标准解读

《GB 4789.3-2010 食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠菌群计数》与《GB/T 4789.3-2008 食品卫生微生物学检验 大肠菌群计数》相比,主要在以下几个方面有所不同:

  1. 标准性质的改变:最显著的变化是从推荐性国家标准(GB/T)转变为强制性国家标准(GB),意味着《GB 4789.3-2010》中的要求对所有相关食品企业具有法律约束力,必须执行。

  2. 适用范围调整:《GB 4789.3-2010》在适用范围上可能进行了微调,以适应食品安全国家标准体系的最新要求,确保更广泛地覆盖各类食品的微生物检测需求。

  3. 检验方法的更新:新版标准可能引入或修订了大肠菌群计数的方法,包括但不限于采用更精确、灵敏的检测技术,改进了样品前处理步骤,或是优化了培养条件和判读标准,以提高检测的准确性和效率。

  4. 限量标准的设定:根据食品安全形势的发展,《GB 4789.3-2010》可能会对食品中大肠菌群的允许限量做出新的规定,这些变化反映了对公众健康保护的加强以及对食品质量控制要求的提升。

  5. 术语和定义的明确:为统一认识,新标准可能对“大肠菌群”及相关检验术语给出了更精确的定义,帮助检验人员准确理解和执行标准。

  6. 采样和分析程序的规范:在样品的采集、保存、运输及实验室分析流程上,新标准可能提供了更加详细的操作指导,确保检验过程的标准化和规范化。

  7. 质量控制要求的增强:为了保证检验结果的可靠性,《GB 4789.3-2010》可能增设或强化了内部质量控制措施和实验室间比对试验的要求。


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  • 2010-03-26 颁布
  • 2010-06-01 实施
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文档简介

