微生物基因组无痕敲除技术介绍_第1页
微生物基因组无痕敲除技术介绍_第2页
微生物基因组无痕敲除技术介绍_第3页
微生物基因组无痕敲除技术介绍_第4页
微生物基因组无痕敲除技术介绍_第5页
已阅读5页,还剩3页未读 继续免费阅读

下载本文档

版权说明:本文档由用户提供并上传,收益归属内容提供方,若内容存在侵权,请进行举报或认领

文档简介

1、安必奇生物科技有限公司微生物基因组无痕敲除技术介绍有痕敲除&无痕敲除基因敲除是一种常见的生物工程技术,可用于微生物基因组改造。有痕敲除的含义是每次敲除基因后都会在基因组中引入一个筛选标记。一方面,当进行连续敲除时,多种抗性标记在同一株菌体中堆叠,使得后面抗体标记的选择越来越困难。另一方面,抗体基因的插入可能会影响上下游基因的表达。因此,无痕(markerless/scarless )敲除越来越受到追捧,成为人们研究的重点。无痕敲除技术1同源重组同源重组技术包括 RecA和Red重组系统,Red系统具有明显的优势,包括同源臂较短,重组率较高等,被广泛用于大肠杆菌的基因组编辑。然后 Red

2、系统存在外源片段残留的情况,比如残留一个 FRT重组酶作用位点。研究人员通过持续的研究,对该系统进行了持续的优化和改进,并开发出了无痕敲除技术,方便进行连续多个基因的敲除操作。下面我们将对这些优化策略进行解读。1.1 环状质粒型同源重组载体环状质粒载体是实现大肠杆菌基因敲除的经典策略,依靠的是RecA重组系统。RecA 系统主要包括 RecA、RecBCD、RuvA、RuvB、RuvC 等。RecA 具有与重组相关的活性,RecBCD可降解线性DNA片段,通过Chi序列识别靶位点,形成单链区域,然后再 RecFOR、RecQ、RuvABC、SSB等蛋白共同作用下由 RecA进行同源重组。应用此

3、类载体进行的基因敲除可分为2种类型,一种是通过同源单交换的插入型敲除,另一种是通过同源双交换的置换型敲除,后者可实现目标基因无痕敲除,但是第二步同源交换的效率较低。1.2 线性双链DNA型同源重组载体该载体依据Red重组系统。线性载体直接利用 PCR的方法获得带有与靶基因同源 的DNA片段和抗性基因,在 Red重组系统的辅助下实现大肠杆菌的无痕敲除。相 比于质粒型载体,该方法可以避免目标基因突变体 (如基因点突变、基因缺失突变、 基因插入突变)克隆和质粒载体的构建,简化了流程。但是该方法有一个缺点,即线性DNA容易被RecBCD酶降解。但这个问题可以被克服, Red重组系统设计时 就已经包含了

4、能抑制 RecBCD对线性DNA降解的Gam蛋白。该载体同样适用于RecA重组系统安必奇生物科技有限公司cm抗性赣著苗荒PCR *定前漏PCR置定PCR;含成线性同H短体Ara例导衰诘Red 或 电转讹嵯性戴悻发牛同田CTc 皆导,«iS l-ScelVaKDSBMMN图1.应用线性双链DNA型同源重组载体的无痕敲除技术原理图(Feher等2008 )下图是葛高顺等人改进的大肠杆菌无痕敲除策略,第一步是采用两次PCR扩增出与目的基因两端同源并包含核酸内切酶I-SceI序列的氯霉素抗性片段。然后诱导质粒pKD46表达Red同源重组系统,并进行同源交换敲除目的基因,第二步进行无痕化处理。

5、安必奇生物科技有限公司舄h安必奇生物科技有限公司Red图2.质粒型无痕化基因敲除策略(葛高顺等2014)2 Cre/loxp 系统Cre重组酶于1982年在P1噬菌体中被发现,全长1029bp ,能介导2个loxp位点 间的基因删除或者倒立。loxp是一段回文序列,长约34bp ,包含2个13bp的反向 重复序列和1个8bp的不对称间隔区,是Cre酶的特异性识别位点。近年来,Cre/loxp 位点特异性重组系统被用于无痕敲除。Herrmann等(2012 )对该系统进行了改进,使得敲除率可达100% 。作者先将2个loxp位点通过单交换的方法整合到敲除基因两侧,依靠Cre重组酶作用实现靶基因敲

