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文档简介

1、    糖尿病大鼠视网膜缺氧诱导因子(1)    】 目的:探讨链脲佐菌素(STZ)糖尿病大鼠视网膜组织中缺氧诱导因子1(HIF1)和血管内皮生长因子(VEGF)的表达规律. 方法:Wister大鼠60只,分为实验组(T组,45只)和对照组(C组,15只). 实验组建立STZ诱导的糖尿病大鼠模型,并随机分为T1,T3,T5三个组,每组15只,分别代表糖尿病模型1, 3, 5 mo;对照组同样随机分为C1,C3,C5三个组,每组5只. 分别采用免疫组织化学法检测视网膜VEGF表达、免疫印迹法检测视网膜HIF1表达,结

2、果以平均吸光度值进行定量比较. 结果:糖尿病模型成功率86.6793.33%. VEGF检测结果:对照组各组间差别无统计学意义(P0.05);T1与对照组间差别无统计学意义(P0.05),但T3,T5与对照组间差别均有统计学意义(t值分别为6.12,8.67,P<0.01),并且T3,T5两组间差别也有统计学意义(t=3.45,P<0.05). HIF1检测结果:对照组各组间差别无统计学意义(P0.05);T1,T3,T5分别与对照组相比,其差异均有统计学意义(t值分别为4.35,5.01,5.34,P<0.01),但实验组各组间差异无统计学意义(P0.05). 结论:STZ

3、糖尿病大鼠视网膜内可观察到VEGF和HIF1的高表达,后者早于前者,提示在视网膜病变时HIF1的表达可能是VEGF表达的始动因素.【关键词】 STZ大鼠;糖尿病视网膜病变;缺氧诱导因子;血管内皮细胞生长因子0引言糖尿病目前已成为严重危害公共健康的问题,可引起全身多数器官并发症,而其中微血管并发症之一的视网膜病变(diabetic retinopathy,DR),也日益成为致盲的主原因. 有关DR的病理生理过程已有大量实验研究,并已发现血管内皮生长因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)是引起DR血管渗漏、新生血管形成的主细胞因素之一1. 然而, 在

4、糖尿病患者眼部微环境下引起VEGF等细胞因子大量分泌的确切机制还不甚明了. 本实验我们从缺氧诱导因子1(hypoxiainducible factor1, HIF1)这一途径, 探讨糖尿病条件下视网膜VEGF表达增加的机制.1材料和方法1.1材料选取封闭群雄性Wistar大鼠60只,体质量190210 g,适应性饲养3 d,分为实验组(T组,45只)和对照组(C组,15只). 将T组再随机分为T1,T3,T5三个组,每组15只,分别代表糖尿病模型1,3,5 mo;C组同样随机分为C1,C3,C5三个组,每组5只. 所有动物均在相同条件下饲养. 链脲佐菌素(streptoztocin, STZ)

5、,美国Sigma公司产品;一抗为兔抗鼠VEGF mAb(1100),二抗为生物素化羊抗兔IgG,所有抗体和SABC试剂盒,DAB显色剂均购于美国DAKO公司;一抗(1200兔抗HIF1多克隆抗体),美国Sigma公司.1.2方法1.2.1糖尿病大鼠模型的建立2取STZ溶于0.05 mol/L柠檬酸缓冲液(pH 4.5),配置成浓度1.25%的溶液,按60 mg/kg对T组大鼠行一次性腹腔内注射,C组大鼠腹腔注射等量柠檬酸缓冲液. 药物注射后2448 h检测血糖和尿糖,血糖浓度高于16.5 mmol/L,尿糖达,尿量、饮水明显增多即为模型建立成功;低于上述标准则为造模失败. 实验组T1,T3,T

6、5及对照组C1,C3,C5分别在造模成功后1,3,5 mo处死,取标本进行下列实验.1.2.2免疫组织化学法(SABC)检测视网膜VEGF的表达实验动物经10 g/L戊巴比妥钠(40 mL/kg)腹腔麻醉,用0.1 mo/L含有40 g/L多聚甲醛的PBS液灌流固定,摘除眼球,石蜡包埋后行16 m连续切片,SABC法行免疫组织化学染色检查,其中对照组一抗以PBS液代替,操作步骤严格按照试剂盒说明书进行. 阳性结果为胞浆内出现棕褐色颗粒. 染色结果用LuzexF实时图像分析系统进行分析,计算平均A值.1.2.3免疫印迹法(Western Blot)检测   

