光谱、吸收光谱及共振光散射光谱等方面的研究,结果表明,在p H 为714的Tris 2HCl 缓冲溶液中,劳氏青莲与脱氧核糖核酸之间存在着嵌插作用,其结合常数为110×105L
2、mol -1。主题词荧光光谱;吸收光谱;共振光散射光谱;劳氏青莲;溴化乙锭探针;DNA 中图分类号:O65713文献标识码:A 文章编号:100020593(20061021895204收稿日期:2005205207,修订日期:2005210229基金项目:河南省自然科学基金项目(0511021200资助作者简介:刘雪平,1974年生,平顶山学院化学系教员,硕士3通讯联系人引言脱氧核糖核酸(DNA 是人体内重要的遗传物质。小分子与DNA 作用后将会不同程度地引起DNA 分子结构和功能的变化,进而影响基因的调控与表达功能,因此研究小分子与DNA 的作用对于理解它们的作用机理,寻求灵敏检测DNA
3、分子的探针及进行药物体外筛选具有十分重要的意义。Kumar 等1通过系统研究某些抗生素、杂环阳离子染料及金属离子配合物与DNA 作用,揭示了分子结构及电子云分布影响小分子与DNA 结合的强度及结合位点。Porschke 等2发现小分子的疏水性能、所带正电荷、配位金属活性中心、平面杂环阳离子及氢键基团对小分子与DNA 的结合也有较大的影响。通常小分子与DNA 的非共价键结合有如下3种方式3:静电结合、沟式结合及嵌插结合。目前,研究小分子与DNA 作用的方法及技术有荧光光谱法325、圆二色谱6及电化学方法7等。劳氏青莲是许多染料及药物分子的基本骨架,有共轭体系,结构对称,对DNA 分子具有诱导突变
4、作用。同时它还是一种生物染料,荧光极其微弱,因此,本文采用溴化乙锭(EB 探针示踪劳氏青莲与DNA 分子的相互作用,结果表明:劳氏青莲与DNA 之间存在嵌插作用,其结合常数为110×105L mol -1。1实验部分111仪器与试剂FP 26200荧光分光光度计(日本分光公司;PER KIN 2EL M ER L AMBDA 17紫外2可见分光光度计(美国PE 公司;p HS 23C 型数字酸度计(杭州东星设备仪器厂。小牛胸腺DNA (ctDNA (华美生物工程公司,北京配制成216×10-4mol L -1,04保存,经UV 光谱测定A 260/A 280>118,
5、纯度符合要求,ctDNA 浓度利用260=6600L mol -1cm 计算而得;劳氏青莲(Thionine ,用热水配制成410×10-4mol L -1;溴化乙锭(EB (华美生物工程公司,北京配制成6116×10-4mol L -1,避光保存;Tris 2HCl 缓冲溶液,由011mol L -1的三羟甲基氨基甲烷与011mol L -1HCl 混合而成,调p H 为714。实验所用水均为2次蒸馏水,其他试剂均为分析纯。112实验方法11211吸收光谱于10mL 比色管中加入2mL p H 为714的Tris 2HCl 缓冲溶液、一定量的劳氏青莲和ct 2DNA 溶液
6、,稀释至刻度,摇匀,以相应的试剂空白作参比,在紫外2可见分光光度计上进行扫描,绘制吸收光谱。11212劳氏青莲对EB 2DNA 荧光光谱的影响采用荧光滴定法,在一定量的Tris 2HCl 缓冲溶液、DNA 溶液及EB 溶液中滴加不同量的劳氏青莲,观察其荧光强度的变化。11213EB 2DNA 结合常数的测定采用荧光滴定法,在一定量的Tris 2HCl 缓冲溶液和DNA 溶液中滴加不同量的溴化乙锭,观察其荧光强度的变化。11214劳氏青莲对EB 2DNA 结合常数的影响采用荧光滴定法,在一定量的Tris 2HCl 缓冲溶液、劳氏青莲和DNA 溶液中滴加不同量的溴化乙锭,记录每次滴加后的荧光强度。
7、2结果与讨论211劳氏青莲与DNA 的吸收光谱和共振光散射光谱由图1可知,劳氏青莲在598nm 处有较大的吸收。当DNA 与劳氏青莲作用后,劳氏青莲在598nm 处的吸收强度降低,且峰位红移。根据Long 理论8:减色效应、红移现象是该物质与DNA 发生嵌插作用的标志。明显的减色效应说明劳氏青莲与DNA 碱基对之间的距离很近,即劳氏青莲可能嵌入到DNA 的碱基对中,从而引起碱基对与嵌入有机小分子之间产生较强的电子相互作用 。Fig 11The absorption spectra of thionine 2ctDNA1,2,3:Tris 2HCl +t hionine ;4,5,6:Tris
8、2HCl +t hionine +ctDNA ;7:Tris 2HCl +ctDNA ;t hionine ,1,4:610×10-5mol L -1;2,5:910×10-5mol L -1;3,6:112×10-4mol L -1;ctDNA ,4,5,6,7:1104×10-4mol L -1图2是DNA 与劳氏青莲体系的共振光散射光谱。由图2可知,随着DNA 浓度的增加,体系的共振光散射强度增大,表明DNA 与劳氏青莲之间发生了相互作用,形成了更大的粒子 。Fig 12R esonance light scattering spectraof c
