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文档简介
医学生物化学实验-教
案
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《医学生物化学实验》教案
第1次课2学时
实验项目3,5-二硝基水杨酸法(DNS法)测定还原糖
实验性质设计性实验
1、了解糖的还原性
教学目的和
2、掌握还原糖定量测定的原理和方法。
要求
3、熟悉分光光度计的使用方法。
教学重点与重点:绘制标准曲线的方法,分光光度计的使用原理和使用方法。
难点难点:标准曲线的应用。
1试.剂
(1)Img/mL葡萄糖标准溶液:准确称取干燥恒重的葡萄糖lOOmg,加少
量蒸僧水溶解后,以蒸储水定容至100mL,即含葡萄糖为1.0mg/mL。
(2)3,5-二硝基水杨酸试剂:称取6.3g3,5-二硝基水杨酸并量取262
mL2mol/LNaOH加到酒石酸钾纳的热溶液中(182g酒石酸钾纳溶于500
mL水中),再加5g结晶酚和5g亚硫酸氢钠溶于其中,搅拌溶解,冷却
实验材料
后定容到1000mL贮于棕色瓶中。
(3)未知浓度还原糖。
2材.料
小麦淀粉或玉米淀粉。
3器.材
分光光度计,天平,水浴锅,电炉,试管若干等。
一、实验原理★:在NaOH和丙三醇存在下,3,5-二硝基水杨酸(DNS)
与还原糖共热后被还原生成氨基化合物。在过量的NaOH碱性溶液中此化
合物呈桔红色,在540nm波长处有最大吸收,在一定的浓度范围内,还原
糖的量与光吸收值呈线性关系,利用比色法可测定样品中的含糖量。
OHNO2OHNH2
HOOC^^S>+还原糖—-HOOC—
NO2NO2
(DNS)(3-氨基一5一硝基水杨酸)?
黄色桔红色
二、实验步骤:
实验内容
1.取7支具塞刻度试管编号,按表1分别加入浓度为Img/mL的葡萄糖标准液、蒸僧
水和DNS试剂,配成不同浓度的葡萄糖反应液。
表1葡萄糖标准曲线制作
竹且lmg/ml葡萄糖蒸储水DNS葡萄糖含光密度值(OD.
标准液(mL)⑥(_)(mL)量(mg)540nm)
100.50.50
20.10.40.50.1
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30.20.30.50.2
40.30.20.50.3
50.40.10.50.4
60.500.50.5
7(未知浓度还原
、0.500.50.5
格)
将各管摇匀,在沸水浴中准确加热5min取出,冷却至室温,用蒸储水补足至
5mL,加塞后颠倒混匀,在分光光度计上进行比色。调波长540nm,用1号管调零
点,分别测出2~6号管的光密度值。
2.绘制标曲▲
以光密度值为纵坐标,葡萄糖含量(mg)为横坐标,在坐标纸上绘出标准曲线(电脑
Excel完成最好)。计算7号管还原糖的百分含量。
三、结果与计算▲:
计算出7号管光密度值的平均值,在标准曲线上分别查出相应的还原糖毫克数,
按下式计算出样品中还原糖和总糖的百分含量。
查曲线所得葡萄糖毫克数X提取液总体积/测定时取用体积
还原糖(%)=X
100%
样品毫克数
教学过程中师生活动设计
糖的还原性,具有还原性的糖结构有何特点?
提纲、板书设计
实验原理及反应方程式,实验步骤中表1及计算公式
1、为什么要设置空白对照?
作业
2、标准曲线的定义?