7、0;        【关键词】STZ大鼠;,糖尿病视网膜病变;,缺氧诱导因子;,血管内皮细胞生长因子Expressions of hypoxiainducible         本篇论文是由3COME文档频道的网友为您在网络上收集整理饼投稿至本站的,论文版权属原作者,请不用于商业用途或者抄袭,仅供参考学习之用,否者后果自负,如果此文侵犯您的合法权益,请联系我们。视网膜HIF1的表达实验动物同前麻醉,固定后,摘除眼球去除眼前段成眼杯,仔

8、细分离出视网膜组织,剪碎后置于裂解液中机械匀浆,4,17 000 g离心30 min,取上清液以紫外分光光度计定量,等量蛋白上样进行75 g/L SDSPAGE电泳,电泳后湿转至硝酸纤维素膜上. 37孵育2 h,洗膜,加11000的辣根过氧化物酶标记的二抗,37孵育1 h,洗膜后加入化学发光液反应1 min,曝光显影后冲洗胶片. 显色结果同样用图像分析系统计算平均A值.统计学处理: 用SPSS 11.0统计软件对各实验数据进行分析处理,结果以x±s表示,采用Fisher确切概率计算法、多组间比较方差分析、组间比较t检验等进行差异显著性分析.2结果2.1大鼠糖尿病模型实验组腹腔注射ST

9、Z后成功复制出糖尿病动物模型:T1组15例,成功14例,失败1例;T3组15例,成功13例,失败2例;T5组15例,成功14例,失败1例. 通过Fisher确切概率计算法(PT1:3,PT3:5,PT1:5的概率分别为0.388,0.388,0.517),可见三组之间的造模成功率无显著差异,故可以认为三组的造模成功率基本一致.    2.2各组不同时段视网膜VEGF表达免疫组化染色结果显示,对照组各组视网膜VEGF可见弱表达,一般在内核层可见少数阳性染色,但不随时间变化而改变(图1). 各组不同时段之间的VEGF A值并无显著性差异(表1). 实验组在成

10、模后1 mo, VEGF表达较对照组仅略有增强,其A值与对照组相比并无显著性差异,但随着时间的延长,实验组VEGF表达明显增强,特别是T5组,视网膜内核层、节细胞层及血管壁等均可见阳性染色(图2).表1各组不同时段VEGF及HIF1 A值(略)2.3各组不同时段视网膜HIF1表达通过免疫印迹检测,对照组各组HIF1有弱表达,其A值维持一基线状态,不同时段差别无统计学意义(表1). 实验组各组HIF1表达均明显增强,与对照组相比有显著性差异,但各组A值并不随时间改变而发生显著变化,组间差别无统计学意义(表1). 图3显示成模5 mo后实验组与对照组HIF1免疫印迹结果(M为标记物,上下两个条带分

11、别代表225 bp和162 bp).3讨论STZ大鼠是目前比较公认的经典糖尿病DR模型,基本可以模拟人背景型DR的大致病理改变2. 本实验成功复制出STZ大鼠模型,成功率在90%左右,保证了后续实验结果的真实可信.糖尿病DR是糖尿病微血管病变在眼底独特环境中的表现,其中VEGF起着举足轻重的作用. VEGF导致新生血管的原因,一方面是直接促进微血管内皮细胞增生,另一方面是VEGF使微血管内皮细胞通透性增强,大分子物质如纤维蛋白原等进入细胞外基质中形成纤维蛋白凝胶,允许并支持新生血管和基底细胞向内生长3. 临床研究也发现,在合并活动性新生血管病变的眼如糖尿病性DR、视网膜中央静脉阻塞、早产儿DR