中华人民共和国国家标准010食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠菌群计数 of 华人民共和国卫生部发布 2010布 2010施 010 I 前 言 本标准代替 品卫生微生物学检验 大肠菌群计数。 本标准与 要修改如下: 修改了标准的中英文名称; “第二法 大肠菌群平板计数法”的平板菌落数的选择范围修改为“ 15 150 删除了“第三法 大肠菌群 试片法”。 本标准的附录 A、附录 本标准所代替标准的历次版本发布情况为: T T B 010 1 食品安全国家标准 食品微生物学检验 大肠菌群计数 1 范围 本标准规定了食品中大肠菌群( 数的方法。 本标准适用于食品中大肠菌群的计数。 2 术语和定义 肠菌群 在一定培养条件下能发酵乳糖、产酸产气的需氧和兼性厌氧革兰氏阴性无芽胞杆菌。 可能数 基于泊松分布的一种间接计数方法。 3 设备和材料 除微生物实验室常规灭菌及培养设备外,其他设备和材料如下: 温培养箱: 36 1 。 箱: 2 5 。 温水浴箱: 46 1 。 平:感量 0.1 g。 质器。 荡器。 菌吸管: 1 度)、 10 0.1 度)或微量移液器及吸头。 菌锥形瓶:容量 500 菌培养皿:直径 90 或 色管或精密 纸。 落计数器。 4 培养基和试剂 桂基硫酸盐胰蛋白胨( 汤:见附录 A 中 010 2 绿乳糖胆盐( 汤:见附录 A 中 晶紫中性红胆盐琼脂( 见附录 A 中 酸盐缓冲液:见附录 A 中 菌生理盐水:见附录 A 中 菌 1 附录 A 中 菌 1 附录 A 中 010 3 第一法 大肠菌群 数法 5 检验程序 大肠菌群。 图1 大肠菌群 数法检验程序 6 操作步骤 品的稀释 体和半固体样品: 称取 25 g 样品 ,放入盛有 225 酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质杯内 , 8000 r/10000 r/质 1 2 放入盛有 225 酸盐缓冲液或生理盐水的无菌均质袋中,用拍击式均质器拍打 1 2 成 1:10 的样品匀液。 体样品:以无菌吸管吸取 25 品置盛有 225 酸盐缓冲液或生理盐水的无菌锥形瓶(瓶内预置适当数量的无菌玻璃珠)中,充分混匀,制成 1:10 的样品匀液。 品匀液的 应在 间,必要时分别用 1 1 节。 36 1 48h2148 h2 样 25 g(品 +225 释液,均质 10 倍系列稀释 选择适宜 3 个连续稀释度的样品匀液,接种 汤管 产 气 不产气 汤不产气 产 气 大肠菌群阳性 大肠菌群阴性 查 报告结果 010 4 1 菌吸管或微量移液器吸取 1:10 样品匀液 1 管壁缓缓注入 9 酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中(注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面),振摇试管或换用 1 支 1 菌吸管反复吹打,使其混合均匀,制成 1:100 的样品匀液。 据对样品污染状况的估计,按上述操作,依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释1 次,换用 1 支 1 菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕,全过程不得超过 15 发酵试验 每个样品,选择 3个适宜的连续稀释度的样品匀液(液体样品可以选择原液),每个稀释度接种 3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨( 汤,每管接种 1接种量超过 1 用双料 36 1 培养 24 h2 h,观察倒管内是否有气泡产生, 24 h2 未产气则继续培养至 48 h2 h,产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。 发酵试验 用接种环从产气的 环, 移种于煌绿乳糖胆盐肉汤 ( 管中, 36 1 培养 48 h2 h,观察产气情况。产气者,计为大肠菌群阳性管。 肠菌群最可能数(报告 按 索 附录 B),报告每 g( 品中大肠菌群的 第二法 大肠菌群平板计数法 7 检验程序 大肠菌群平板计数法的检验程序见图 2。 图2 大肠菌群平板计数法检验程序 8 操作步骤 检 样 25 g(品 +225 释液,均质 10 倍系列稀释 36 118h24汤36 124h48 个 3 个适宜稀释度的样品匀液,接种 板 010 5 品的稀释 按 板计数 选取 2个 3个适宜的连续稀释度 , 每个稀释度接种 2个无菌平皿,每皿 1 时 取 1 及时将 15 20 6 的结晶紫中性红胆盐琼脂( 倾注于每个平皿中。小心旋转平皿,将培养基与样液充分混匀,待琼脂凝固后,再加 3 4 转平板,置于 36 1 培养 18 h 24 h。 板菌落数的选择 选取菌落数在 15 150 间的平板,分别计数平板上出现的典型和可疑大肠菌群菌落。典型菌落为紫红色,菌落周围有红色的胆盐沉淀环,菌落直径为 0.5 更大。 实试验 从 板上挑取 10 个不同类型的典型和可疑菌落,分别移种于 汤管内, 36 1 培养 24 h 48 h,观察产气情况。凡 汤管产气,即可报告为大肠菌群阳性。 肠菌群平板计数的报告 经最后证实为大肠菌群阳性的试管比例乘以 乘以稀释倍数,即为每 g( 品中大肠菌群数。例: 10 00个典型和可疑菌落,挑取其中 10个接种 证实有 6个阳性管, 则该样品的大肠菌群数为: 1006/10104/g( =05 g( 010 6 附录A (规范性附录) 培养基和试剂 桂基硫酸盐胰蛋白胨(汤 分 胰蛋白胨或胰酪胨 20.0 g 氯化钠 5.0 g 乳糖 5.0 g 磷酸氢二钾( g 磷酸二氢钾( g 月桂基硫酸钠 0.1 g 蒸馏水 1 000 mL 制法 将上述成分溶解于蒸馏水中,调节 装到有玻璃小倒管的试管中,每管 10 121 高压灭菌 15 绿乳糖胆盐(汤 分 蛋白胨 10.0 g 乳糖 10.0 g 牛胆粉( 液 200 绿水溶液 13.3 馏水 800 mL 制法 将蛋白胨、乳糖溶于约 500 入牛胆粉溶液 200 20.0 00 节 用蒸馏水稀释到 975 节 加入 绿水溶液 13.3 蒸馏水补足到 1 000 棉花过滤后,分装到有玻璃小倒管的试管中,每管 10 121 高压灭菌 15 晶紫中性红胆盐琼脂(分 蛋白胨 7.0 g 酵母膏 3.0 g 乳糖 10.0 g 氯化钠 5.0 g 胆盐或 3号胆盐 1.5 g 中性红 g 结晶紫 g 琼脂 15 g 18 g 蒸馏水 1 000 mL B 010 7 法 将上述成分溶于蒸馏水中,静置几分钟,充分搅拌,调节 沸 2 培养基冷却至 45 50 倾注平板。使用前临时制备,不得超过 3 h。 酸盐缓冲液 分 磷酸二氢钾( 34.0 g 蒸馏水 500 mL 制法 贮存液:称取 34.0 00 大约 175 氢氧化钠溶液调节蒸馏水稀释至 1 000 稀释液:取贮存液 蒸馏水稀释至 1 000 装于适宜容器中, 121 高压灭菌 15 无菌生理盐水 成分 氯化钠 8.5 g 蒸馏水 1 000 制法 称取 000 121 高压灭菌 15 1 成分 40.0 g 蒸馏水 1000 制法 称取 40 000 121 高压灭菌 15 1 成分 90 馏水 1 000 制法 移取浓盐酸 90 蒸馏水稀释至 1 000 121 高压灭菌 15 010 8 附录B (规范性附录) 大肠菌群最可能数(索表 大肠菌群最可能数(索表 每 g( 样中大肠菌群最可能数( 检索见表 肠菌群最可能数(索表 阳性管数 95%可信限 阳性

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