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文档简介

1、Hippo-YAP信号通路及其在脑胶质瘤中的研究谢鹏1, 耿德诚1, 姜洋1 综述 周秀萍2审校1.徐州医学院研究生学院神经外科在读研究生, 地址:徐州医学院淮西校区神经系统疾病研究所 江苏 徐州 2.周秀萍,博士,院聘教授,硕导,徐州医学院神经系统疾病研究所副所长,教育部“新世纪优秀人才支持计划”培养对象,省“333”中青年科学技术带头人,省“六大人才高峰”培养对象 江苏省徐州市泉山区淮海西路84号徐州医学院西校区生化楼3楼神经外科实验室 邮箱:xpzhou摘要:恶性脑胶质瘤是最常见的原发性脑肿瘤,即使采用手术联合放、化疗等综合治疗措施,效果也不理想,发病率和致死率极高,因此,积极探寻脑胶质

2、瘤发生发展的分子机制,发现潜在的分子治疗靶点有着重要意义。Hippo-YAP信号通路是通过调控细胞增殖、凋亡和分化来调控器官大小的一个新兴信号通路,YAP是其核心效应分子,Hippo通路通过调控YAP的磷酸化和核定位来发挥作用。生理状态下,Hippo-YAP信号通路的调节处于动态平衡中,保证细胞增殖和凋亡的平衡及内环境的稳态。Hippo-YAP通路失调,尤其是YAP水平升高在人类多种肿瘤中均有发现,下调YAP抑制肿瘤细胞的增殖,提示YAP可能是恶性肿瘤潜在的治疗靶点。本文综述了Hippo-YAP信号通路组成和作用及其在脑胶质瘤中的研究,为寻找脑胶质瘤治疗新靶点提供新思路。关键词:Hippo-Y

3、AP信号通路;YAP;脑胶质瘤脑胶质瘤是最常见的原发性颅脑肿瘤,由大脑和脊髓的胶质细胞异常恶性增生所致。目前,世界卫生组织(WHO)根据脑胶质瘤的组织病理分化程度及细胞异型性特点,将胶质瘤按照恶性程度由低到高分为4个级别,1级恶性程度最低、预后最好,4级恶性程度最高、预后最差。由于恶性脑胶质瘤细胞易浸润到正常脑组织,通过手术不能完全切除,故复发率较高1。尽管对恶性胶质瘤采用了手术、替莫唑胺化疗和放疗的综合治疗,效果依然不理想,联合放化疗后一年生存率也仅为57%2,因此,积极探寻脑胶质瘤发生发展的分子机制有着重要的理论与临床意义。目前,对脑胶质瘤分子病理机制的研究,已从单个基因及其编码的蛋白到多

4、基因信号通路间交互调控的层面,为分子靶向治疗药物的研发与联合治疗提供更广阔的思路。Hippo-YAP信号通路是通过调控细胞增殖、凋亡和分化来调控器官大小的一个新兴信号通路,YAP(Yes-associated protein,即Yes相关蛋白)是其核心效应分子,Hippo信号通路激活后,通过抑制YAP的磷酸化与核转位,抑制其辅助转录的功能从而抑制细胞增殖,促进凋亡3。正常生理状态下,Hippo-YAP信号通路的调节处于精细的动态平衡中,保证细胞增殖和凋亡的平衡及内环境的稳态。许多研究发现,Hippo-YAP信号通路失调导致YAP激活,从而促进肿瘤细胞的生长,是近年来的研究热点。1. Hippo

5、-YAP信号通路组成Hippo-YAP信号通路由核心蛋白激酶模块、下游转录模块及上游调节模块三个相互连接的模块组成。Hippo-YAP信号通路最初是在果蝇中发现的,果蝇 Hippo 通路的核心蛋白激酶模块由Hpo (Hippo)、Sav (Salvador)、Wts (Warts)和 Mats 组成,它将细胞信号从细胞质膜传递到细胞核,Hpo和Sav结合后磷酸化Wts,Wts与小调节蛋白Mat结合共同磷酸化Yki(Yorkie蛋白),Yki磷酸化后失活,抑制下游因子如CyclinE (细胞周期蛋白),DIAP1 (Drosophila inhibitor of apoptosis 1,果蝇凋亡

