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As a new drug carrier,liposomes has the effect of protecting the core material encapsulated and improving the bioavailability of drugs.As the core material, Vitamin C was prepared to Vitamin C liposomes and Vitam in C nanoliposomes using dynamic high-pressure microfluidization (DHPM) as a core technology which combined with the traditional method of liposomal preparation. In addition, both the physical and chemical properties of liposomes (mean particle size, encapsulation efficiency, morphology, stability, time-controlled releasing,) and bioavailability (antioxidant capacity and skin permeability.) were characterized.The analysis method of determinating entrapment efficiency of vitamin C liposomes was established:separated free vitamin C by dialysis, breaken the liposomes by methanol emulsion, determinated Vitamin C content by UV spectrophotometry.The traditional liposomal preparation methods and DHPM combined with the traditional method of liposomal preparation were developed to prepare vitamin C liposomes and vitamin C nanoliposomes, respectively. Each factor was analyzed and the orthogonal test was taken to optimize the formula.The optimized formula of vitamin C liposomes as follows:the preparation temperature was 65,the concentration of vitamin C was 2 mg/ml, the mass ratio of vitamin C and lipids was 1:25, the mass ratio of phospholipid and cholesterol was 5:1, the mass ratio of Tween-80 and lipids was 2:10,the mass volume ratio of phospholipid and ethanol was 2.5:100. The optimized formula of vitamin C nanoliposomes as follows:the preparation temperature was 60,the concentration of vitamin C was 5 mg/ml, the mass ratio of vitamin C and lipids was 1:10, the mass ratio of phospholipid and cholesterol was 4:1, the mass ratio of Tween-80 and lipids was 4:10,the mass volume ratio of phospholipid and ethanol was 10:100,the treatment pressure and times were 120 MPa and 4.The physicochemical properties of both vitamin C liposomes and vitamin C nanoliposomes were evaluated.Vitamin C nanoliposomes had advantages over vitamin C liposomes with the encapsulation efficiency(47.166.28%),the mean particle size(73.94.4 nm),showed a solid spherical morphology,good storage and vivo stability,significantly slow release.Compared the antioxidant capacity and the skin penetration of vitamin C liposomes and vitamin C nanoliposomes, results showed that, compared to free vitamin C,the antioxidant capacity of two types of liposomes was not affected; he order of skin penetration was:Vitamin C nanoliposomes Vitamin C liposomes Free Vitamin C.【关键词】维生素C 动态高压微射流 纳米脂质体 稳定性 皮肤渗透【英文关键词】Vtamin C DHPM Nanoliposomes Stability Skin penetration【目录】维生素C纳米脂质体的制备及其性质的研究摘要3-4ABSTRACT4-5第一章 前言9-281.1 脂质体研究现状9-231.1.1 脂质体简介9-111.1.2 脂质体分类11-121.1.3 脂质体的特点12-131.1.4 脂质体的制备方法13-161.1.5 纳米脂质体的概述161.1.6 脂质体理化性质的评价16-171.1.7 脂质体的应用概况17-231.2 维生素C简介23-241.2.1 维生素C的结构及性质231.2.2 维生素C的美容功效23-241.3 动态高压微射流技术简介24-251.3.1 动态高压微射流技术概述241.3.2 动态高压微射流技术国内外研究现状24-251.4 选题意义25-261.5 研究内容及创新点26-28第二章 维生素C含量及脂质体包封率测定方法的建立28-352.1 主要试剂及仪器28-292.2 实验方法29-312.2.1 破乳剂的确定292.2.2 维生素C的测定29-302.2.3 分离方法的筛选30-312.2.4 维生素C脂质体包封率的测定312.3 结果与讨论31-342.3.1 破乳剂的确定31-322.3.2 维生素C的测定322.3.3 透析法测定维生素C脂质体的包封率32-342.4 本章小结34-35第三章 传统方法制备维生素C脂质体的研究35-473.1 主要试剂及仪器35-363.2 实验方法36-383.2.1 制备方法的筛选36-373.2.2 实验设计37-383.3 结果与讨论38-463.3.1 制备方法的筛选38-393.3.2 单因素实验结果39-433.3.3 正交实验结果43-453.3.4 验证实验结果45-463.4 本章小结46-47第四章 动态高压微射流技术制备维生素C纳米脂质体的研究47-614.1 主要试剂及仪器47-484.2 实验方法48-514.2.1 制备方法的筛选48-504.2.2 实验设计50-514.3 结果与讨论51-604.3.1 维生素C纳米脂质体制备方法的筛选51-524.3.2 单因素实验结果52-574.3.3 正交实验结果57-594.3.4 验证实验结果59-604.4 本章小结60-61第五章 维生素C脂质体与维生素C纳米脂质体理化性质及稳定性研究61-725.1 主要试剂及仪器61-625.2 实验方法62-645.2.1 脂质体的制备625.2.2 脂质体平均粒度大小及其分布的测定62-635.2.3 负染法透射电镜形态形貌观察635.2.4 脂质体的稳定性实验63-645.2.5 脂质体的缓释性实验645.3 结果与讨论64-705.3.1 脂质体的平均粒度大小及其分布64-655.3.2 脂质体的TEM形貌结构65-665.3.3 脂质体悬浮液的稳定性66-695.3.4 脂质体的缓释性69-705.4 本章小结70-72第六章 维生素C脂质体与维生素C纳米脂质体生物利用率的研究72-796.1 主要试剂及仪器72-746.2 实验方法74-766.2.1 脂质体的制备746.2.2 溶液的配制74-756.2.3 L-DOPA氧化酶抑制实验756.2.4 DPPH自由基清除实验756.2.5 体外透皮实验75-766.3 结果与讨论76-786.3.1 L-DOPA氧化酶抑制

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