9、tDNA 2thionine systemctDNA (×10-5mol L -1,03:010;0126;113;512;Thionine :410×10-5mol L-1212劳氏青莲对EB 2DNA 荧光光谱的影响溴化乙锭是一种经典的嵌入式荧光探针,它本身的荧光很弱,但与DNA 作用后,其生色团嵌入碱基对中使荧光强度增加。劳氏青莲几乎没有荧光,由图3可见,在DNA 2EB 体系中加入劳氏青莲后,荧光强度随着劳氏青莲浓度的增加而降低,且荧光峰位略有蓝移。这是由于劳氏青莲竞争结合EB 2DNA 中的DNA ,使溴化乙锭分子从疏水环境进入亲水环境,从而引起荧光强度降低 。F
10、ig 13I nfluence of thionine on the fluorescencespectra of ctDNA 2EB systemThionine (×10-5mol L -1,04:0100,0138,0191,1138,2142;EB :112×10-5mol L -1;ctDNA :918×10-5mol L -1213劳氏青莲对DNA 2EB 荧光猝灭方式的判断在一系列EB 2DNA 溶液中加入不同浓度的劳氏青莲,以F 0/F T (为劳氏青莲的浓度作图,其中F 0为不存在劳氏青莲时的荧光强度,F 为存在劳氏青莲时的荧光强度。根据经典的荧
11、光猝灭理论9,无论动态猝灭还是静态猝灭,F 0/F 与猝灭剂的浓度总是呈线性关系。而劳氏青莲对EB 2DNA 体系的猝灭为一条曲线(图4,随着劳氏青莲浓度的增加,其猝灭效率也增大,因此,劳氏青莲对EB 2DNA 体系的荧光猝灭并非单纯的动态猝灭或静态猝灭, 很可能是两种猝灭方式共同作用的结果。Fig 14The fluorescence quenching curve ofthionine with ctDNA 2EB systemEB :112×10-5mol L -1,ctDNA :918×10-5mol L -1(c :concentration of t hioni
12、ne 214介质及酸度的影响考察了Britton 2Robinson 及Tris 2HCl 两种介质对劳氏青6981光谱学与光谱分析第26卷莲猝灭作用的影响,发现在这两种介质中,劳氏青莲对EB 2DNA 的荧光都有猝灭作用,且猝灭程度相当。在酸性较强的溶液中,溴化乙锭结构发生变化,与DNA 作用后荧光强度几乎保持不变。本实验选用p H 为714的Tris 2HCl 缓冲溶液。215劳氏青莲对EB 2DNA 的Scatchard 曲线的影响溴化乙锭是一种菲啶类染料,当它嵌入DNA 碱基对中后其荧光强度大大增强。溶液中总的荧光强度为游离的EB 的荧光强度与发生嵌插作用的EB 的荧光强度之和,即I
13、obs =I b +I f =K b c b +K f c f =K b c b +K f (c t -c b c b =I obs -K f c t K b -K fI obs 2溶液总的荧光强度;I f 2游离的EB 产生的荧光强度;I b 2与DNA 结合的EB 产生的荧光强度;c t 2溶液中EB 的总浓度;c f 2游离的EB 的浓度;c b 2与DNA 结合的EB 的浓度。K f ,K b 分别为EB ,EB 2DNA 的荧光强度系数,可通过实验测得。EB 与DNA 的结合常数及结合位点可由Scat 2chard 方程求得c f=n K -K=c b /ctDNA 2平均每个核苷酸
14、已结合的EB 分子数;K 为EB 与DNA 的结合常数;n 2每个核苷酸最多能结合的EB 分子数。劳氏青莲存在与不存在条件下EB 2DNA 的Scatchard 方程曲线如表1所示。由表1可知,随着劳氏青莲浓度的增加,结合常数K 明显减小,而结合位点n 基本不变,进一步说明劳氏青莲与DNA 之间存在着嵌插作用;溴化乙锭与DNA 的结合常数K 为914×105L mol -1,结合位点n 为415,与文献数据8,10基本一致;溴化乙锭与DNA 的表观结合常数(K obs 随着劳氏青莲浓度的增加有所降低。T able 1The Scatchard equ ation of EB 2ctD
15、NA劳氏青莲/10-5(mol L -1Scatchard 方程相关系数结合常数K /105L mol -1结合位点(n 0/c f =2107×105-9141×105019829141415018/c f =1105×105-4193×105019864193417116/c f =8148×104-3173×105019893173414根据文献11有下列关系式K obs =K1+K c f 1K obs=K K c f +1KK 为劳氏青莲与D N A 的结合常数,c f 为游离的劳氏青莲的浓度。以1/K obs c f 作图