6、抑制蛋白1)等表达,抑制组织细胞生长4。果蝇Hippo-YAP信号通路各组成成分在哺乳动物中都有对应的分子,目前研究显示,哺乳动物Hippo-YAP信号通路核心蛋白激酶模块包括MST1/2(mammalian STE20-like protein kinase 1/2)、WW45(also called Salvador1)、LATS1/2(large tumor suppressor 1/2)、Mob1(MOB kinase activator)、YAP/ TAZ(transcriptional co-activator with PDZ-binding motif)等;下游转录模块为TEA

7、D家族中TEAD1/4等5;上游调节模块由Kibra、非典型钙连蛋白Fat、NF2(神经纤维瘤蛋白)6等组成。当核心激酶模块的MST1/2和WW45结合后,磷酸化LATS1/2,LATS1/2与Mob结合后共同磷酸化YAP/TAZ,磷酸化的YAP/TAZ滞留于胞质中被降解或与14-3-3蛋白结合,不能入核与转录因子TEAD 结合,抑制了Survivin(生存素)、CTGF(Connective Tissue Growth Factor,结缔组织生长因子) 等凋亡负性调节子转录,实现生长抑制作用,此即Hippo-YAP信号通路的激活状态;反之,未被磷酸化的YAP转位到细胞核,与TEAD家族转录因

8、子结合,调节靶基因CYR61(富含半胱氨酸蛋白61)、BIRC5(细胞凋亡抑制因子)及AREG(双调蛋白)等的转录7,此为Hippo-YAP信号通路的失活状态。因此,YAP的磷酸化水平和定位常常起到衡量Hippo通路活性的作用,Hippo通路上下游模块,通过MST1/2、WW45、LATS1/2、Mob、YAP/ TAZ等核心蛋白激酶模块相互作用,构成细胞信号从细胞质膜到细胞核的传导8(图1)。 图1. 哺乳动物Hippo-YAP信号通路。(1)主要组成:上游调节模块包括Kibra、NF2、AMOT等;核心激酶模块由MST1/2、LATS1/2和YAP/TAZ组成;下游调控模块主要为TEAD家

9、族成员。(2)Hippo通路激活状态(左),磷酸化的YAP/TAZ滞留于胞质中被降解或与14-3-3蛋白结合,不能入核与转录因子 TEAD 结合。(3)Hippo通路失活状态(右),未被磷酸化的YAP/TAZ转位到细胞核,与TEAD家族转录因子结合,调节靶基因CTGF、CYR61、AREG、AMOTL2、BIRC5等的转录,促进细胞增殖、抑制凋亡、促进细胞上皮-间质转化(EMT)和促进侵袭迁移。图来源于Hansen et al. , Trends in cell biology, 2015.2. YAP结构与功能2.1 YAP的结构YAP是Hippo信号通路核心效应分子,为65 kD富含脯氨酸

10、蛋白,1994年Sudol发现其绑定于非受体酪氨酸蛋白激酶Src家族成员c-Yes的SH3基序,并将其命名为Yes 相关蛋白,包含488个氨基酸4。后来的研究发现,YAP包含YAP1和YAP2两个变异体,大小分别为488氨基酸和472氨基酸。YAP的结构由氨基末端富脯氨酸结构域、TEAD结合区域、WW 结构域、SH3 绑定基序、14-3-3结合位点、CC 结构域、转录激活区以及羧基末端的 PDZ 绑定基序组成9(图2)。WW结构域与一些转录因子的PPxY模体结合,这些转录因子包括:p73、PTCH1等10,PDZ 绑定基序与许多跨膜蛋白和骨架蛋白的PDZ结构域相结合9,YAP的羧基末端具有转录

