推荐PCR污染防治手册

1、PCR污染防治手册1、 为什么要如此重视防治PCR亏染？聚合酶链反应(polymerase chain reaction,PCR磔一种选择性体外扩增DNA或RNA段的方法。扩增过程中，扩增的DNAT量是呈指数上升的。PCR产物的浓度一般为1013 拷贝/ml,而1mg人基因组DNA才含1.4*10 6拷贝的单拷贝基因片段，因此使得PCRT增反应的敏感性非常高。正是由于PCR反应具有强大的扩增效率也导致其及易污染，极微量的PCRT物污染便可导致假阳性结果。在应用HPV型试剂盒的过程中，主要存在两个污染源： 1.标本间的交叉污染；2.PCR扩增产物的污染。其中以第二个污染源为最为常见，通过下 面一

2、个例子便可认识到 PCFT物污染的严重性。在100ml的反应管中可产生1012拷贝个分子， 若将这些分子在一个标准奥林匹克游泳池(50m*25 m *2m)内稀释后，0.1 ml稀释液含有400拷贝的扩增分子，远远超过了 PCRT增反应检测数个拷贝的极限。因此，一定要注意产物残留污染的问题，对临床实验室尤应如此。2、 PCR亏染的来源对于HPV型检测试剂盒来说， 污染的来源主要是 PCRT增产物的污染，常见的污染途 径有两种，一是气溶胶污染，在空气与液体面摩擦时就可形成气溶胶，在操作时比较剧烈地摇动反应管，开盖时、吸样时及受污染的进样枪的反复吸样都可形成气溶胶而污染。据计算一个气溶胶颗粒可含

3、48000拷贝，因而由其造成的污染是一个值得特别重视的问题。二是 PCRT物的粘带污染，此类污染多是因为没有严格遵守分区规定，造成PCRT物扩散到样品抽提或PCR验室。实验大衣、手套、移液枪、枪头、枪头盒和试管架都是常见的粘带污染 源。污染发生时，这些地方是重点怀疑的地方。3、 PCR亏染的追踪如果不慎发生或者怀疑有污染发生，可以设计一个简单的小实验以确认污染源。用HPV勺PCR扩增系统扩增如下模板：A:水一作为阴性对照，如果此管扩增出阳性，则可以判定为试剂已经污染或者是气溶 胶污染。B:阳性样品一作为阳性对照，验证实验是否成功。C-X:-所要检查的地方，用无菌水浸泡过的灭菌棉签擦拭可疑污染源

4、，0.1ml去离子水浸泡后作为模板。常见的需要检查的地方为各个实验台面、移液枪、枪头、枪头盒、试管架、冰箱内、冰箱把手、水浴锅、抽提的相关试剂以及相关人员的办公桌。如果经过上述追踪实验，仍不能查找到确切污染源，则污染可能是由空气中PCR产物的气溶胶造成的，此时就应该更换实验场所，若条件不允许，可以在室内加装紫外灯管照射过夜且彻底通风并停止几天的实验。四、PCR亏染的预防进彳T PCR操作时，操作人员应该严格遵守一些操作规程，最大程度地降低可能出现的PCR污染或杜绝污染的出现。1、划分操作区：实验操作在三个不同的区域内进行，PCR的前处理和后处理要在不同的隔离区内进行，最基本的一个原则就是 PC

5、FT增及杂交检测区的东西是属于污染源，绝对不可以带到前两个区去。A:样品制备区，包括扩增摸板的制备；B: PCR加样区，包括反应液的配制和PCR扩增；C: PCRT增及杂交检测区,杂交操作过程在这个地方完成。分区的注意事项：各工作区要有一定的隔离，操作器材专用，要有一定的方向性。如：标本制备一PCR 扩增一产物分析一产物处理。样品的保存应该在上述三个区以外单独的区域。各个区域的物品及衣服必须严格遵守单向的原则。各个区域必须要自己单独的实验衣，实验时必须戴上手套。每个区域要有自己单独的实验设备。以下是常见的分区方式：PCR扩增及杂交检测PCR加样样品制备区PCR扩增及杂交检测区样品制备及PCR加

6、样区缓冲间图三图图四2、实验操作的注意事项：A:戴一次性手套，若不小心溅上反应液，立即更换手套；B:使用一次性吸头，严禁与 PCR产物分析室的吸头混用，吸头不要长时间暴露于空气中， 避免气溶胶的污染；C:避免反应液飞溅，打开反应管时为避免此种情况，开盖前稍离心收集液体于管底。若不 小心溅到手套或桌面上，应立刻更换手套并用稀酸擦拭桌面；D:操作时设立阴阳性对照和空白对照，即可验证PCR反应的可靠性，又可以协助判断扩增系统的可信性；E:尽可能用可替换或可高压处理的加样器，由于加样器最容易受产物气溶胶或标本DNA的污染，最好使用可替换或高压处理的加样器。 如没有这种特殊的加样器，至少应经常的擦洗 枪

7、外表及枪管内。3、严格对PCRT物的处理：PCR产物包括杂交产物， 在读数结束后，杂交产物或PCR产物应该用一次性密闭容器 （垃 圾袋、自封袋）装好后丢弃或者倒至1 mol/L HCl溶液或1:25的84消毒液中，浸泡半小时以上后再行丢弃。如果有产物溅在了桌面或器具上，应立即用 1 mol/L HCl溶液或1:25的 84消毒液擦拭。4、根据实验室情况建立完善的日常PC刖治制度并严格执行事在人为，制度执行了才能达到它应有的效果，根据实验室实际情况建立制度后必须严 格执行，绝对不能因为图方便放松警惕。五、PCR亏染后的处理1 .如果是器具的污染，可以对可疑器具用 1mol/L盐酸或者1:25的8