12、等的眼内液中VEGF表达显著增高,而在无新生血管对照眼的眼内液中则表达较低. 眼内直接给予VEGF更能诱发出典型的新生血管病变4. 本实验在成模后3 mo和5 mo大鼠视网膜上观察到了明显的VEGF高表达,并且有随时间延长表达逐渐增多的趋势,与对照组相比有显著性差异,而1 mo组则没有明显增多,提示VEGF是在缺氧发生后,某些始动因素的刺激下表达增多,符合糖尿病DR的发展规律.为明确DR时引起VEGF表达增多的原因,本实验还观察了缺氧诱导因子1(HIF1)的变化. HIF1是细胞在缺氧条件下产生的核蛋白,它作为转录因子与靶基因结合,促进其转录,从而使机体产生一系列缺氧适应反应. HIF1是一种

13、异源二聚体,由HIF1和HIF1两个蛋白质亚基组成, HIF1亚基主起结构性的作用,在细胞内稳定表达;HIF1则是主的功能亚基,受缺氧信号的调控,并且只有在缺氧状态下才能稳定表达. HIF1的活性主由HIF1的蛋白质水平和活性决定5. 能被HIF1诱导的基因启动子或增强子内有一个小于100 bp的DNA序列,称为缺氧反应元件(hypoxia response element, HRE),介导细胞对缺氧的反应,HRE由HIF1结合位点和两侧的功能序列构成. 缺氧条件下HIF1和HIF1蛋白由胞浆进入核内,发生二聚形成稳定的HIF1,活化的HIF1与靶基因HRE中的HIF1结合位点结合,形成转录起

14、始复合物,促进其转录,引起一系列细胞对缺氧的反应6. 而VEGF正属于上述靶基因之列,其转录起始点上游具有HRE结构,缺氧状态下可被HIF1激活而表达增多7. 本研究发现,造模成功后1 mo,即可见到HIF1的表达增多,与对照组有显著性差异,提示此时视网膜已经发生缺氧性改变. 但是其后一段时间内,虽然HIF1都保持高表达,但是不同时段之间却并无显著性差异,即HIF1似乎并无随时间延长不断增多的趋势,这可能与HIF1的半衰期短有关. Huang等8发现:由于HIF1经泛素蛋白酶途径不断发生水解,使其在常氧下的半衰期小于1 min,因此它很难在细胞内大量聚集,只能在受到缺氧信号刺激后不断产生,如果

15、缺氧状态持续存在,则它的表达就持续增高,不过不能像VEGF那样表现出随时间不断增高的趋势.由于实验中对VEGF的检测采用的是免疫组化的方法,受敏感性的限制,在成模后1 mo时,尚不能发现VEGF蛋白质表达的变化,按照实验中HIF1的变化规律,推测此时VEGF表达也应有一定程度的增多,这有待今后加以探索.【参考文献】1Shen WY, Lai CM, Graham CE,et al. Longterm global retinal microvascular changes in a transgenic vascular endothelial growth factor mouse mode

16、lJ. Diabetologia, 2006, 49(7): 1690-1701.2宋鄂, 董宇, 石博, 等. STZ糖尿病大鼠视网膜病变模型的评价J.眼科研究, 2004, 24(2):124-127.3Ferrara N, DavisSmyth T. The biology of vascular endothelial growth factorJ. Endocr Rev, 1997,18(1):4-25.4Suganthalakshmi B, Anand R, Kim R, et al. Association of VEGF and eNOS gene polymorphisms

17、in type 2 diabetic retinopathyJ. Mol Vis, 2006,11(12):336-341.5Arjamaa O, Nikinmaa M. Oxygendependent diseases in the retina: Role of hypoxiainducible factorsJ. Exp Eye Res, 2006,83(3):473-483.6Chen C, Pore N. Regulation of glut 1 mRNA by hypoxiainducible factor: Interaction between Hras and hypoxia

18、J. J Biol Chem, 2001,276(12):9519-9525.            【关键词】STZ大鼠;,糖尿病视网膜病变;,缺氧诱导因子;,血管内皮细胞生长因子Expressions of hypoxiainducible         本篇论文是由3COME文档频道的网友为您在网络上收集整理饼投稿至本站的,论文版权属原作者,请不用于商业用途或者抄袭,仅供参考学习之用,否者后果自负,如果此文侵犯您的合法权益,请联系我们。7Michel G, Minet E, Mottet D, et al. Sitedirected mutagenesis studies of the hypoxiainducible factor1 alpha D

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