11、激活结构域却没有DNA结合结构域,与转录因子结合起转录共激活作用,因此被归类为转录共激活子。 图2 YAP结构组成。YAP2氨基末端P-rich (富含脯氨酸结构域)、TEAD binding(TEAD家族转录因子结合区域)、两个WW (WW结构域)、SH3 binding (SH3绑定基序)、CC (CC结构域)、transactivation (转录激活区)以及PDZ-BM (羧基末端PDZ绑定基序)组成。YAP1只含一个WW 结构域,其余结构与YAP2相同。图来源于Zhu et al. , Acta biochimica et biophysica Sinica, 2015.2.2调节细

12、胞增殖和凋亡内环境稳定主要由细胞增殖和凋亡的动态平衡来维持。Hippo-YAP信号通路激活,促进YAP磷酸化,使其滞留于胞质中,不能入核与转录因子 TEAD 结合,抑制了Survivin、CTGF、GSK3、P53等的转录;反之,未磷酸化的YAP入核,与TEAD家族转录因子结合,调节靶基因转录促进细胞的增殖和抑制凋亡5。生理状态下,Hippo-YAP信号通路的调节处于动态平衡中,保证细胞增殖和凋亡的平衡及内环境的稳态。在卵巢癌组织中,YAP呈高表达,YAP增强卵巢癌细胞对顺铂和紫杉醇等化疗药物的耐药性,入核与TEAD结合,促进卵巢癌细胞的增殖和抑制凋亡11。Baia等人报道,在人脑膜瘤中YAP

13、1呈高表达,过表达YAP1能抑制顺铂诱导的细胞凋亡,促进脑膜瘤细胞增殖和抑制凋亡12。综上所述,Hippo-YAP信号通路主要通过YAP调节细胞增殖和凋亡。2.3 调节细胞侵袭迁移细胞侵袭迁移到周围组织,需要细胞-细胞粘附结构动态的组装和拆卸,肿瘤细胞侵袭和迁移能力增强可依赖于细胞-细胞粘附减弱和细胞对细胞外基质粘附结构稳定性减弱,YAP减弱细胞间紧密连接,从而增强肿瘤细胞侵袭能力13。在肺腺癌,AMOT螯合YAP/TAZ使其滞留于胞质中并抑制入核,抑制YAP靶基因CYR61转录,增强细胞间紧密连接。CYR61可通过与整合素3、5相结合促进细胞侵袭与迁移14。有报道,在非小细胞肺癌中,ERK1

14、/2通过抑制YAP活性,并抑制其靶基因CTGF,Gli2,BIRC5转录,抑制细胞侵袭迁移15。所以,Hippo信号通路失活,YAP去磷酸化入核,促进靶基因转录,减弱细胞间紧密连接,促进细胞侵袭迁移。2.4调节上皮细胞-间质转化和细胞间接触抑制上皮细胞-间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)是指具有顶-底极性特征的上皮细胞失去细胞极性,失去了细胞间连接的约束,变成可以自由移动的间质细胞的过程16。在乳腺癌中,雌激素受体阴性乳腺上皮细胞(MCF-10A)YAP呈高表达,细胞接触抑制能力减弱,细胞形态发生改变,细胞间连接变得疏松,诱导上皮细胞向间质细

15、胞转化,上皮细胞标志性的E-钙粘蛋白表达下降,间质细胞标志性的N-钙粘蛋白和波形蛋白表达增高,细胞侵袭能力增强17。心脏发育过程中,YAP1与Smad2/3/4相互作用,促进间质细胞标志的Snail、Twist1、Slug分子表达,房室瓣上皮间质化,导致心肌细胞畸形发育18。YAP1与KRAS协作促进激活剂蛋白家族转录因子(AP-1)FOS转录,促进EMT,延长肿瘤生存期16。所以,YAP促进细胞发生上皮-间质转化,细胞与细胞接触抑制丧失,导致细胞畸形生长,从而使人体组织和器官呈病态发展。3. Hippo-YAP信号通路与脑胶质瘤3.1 YAP在脑胶质瘤中的表达YAP广泛存在于各种细胞(上皮细