6、除。3'rhnkin& ruyionVLitkcExcision with Crc ruurnbinvsc ku、ing one lexp siteln(i;gniiion of second plusmid ergmer,XYMarkerIntegT3tioh vta single cross-overi Excision Df the 叫hole cluster with Ck_irecombinaseSY loxp XY图3.改进后的Cre/loxp系统用于无痕敲除原理示意图(Herrmann等2012)3 CRISPR/Cas9 系统CRIPSR/Cas9技术是由RNA

7、指导Cas9蛋白进行的定向基因组编辑技术,具有结构简单、安全性高、切点精准、价格低廉、可逆性、可同时编辑多个基因等优点,广泛应用于不同微生物中。 这里主要讲一下 CRIPSR无痕编辑。通过将Red同源重组和CRISPR技术结合,可以实现 CRIPSR无痕编辑,利用了 Red重组酶的高效重组的优点和CRISPR系统识别并切割特异位点的优点。Reisch等(2015)发明了 no-SCAR方法,能一步实现多个位点的无痕编辑(包括缺失、点突变、小片段 安必奇生物科技有限公司插入等)。该方法需要构建2个质粒,包括受Ptet启动子控制表达的cas9和tetR 组成表达的质粒pCas9cr4和由受Ptet

8、启动子控制表达的sgRNA和受阿拉伯糖诱 导启动子ParaB控制的/-Red系统的质粒pKDsg-xxx。Ronda等(2016)基于MAGE (Multiplex Automated Genome Engineering )技术,创造了一种更为高效的CRMAGE (CRISPR/Cas9 and 入 Red recombineering based MAGE technology ), 该方法对3个靶标的重组率高达 96.5%-99.7% 。TrdnbfQrm with pCai9cr4Transform withpKDsg-xxxEiprcss X Red andtr&njfofn

9、i withSSDNA or dsDNAScreen by PCRCure pKDsg-KkNat37Day 5Transform with next pKDsf -xxxQ°口3丫6 or 口邛 2图4. no-SCAR系统用于大肠杆菌的基因组编辑(Reisch&Prather 2015 )安必奇生物科技有限公司扁h安必奇生物科技有限公司 Cell gihtkplicHIni 缶小必HptOCR_3UMuIMM 二二pM Z SK图5. CRMAGE 系统的两个质粒结构(Ronda等2016)参考文献:1. Feh e r,TKarcagi I, Gy?rfy Z, et

10、al. Scarless engineering of the Escherichia coli genomeM/Microbial Gene Essentiality: Protocols and Bioinformatics. Humana Press, 2008: 251-259.2. 葛高顺,张立超,赵昕,等.大肠杆菌基因组基因无痕敲除的优化方法J.中国生物工程杂志,2014, 34(06): 68-74.3. Herrmann S, Siegl T, Luzhetska M, et al. Site-specific recombination strategies for engi

11、neering actinomycete genomesJ. Appl. Environ. Microbiol., 2012, 78(6): 1804-1812.4. 谷燕燕,耿伟涛,宋存江.链霉菌无痕敲除方法研究进展J.生物工程学报,2013, 29(8): 1100-1112.5. 何庆,王茜,朱清华,方宏清.基因组工程在微生物细胞工厂构建中的应用进展J.生物产业技术,2017(01):31-36.6. Reisch C R, Prather K L J. The no-SCAR (Scarless Cas9 Assisted Recombineering) system for genome editing in Escheric

温馨提示

  • 1. 本站所有资源如无特殊说明,都需要本地电脑安装OFFICE2007和PDF阅读器。图纸软件为CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.压缩文件请下载最新的WinRAR软件解压。
  • 2. 本站的文档不包含任何第三方提供的附件图纸等,如果需要附件,请联系上传者。文件的所有权益归上传用户所有。
  • 3. 本站RAR压缩包中若带图纸,网页内容里面会有图纸预览,若没有图纸预览就没有图纸。
  • 4. 未经权益所有人同意不得将文件中的内容挪作商业或盈利用途。
  • 5. 人人文库网仅提供信息存储空间,仅对用户上传内容的表现方式做保护处理,对用户上传分享的文档内容本身不做任何修改或编辑,并不能对任何下载内容负责。
  • 6. 下载文件中如有侵权或不适当内容,请与我们联系,我们立即纠正。
  • 7. 本站不保证下载资源的准确性、安全性和完整性, 同时也不承担用户因使用这些下载资源对自己和他人造成任何形式的伤害或损失。

评论

0/150

提交评论