8、4消毒液擦拭或浸泡。 如果台面污染，可能的话用紫外灯照射过夜。2 .如果是试剂污染请更换试剂，但试剂污染一般伴随着器具污染，务必查找出污染源并及时处理。3 .对于被污染的区域，最好更换实验场所，可能的话应加装紫外灯照射过夜，实在不行也必须加强通风几天，并停止实验后检测是否还有污染。六、实验室实例：1、分区情况：实验室分成两个区，类似图二所示。因为条件所限，没有设置缓冲区，但两个区相隔较远，可以有效避免汽溶胶的传播。2、规章制度：A:定期监测：使用棉签涂抹的方法，一个月一次定期监测，监测地点为：超净台桌面、超净台内枪（包括枪吸孔内和枪体）、超净台枪头盒、超净台内常用 PE管架及PCRf架，冰箱冰

9、柜把手（两台）、冰箱内部（每个冰箱 3个棉签包括冰箱内部表面和随机的冰箱内试剂盒）、常用试剂试剂盒、试剂表面。抽提桌面、抽提区枪（包括枪吸孔和枪体）、抽提区常用 试管架、抽提区枪头盒、水浴锅水、沸水浴锅水，相关试验人员办公室桌面、鼠标、键盘。需要做的工作：安排指定人员每月进行一次监测。每次监测填写记录表（见附表）B:物流：严格单向物流，只允许从 A区（样品制备及 PCRm样区）至1 B区（PCFT增及杂交检测区）的物品流动。 B区任何物品（PCR管架、PE管架）进入A区前必须经过处理（1:100） 的84消毒液浸泡半小时）。各区物品单独使用，不允许交叉使用。需要做的工作：A、物品A-B前处理（

10、84浸泡后洗涤）C:人流：抽提、PCR以及B区必须要有单独的实验服，进入A、B两区进行实验必须穿上各自的实验服，不允许将实验服穿到另一个区。（注：如果进入一个区不是为了实验，可以不穿实验服，但绝对不允许穿另一个区的实验服进入）。实验服两周洗涤一次，但切记两个区的衣服不要在同一批洗，分成两次洗，可以这周洗涤这个区的下周洗涤另一个区的。需要做的工作：指定一周轮一周洗涤衣服，各人衣服各人负责。D:实验规程：1、实验时必须戴橡胶手套或薄膜手套；抽提桌面实验完成后用84擦洗；PCR实验室每天（实验量少的话可减少）晚上用紫外照射；如果在实验过程中发现有样品（包括抽提前和抽提后）或 PCRT物必须立即用84

11、擦洗；在B区如果手接触过桌面或者其它有可 能污染有PCRT物的地方（枪、Luminex仪器等）必须尽快洗手；定期处理：各区枪每周用 1: 25的84消毒液擦洗（不需要拆开，主要是枪体和吸样孔内）。各区试管架每周用 1: 25的84消毒液擦洗。各桌面每周用1: 25的84消毒液擦洗。冰箱把手及外表每周用1: 25的84消毒液擦洗。水浴锅及沸水浴锅每周换一次水。相关工作人员办公桌每周用1: 25的84消毒液擦洗需要做的工作：A、实验（特别是杂交检测），发现有产物溅出立即擦洗。R勤洗手。G PCR口安排指定人员每周擦洗指定位置。E、PCR实验室做完实验打开紫外。E:PCR产物处理：准备保鲜袋，每次的

12、PORT物（包括杂交产物和 PCR产物）丢弃前必须用保 鲜袋扎好后再丢弃；杂交检测试验区准备可以装保鲜袋并有盖子的垃圾桶，使用过的枪头一律扎好后丢弃；电泳旁边的冰箱为 PORT物临时存放区，严禁 PORT物开盖存放，定期（ 个月）清理。需要做的工作：A:严格操彳把 PORT物作为高危险物品小心处理。 B:指定日期清理 PCFT物。F:发生污染后的处理： 如果怀疑有污染发生， 执行监测程序，对于重点怀疑对象可以多作几 份。找到污染源后，桌面一用 84擦洗后紫外照射一个晚上，枪一用 84擦洗（拆开）后紫外 照射过夜，枪头盒、试管架- 84擦洗后紫外照射过夜，枪头-丢弃，试剂-丢弃，衣物- 用84浸

13、泡后洗涤干净。冰箱把手-84擦洗后紫外照射过夜。 冰箱内部-84擦洗如果污染严 重的话流水冲洗后 84擦洗，试剂盒-84擦洗或流水冲洗。处理完后执行监测程序检查污染 情况。PCR污染情况监测表序号编p地点试验结果备注1超净台桌面2超净台枪枪吸孔内和枪体试验日期 试验人员3超净台枪头盒4超净台内EP管架及PCRf架5冰箱把手6冰柜把手7冰箱内部18冰箱内部29冰箱常用试剂试剂盒10冰柜内部111冰柜内部112冰柜常用试剂试剂盒13PCR试剂表向14抽提桌面15抽提区枪包括枪吸孔和枪体16抽提区常用试管架17抽提区枪头盒18水浴锅水19沸水浴锅水20试验人员1办公室桌面21试验人员1鼠标、键盘22试验人员2办公室桌面23试验人员2鼠标、键盘24试验人员3办公室桌面25试3巫人贝3双标、键盘26试验人员4办公室桌面27试验人员4鼠标、键盘28试验人员5办公室桌面29试验人员5鼠标、键盘30阳性对照31阴性对照试验方法：准备1.5 ml EP管，每管加入 500ul的注射用水，取出一支干净的棉签，在 EP 管内浸湿后在目的地涂抹三次