16、胞、性腺细胞、肌肉细胞等)胞质和胞核中。但是,在绝大部分恶性肿瘤,如:乳癌、肝癌、肺癌、脑胶质瘤等中,YAP表达水平增高19,提示YAP与肿瘤的发生发展密切相关。Orr等在264胚胎及正常成人脑组织标本(包括正常非瘤脑组织和脑胶质瘤)中研究发现,成人大脑皮质YAP1表达较低,毛细胞型星型胶质瘤、儿童脑胶质瘤患者YAP1表达水平也不高,但胚胎和成人的非瘤脑组织YAP1表达有所升高,浸润型星形脑胶质瘤和少突神经胶质瘤YAP1呈高表达,是非瘤脑组织YAP1表达量的2倍。另外,低级别脑胶质瘤YAP1核阳性率不到1%,胶质母细胞瘤等高级别恶性胶质瘤YAP1胞核阳性率大于10%,且脑胶质瘤级别与YAP1蛋

17、白表达水平呈明显正相关20。Fernandez等人发现,作为儿童最为常见的成神经管细胞瘤,小脑颗粒神经元前体YAP1呈高表达且入核增多,磷酸化LAST1蛋白水平降低,YAP1入核与IRS1 (胰岛素受体底物)和TEAD1结合,促进Gli2表达21。综上所述,YAP在脑胶质瘤呈高表达,且随着肿瘤级别升高YAP表达量和核阳性率呈升高趋势。 3.2 YAP促进脑胶质瘤的增殖与侵袭很多研究表明,Hippo-YAP信号通路激活可抑制肿瘤发展。Hippo-YAP信号通路上游调节子NF2通过抑制YAP的活性,抑制肿瘤生长22。高级别脑胶质瘤中NF2呈低表达,NF2通过激活LAST2,促进YAP磷酸化和抑制-

18、catenin转录活性,抑制脑胶质瘤细胞增殖、诱导凋亡;且过表达NF2的脑胶质瘤小鼠模型中,不论在皮下还是颅内都明显抑制肿瘤生长;NF2还可增强脑胶质瘤细胞对5-氟尿嘧啶化疗及放疗敏感性,从而抑制脑胶质瘤细胞增殖23。在脑膜瘤细胞中敲除NF2导致YAP蛋白升高并入核,促进Cyclin E1转录,导致细胞接触性抑制作用丧失,促进细胞非依赖性生长和分化,促进细胞增殖24 。有报道,正常脑组织中未观察到LATS1/ 2甲基化,人脑星形胶质瘤中LATS1/2甲基化频率明显升高,且随着胶质瘤级别增高,LATS1/ 2甲基化频率呈升高趋势,YAP活性增高,导致细胞增殖25。在恶性脑胶质瘤中,-干扰素和替莫

19、唑胺联合治疗,能增强脑胶质瘤化疗的效果,其机制是通过诱导内源性早幼粒细胞白血病基因,促进抗肿瘤因子p73在核中聚集,增强与YAP融合,促进细胞凋亡,达到更好的脑胶质瘤治疗效果26。在胶质母细胞瘤中,mTORC2 (哺乳动物雷帕霉素靶蛋白)通过促进AMOTL2 (血动蛋白样蛋白分子)磷酸化,促进YAP靶基因CTGF/CYR61转录,促进胶质母细胞瘤细胞侵袭、迁移27。如上所述,Hippo-YAP信号通路任何元件表达异常,可激活YAP,促进脑胶质瘤细胞增殖、抑制凋亡和增强侵袭迁移能力,促进脑胶质瘤发展。3.3 YAP在脑胶质瘤的诊断与治疗方面的意义多种恶性肿瘤中YAP呈高表达,可达正常组织5倍,并