16、,可求得劳氏青莲与DNA 的结合常数为110×105L mol -1。216结论通过引入DNA 荧光探针溴化乙锭(EB ,研究了劳氏青莲与DNA 之间的相互作用。结果表明,劳氏青莲与DNA 之间存在嵌插作用,其结合常数为110×105L mol -1。劳氏青莲是许多药物的基本骨架,这对于从分子水平上了解药物与DNA 的作用机理,设计并合成新的药物具有十分重要的意义。从以上可以看出,本文得到一些新的研究成果,很有应用价值,近年来,还有类似的工作报道12。参考文献1Kumar C V ,Raphael A L ,Barton J K.Biomol.Stereodyn.,1986
17、,3:85.2Porschke D.In DNA 2Ligand Interactions ,Specificity and Dynamics of Protein 2Nucleic Acid Interactions ,Guschlbauer W ,Saenger W(eds.New Y ork :Plenum ,1986.85.3Kumar C V ,Asuncion E H.J.Am.Chem.Soc.,1993,115(19:8547.4J IAN G Chong 2qiu ,H E Ji 2xiang ,WAN G Jin 2shan (江崇球,贺吉香,王金山.Spectroscop
18、y and Spect ral Analysis (光谱学与光谱分析,2002,22(1:103.5L I Lai 2sheng ,HUAN G Wei 2dong ,YAN Yuan (李来生,黄伟东,鄢远.Spectroscopy and Spectral Analysis (光谱学与光谱分析,2001,21(5:685.6Liu F ,Kelley A M ,David R M.J.Am.Chem.Soc.,1993,115(15:6699.7Carter M T ,Bard A J.J.Am.Chem.Soc.,1987,109(24:7528.8Long E C ,Barton J
19、K.Account Chem.Res.,1990,23(9:271.9CH EN Guo 2zhen ,HUAN G Xian 2zhi ,ZH EN G Zhu 2zi ,et al (陈国珍,黄贤智,郑朱梓,等.Fluorimetric Analysis 2nd ed (荧光分析法第2版.Beijing :Science Press (北京:科学出版社,1990.115.10Reinhardt C G ,Krugh T R.Biochemistry ,1978,17(23:4845.11LePecq J B ,Paoletti C.J.Mol.Biol.,1967,27(1:87.12PE
20、N G J un 2feng ,L IN G Jian 2ya ,ZHAN G Ha 2li ,et al (彭俊峰,凌建亚,张哈里,等.Spectroscopy and Spectral Analysis (光谱学与光谱分析,2004,24(7:858.7981第10期光谱学与光谱分析8981光谱学与光谱分析第26卷Studies on the Interaction bet w een Thionine and Deoxyribo2Nucleic Acid by Ethidium B romide ProbeL IU Xue2ping,FEN G Su2ling3,PAN Zi2hong,
21、FAN JingCollege of Chemistry and Environmental Science,Henan Normal University,Xinxiang453007,ChinaAbstractThe interaction between thionine and deoxyribonucleic acid was studied with ethidium bromide probe in Tris2HCl buff2 er solution at p H714by fluorescence spectra,electronic absorption spectra,a
22、nd resonance light scattering spectra.From the ob2 tained results,it was found obviously that the planar structure of thionine can be intercalated into the stacked base pairs of DNA, which is the major controlling factor.The binding constant was found to be110×105Lmol-1.K eyw ordsFluorescence spectra;Absorption spectra;Resonance light scattering spectra;Th
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