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文档简介
ICSICS01.040.65
CCSB04TB
团体标准
T/NAIA×××-××××
规模化羊场羊球虫病诊断与防治技术规范
Technicalspecificationfordiagnosisandcontrolofsheepcoccidiosis
inlarge-scalesheepfarms
(征求意见稿)
××××-××-××发布××××-××-××实施
宁夏化学分析测试协会发布
发布
规模化羊场羊球虫病诊断与防治技术规范
1范围
本文件规定了规模化羊场羊球虫病诊断与防治技术的术语和定义、诊断、预防和治疗。
本文件适用于规模化羊场羊球虫病的防治。绵羊和山羊场参照执行。
2规范性引用文件
下列文件中的内容通过文中的规范性引用而构成本文件必不可少的条款。其中,注日期的引用
文件,仅该日期对应的版本适用本文件;不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)
适用于本文件。
GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法。
GB/T18647—2020动物球虫病诊断技术。
3术语和定义
下列术语和定义适用于本文件。
3.1羊球虫病goatsandsheepcoccidiosis
指由艾美耳属的多种球虫寄生在山羊或绵羊肠粘膜上皮细胞内引起的一种常见原虫性疾病。
4试剂与材料
4.1试剂
4.1.1蒸馏水。
4.2试剂配制
4.2.1饱和盐水:400g食盐,加入1000mL,边搅拌边加热,直至全部溶解,冷却至室温有少量盐
析出即为饱和盐水。
4.2.22.5%重铬酸钾溶液:25g重铬酸钾固体,加入开水至1000mL,边加入边搅拌,直至重铬
酸钾完全溶解后,冷却至室温,即为2.5%重铬酸钾溶液。
5仪器与设备
5.12L锥形瓶。
5.2滤网:60目、100目。
5.3100mL量筒。
2
5.4100mL烧杯。
5.5麦克马斯特计数板。
5.6光学显微镜等。
5.7电磁炉。
5.8100mL离心管。
6诊断
6.1流行病学调查
羊球虫病主要感染哺乳期和断奶后2~4周的羔羊(绵羊和山羊)。长途运输、饲养环境变化、
气温骤变、突然断奶等因素可诱发羊球虫病的发生。球虫随病羊和带虫羊的粪便直接排出体外,健
康羊食入具有感染能力的孢子化卵囊即可感染。
6.2临床症状诊断
食欲减退,精神萎靡、被毛粗乱、水样腹泻,部分羊出现血性腹泻,体温升高。
6.3病理变化诊断
肠黏膜和浆膜面出现淡黄色、褐色或白色的粟粒至豌豆大小的斑点或斑块;肠壁充血、出血,
并有肠黏膜脱落。
6.4病原检查
6.4.1样本采集
羊新鲜粪便不少于50g。
6.4.2操作方法
6.4.2.1将采集个体或群体新鲜羊粪便捣碎后取5g,放入100mL烧杯中加入适量蒸馏水。
6.4.2.2充分搅拌均匀,先使用60目滤网过滤,将滤液再使用100目滤网进行过滤。
6.4.2.3将滤液移入100mL离心管中,2500r/min离心10min。
6.4.2.4弃掉上清液,沉淀物中加入饱和盐水至60mL,充分搅拌均匀。
6.4.2.5吸取混悬液注满麦克马斯特计数板的2个计数室,静置5min。
6.4.2.6将麦克马斯特计数板置于显微镜下,用10×10的倍数数出每个计数室(1cm×1cm×0.15
cm=0.15cm3)内的所有球虫卵囊数,将两个计数室的卵囊数相加除以2即得卵囊平均值。对压线的
卵囊,按记上不记下、记左不记右处理。
6.4.2.7OPG计算公式:
OPG=(n1+n2)/2/0.15×60/5=A×200;
其中(n1+n2)/2为平均每个计数室内卵囊数A,5为所用粪便克数为5g,0.15为每个计数室有效体
积为0.15mL,60为粪液总体积为60mL。
6.4.2.8判定标准:
(1)OPG<1.0×104为轻度感染;
(2)OPG1.0×104~1.0×105为中度感染;
(3)OPG≥1.0×105为严重感染的判断标准。
6.5结果判定
根据6.1、6.2进行初步判断,符合特征可判定为疑似病例,确诊仍需按照6.3或6.4所规定的方法
进行实验室进行检测,符合6.3或6.4的特征判断为确诊病例。
7预防和治疗
7.1预防
7.1.1圈舍应清洁消毒,并保持干燥空栏3个月以上,可采用火燎的方式对圈舍进行1次消毒,以
彻底杀灭球虫卵囊;饲喂器具应经高温灭菌处理后方可使用。
7.1.2以感染强度和粪便垫料中孢子化卵囊量为主要监测指标,当其感染强度或粪便垫料中孢子化
卵囊量超过一定数值(OPG≥10000)和出现典型临床症状时及时给予治疗。
7.1.3病死羊尸体和粪便应进行无害化处理。
7.1.3在春、夏交接季节,给犊牛投服抗球虫药物以防止夏、秋两季的球虫病爆发。
7.2治疗
推荐药物:托曲珠利、磺胺甲氧嘧啶、
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