20、与肿瘤级别和分型有关28。Orr等人发现,恶性脑胶质瘤中YAP1表达量,是非瘤脑组织的2倍,胶质母细胞瘤YAP1胞核阳性率大于10%,且与患者中位生存期呈负相关,YAP1可充当胶质母细胞瘤预后标志物20。Modena等在24例室管膜细胞瘤标本中发现,与正常脑组织相比,YAP1呈高表达,且存在许多染色体缺失,如:2q23、7p21、12p等,这些异常染色体位点与肿瘤的定位、复发有紧密联系,故认为YAP1可能是室管膜瘤潜在的诊断靶点29 。伦勃朗数据库数据也显示,YAP1表达量与患者预后呈负相关,在2、3、4级脑胶质瘤患者中,YAP1表达量较高,患者中位生存期较短,YAP1水平对人脑胶质瘤预后有指

21、导作用20。综上所述,YAP蛋白水平与脑胶质瘤预后呈负相关,可望充当脑胶质瘤有潜力的生物标志物和治疗靶点。4. 小结和展望如前所述,Hippo-YAP信号通路对人脑胶质瘤发展有重要影响,YAP对人脑胶质瘤预后有重要意义。但是,要将YAP作为脑胶质瘤诊治与预后的靶点与生物标志物,尚需更多的研究。例如: 1. 有些基因对肿瘤的放化疗有增敏或是抵抗的作用,那么,下调YAP能否增敏放化疗效果?或者,高水平YAP对于化疗有否抵抗作用?2.有报道,血液、脑脊液、尿液中存在脑胶质瘤循环标志物,如:循环肿瘤细胞、胞外膜泡、核酸30,其中是否有与YAP相关联的标志物?3. 胶质瘤术后极易复发,继发性胶质瘤中YA

22、P水平又会如何呢?与原发性肿瘤有何区别?这些都是值得探讨的问题。随着Hippo-YAP信号通路研究深入,清楚其对脑胶质瘤发生发展的机制,将为脑胶质瘤早期诊断、治疗及预后提供指导。参 考 文 献1Lu Y, Xiao L, Liu Y, et al. MIR517C inhibits autophagy and the epithelial-to-mesenchymal (-like) transition phenotype in human glioblastoma through KPNA2-dependent disruption of TP53 nuclear translocatio

23、n J. Autophagy, 2015, 0.2Oike T, Suzuki Y, Sugawara K, et al. Radiotherapy plus concomitant adjuvant temozolomide for glioblastoma: Japanese mono-institutional results J. PloS one, 2013, 8(11): e78943.3Yu F X, Guan K L. The Hippo pathway: regulators and regulations J. Genes & development, 2013,

24、27(4): 355-71.4Zhu C, Li L, Zhao B. The regulation and function of YAP transcription co-activator J. Acta biochimica et biophysica Sinica, 2015, 47(1): 16-28.5Xia Y, Zhang Y L, Yu C, et al. YAP/TEAD co-activator regulated pluripotency and chemoresistance in ovarian cancer initiated cells J. PloS one

25、, 2014, 9(11): e109575.6Wilson K E, Li Y W, Yang N, et al. PTPN14 forms a complex with Kibra and LATS1 proteins and negatively regulates the YAP oncogenic function J. The Journal of biological chemistry, 2014, 289(34): 23693-700.7Hansen C G, Moroishi T, Guan K L. YAP and TAZ: a nexus for Hippo signa

26、ling and beyond J. Trends in cell biology, 2015, 25(9): 499-513.8Sebio A, Lenz H J. Molecular Pathways: Hippo Signaling, a Critical Tumor Suppressor J. Clinical cancer research : an official journal of the American Association for Cancer Research, 2015, 9Guo L, Teng L. YAP/TAZ for cancer therapy: op