主要[1]《生物化学实验》,何幼鸾、汤文浩,华师出版社,2013
参考资料[2]《生物化学实验》,董晓燕主编,化学工业出版社,2010
1、让学生理解糖定量测定的原理及方法;
总结分析2、强调标准曲线的绘制要点;
3、需要和学生一起推导还原糖浓度的公式
《医学生物化学实验》教案
第2次课2学时
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实验项
糖的呈色反应和还原糖检验
目
实验性
验证性实验
质
教学目1.了解糖类某些颜色反应的原理
的和要2.学习应用糖的颜色反应鉴别糖类的方法
求
教学重重点:颜色反应鉴别糖的方法
点与难难点:鉴别糖的反应原理
点
1、仪器:试管及试管架、滴管、移液管及恒温水浴锅
实验材
2、试剂:莫氏试剂、塞氏试剂、托伦试剂;1%葡萄糖溶液、1%蔗糖溶液、1%淀粉溶
料
液、1%果糖溶液、1%阿拉伯糖溶液、1%半乳糖溶液
一、实验原理★:
a—蔡酚反应:糖在浓无机盐作用下,脱水生成糠醛衍生物,后者在浓硫
酸的作用下能与a—蔡酚生成紫红色物质,在糖液面与浓硫酸液面间出现紫色
环。但一些非糖物质对此反应也呈阳性
间苯二酚反应:在酸作用下,酮糖脱水生成羟甲基醛,后者可与间苯二酚
作用生成红色物质。此反应是酮糖的特异反应。醛糖在同样条件下呈色反应
慢。
托伦反应:戊糖在浓酸作用下脱水生成糠醛,后者可与间苯三酚结合生成
樱桃红色物质。本反应常用来鉴定戊糖,戊糖此反应最快,可以和其他糖类区
分。
二、操作步骤▲:
a—蔡酚反应:先取3支试管,分别加入1%葡萄糖溶液、1%淀粉溶液、1%蔗糖溶液,然
实验内后向3支试管中各加入2滴莫氏试剂,混匀。另外取1支试管,只加2滴莫氏试剂作为空
容白对照,倾斜4支试管,沿各试管壁缓慢加入浓硫酸约1.5mL,慢慢立起试管,切勿摇
动。试管中液体分成两层,浓硫酸在试液下面。在两液分界处有紫红色环出现。观察、记
录各管颜色。
间苯二酚反应:取3支试管,分别加入1%葡萄糖溶液、1%蔗糖溶液、1%果糖溶液
各0.5mL。再向各管分别加入塞氏试剂2.5mL,混匀。将3支试管同时置于沸水浴中,注
意观察颜色的变化及变化时间。
托伦反应:取3支试管,分别加入1%阿拉伯糖溶液、1%半乳糖溶液、1%葡萄糖溶
液各0.1mL,再向各管分别加入托伦试剂1mL,混匀。将3支试管同时置于沸水浴中,
观察、记录颜色的变化及颜变化的时间。
教学过程中师生活动设计
观察和记录各管颜色及颜色变化的时间后,说出各管颜色变化的原因。
提纲、板书设计
原理及操作步骤
1.简述a—蔡酚反应原理。
作业
2.可用何种颜色反应鉴别酮糖存在。
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主要[1]《生物化学实验》,何幼鸾、汤文浩,华师出版社,2013
参考资[2]《生物化学实验》,董晓燕主编,化学工业出版社,2010
料
总结分1、让学生掌握糖显色反应的原理;
析2、给学生强调注意观察各管颜色变化的时间
《医学生物化学实验》教案
第3次课2学时
实验项目蛋白质等电点和沉淀反应
实验性质基础性实验
1.了解蛋白质的两性解离性质。
教学目的和
2学.习测定蛋白质等电点的方法。
要求
3.了解蛋白质变性与沉淀的关系及沉淀蛋白质的方法以及其实用意义。
重点:学习测定蛋白质等电点的方法及沉淀蛋白质的方法。
教学重点
难点:蛋白质变性与沉淀的关系,沉淀的蛋白质不一定表现为变性;变性
与难点
的蛋白质不一定表现为沉淀。
(一)材料
新鲜鸡蛋
(二)试剂
1、0.4%酪蛋白醋酸钠溶液200mL
2、1.00mol/L醋酸溶液100mL
3、0.10mol/L醋酸溶液300mL
4、0.01mol/L醋酸溶液50mL
5、蛋白质溶液500mL
5%卵清蛋白溶液或鸡蛋清的水溶液(新鲜鸡蛋清:水=1:9)
6、pH4.7醋酸一醋酸钠的缓冲溶液100mL
实验材料7、3%硝酸银溶液10mL
8、5%三氯乙酸溶液50mL
9、95%乙醇250mL
10、饱和硫酸镀溶液250mL
11、硫酸镂结晶粉末10000mL
12、0.1mol/L盐酸溶液300mL
13、0.1mol/L氢氧化钠溶液300mL
14、0.05mol/L碳酸钠溶液300mL
15、甲基红溶液20mL
(三)器具
水浴锅、温度计、200mL锥形瓶、100mL容量瓶、吸管、试管及试管架
实验内容1.实验原理★:
蛋白质是两性电解质。在蛋白质溶液中存在下列平衡:
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COOH
P
NH2
童白质分子
COO-+七COO-+H.COOH
阴喜干鬃性离于阳离子
pH>pIpH=plpH<pl
最常用的方法是测其溶解度最低时的溶液pH值。