27、portunities and challenges (review) J. International journal of oncology, 2015, 46(4): 1444-52.10Iglesias-Bexiga M, Castillo F, Cobos E S, et al. WW domains of the yes-kinase-associated-protein (YAP) transcriptional regulator behave as independent units with different binding preferences for PPxY mo

28、tif-containing ligands J. PloS one, 2015, 10(1): e0113828.11Xia Y, Chang T, Wang Y, et al. YAP promotes ovarian cancer cell tumorigenesis and is indicative of a poor prognosis for ovarian cancer patients J. PloS one, 2014, 9(3): e91770.12Baia G S, Caballero O L, Orr B A, et al. Yes-associated protei

29、n 1 is activated and functions as an oncogene in meningiomas J. Molecular cancer research : MCR, 2012, 10(7): 904-13.13Gumbiner B M, Kim N G. The Hippo-YAP signaling pathway and contact inhibition of growth J. Journal of cell science, 2014, 127(Pt 4): 709-17.14Hsu Y L, Hung J Y, Chou S H, et al. Ang

30、iomotin decreases lung cancer progression by sequestering oncogenic YAP/TAZ and decreasing Cyr61 expression J. Oncogene, 2015, 34(31): 4056-68.15You B, Yang Y L, Xu Z, et al. Inhibition of ERK1/2 down-regulates the Hippo/YAP signaling pathway in human NSCLC cells J. Oncotarget, 2015, 6(6): 4357-68.1

31、6Shao D D, Xue W, Krall E B, et al. KRAS and YAP1 converge to regulate EMT and tumor survival J. Cell, 2014, 158(1): 171-84.17Overholtzer M, Zhang J, Smolen G A, et al. Transforming properties of YAP, a candidate oncogene on the chromosome 11q22 amplicon J. Proceedings of the National Academy of Sci

32、ences of the United States of America, 2006, 103(33): 12405-10.18Zhang H, Von Gise A, Liu Q, et al. Yap1 is required for endothelial to mesenchymal transition of the atrioventricular cushion J. The Journal of biological chemistry, 2014, 289(27): 18681-92.19Iwasa H, Maimaiti S, Kuroyanagi H, et al. Y

33、es-associated protein homolog, YAP-1, is involved in the thermotolerance and aging in the nematode Caenorhabditis elegans J. Experimental cell research, 2013, 319(7): 931-45.20Orr B A, Bai H B, Odia Y, et al. Yes-Associated Protein 1 Is Widely Expressed in Human Brain Tumors and Promotes Glioblastom

34、a Growth J. J Neuropath Exp Neur, 2011, 70(7): 568-77.21Fernandez L A, Northcott P A, Dalton J, et al. YAP1 is amplified and up-regulated in hedgehog-associated medulloblastomas and mediates Sonic hedgehog-driven neural precursor proliferation J. Genes & development, 2009, 23(23): 2729-41.22Hong

35、 L X, Cai Y B, Jiang M T, et al. The Hippo signaling pathway in liver regeneration and tumorigenesis J. Acta Bioch Bioph Sin, 2015, 47(1): 46-52.23Lau Y K, Murray L B, Houshmandi S S, et al. Merlin is a potent inhibitor of glioma growth J. Cancer research, 2008, 68(14): 5733-42.24Striedinger K, Vand

36、enberg S R, Baia G S, et al. The Neurofibromatosis 2 Tumor Suppressor Gene Product, Merlin, Regulates Human Meningioma Cell Growth by Signaling through YAP J. Neoplasia, 2008, 10(11): 1204-12.25Jiang Z, Li X, Hu J, et al. Promoter hypermethylation-mediated down-regulation of LATS1 and LATS2 in human astrocytoma J. Neuroscience research, 2006, 5

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