蛋白质的沉淀反应可分为两类。
(1)可逆的沉淀反应
此时蛋白质分子的结构尚未发生显著变化,除去引起沉淀的因素后,蛋
白质的沉淀仍能溶解于原来溶剂中,并保持其天然性质而不变性。如大多
数蛋白质的盐析作用或在低温下用乙醇(或丙酮)短时间作用于蛋白质。
提纯蛋白质时,常利用此类反应。
(2)不可逆沉淀反应
此时蛋白质分子内部结构发生重大改变,蛋白质常变性而沉淀,不再溶
于原来溶剂中。加热引起的蛋白质沉淀与凝固。蛋白质与重金属离子或某
些有机酸的反应都属于此类。
蛋白质变性后,有时由于维持溶液稳定的条件仍然存在(如电荷),
并不析出。因此变性蛋白质并不一定都表现为沉淀,而沉淀的蛋白质也未
必都已变性。
二、实验步骤:
(一)酪蛋白等电点的测定
(1)取同样规格的试管4支,按下表顺序分别精确地加入各试剂,然
后混匀。
蒸储水0.01mol/Ldig
0.1mol/L蜡1.0mol/L
试管号(mL酸
酸(mL)蜡酸(mL)
)(mL)
18.40.6-—
28.7-0.3—
38.0-1.0—
47.4--1.6
(2)向以上试管中各加酪蛋白的醋酸钠溶液1mL,加一管,摇匀一
管。此时1、2、3、4管的pH依次为5.9、5.5、4.7、3.5。观察其混浊度。
静置10分钟后,再观察其混浊度。最混浊的一管pH即为酪蛋白的等电
点。
(二)蛋白质的沉淀及变性
1、蛋白质的盐析
无机盐(硫酸镂、硫酸钠、氯化钠等)的浓溶液能析出蛋白质。盐的浓
度不同,析出的蛋白质也不同。
如球蛋白可在半饱和硫酸镂溶液中析出,而清蛋白则在饱和硫酸镂溶液
中才能析出。
由盐析获得的蛋白质沉淀,当降低其盐类浓度时,又能再溶解,故蛋
白质的盐析作用是可逆过程。
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加蛋白质溶液5mL于试管中,再加等量的饱和硫酸镂溶液,混匀后静
置数分钟则析出球蛋白的沉淀。倒出少量混浊沉淀,加少量水,观察是否
溶解,为什么?将管内容物过滤,向滤液中添加硫酸镂粉末到不再溶解为
止。此时析出沉淀为清蛋白。
取出部分清蛋白,加少量蒸储水,观察沉淀的再溶解。
2、重金属有穹子沉淀蛋白质:重金属离子与蛋白质结合成不溶于水的复合
物。
取1支・或管,加入蛋白质溶液2mL,再加3%硝酸银溶液1一2滴,振
荡试管,有沉淀产生。放置片刻,倾去上清液,向沉淀中加入少量的水,
沉淀是否溶解?为什么?
3、某些有方儿酸沉淀蛋白质
取1支试管,加入蛋白质溶液2mL,再加入lmL5%三氯乙酸溶液,振
荡试管,观察沉淀的生成。放置片刻倾出清液,向沉淀中加入少量水,观
察沉淀是否溶解。
4、有机溶?q」沉淀蛋白质
取1支试管,加入2mL蛋白质溶液,再加入2mL95%乙醇。观察沉淀的
生成(如果沉淀不明显,加点NaCl,混匀。
5、乙醇引声G的变性与沉淀
取3支试,管,编号。依下表顺序加入试剂:
试剂0.1mol/L
(mL蛋白质0.1mol/LpH4.7缓
氢氧化钠95%乙醇
)溶液盐酸溶液冲溶液
管号溶液
1111
2111
3111
振摇混匀后,观察各管有何变化。放置片刻向各管内加入水8mL,然后
在第2,3-省管中各加一滴甲基红,再分别用O.lmol/L醋酸溶液及
0.05mol/LE受酸钠溶液中和之。观察各管颜色的变化和沉淀的生成。每管再
加0.1mol/L盐酸溶液数滴,观察沉淀的再溶解。解释各管发生的全部现
象。
教学过程中师生活动设计
蛋白质沉淀原理,什么是蛋白质变性?根据性质推测其应用
提纲、板书设计
原理及简要操作步骤
1.什么是等电点?
作业2.临床上为什么可以用蛋清或牛乳解救误服金属盐的病人?
主要[1]《生物4匕学实验》,何幼鸾、汤文浩,华师出版社,2013
参考资料[2]《生物伙,学实验教程》,王金亭,方俊主编,华中科技大学出版社,
2010
1、通过原土里分析,帮助学生理解“沉淀的蛋白质不一定表现为变性;变性
总结分析的蛋白质不一定表现为沉淀”;
2、重点区手山“可逆沉淀”与“不可逆沉淀”
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《医学生物化学实验》教案
第4次课2学时
实验项蛋白质和氨基酸显色反应
目
实验性基础性实验
质
教学目1.学习和了解常用的几种鉴定蛋白质与氨基酸的方法。
的和要
求2.了解蛋白质与氨基酸的显色反应原理。
教学重重点:蛋白质与氨基酸的显色反应原理。
点与难难点:鉴定蛋白质与氨基酸的方法。
八占、、
试剂:0.5%醋酸铅1mL、10%NaOH、1%CUSO
实验材4
器具:水浴锅、温度计、200mL锥形瓶、100mL容量瓶、吸管、试管及试管
料
架
一、实验原理★:
1.双缩服反应(biuretreaction)
蛋白质和多肽分子中肽键在稀碱溶液中与硫酸铜共热,呈现紫色或红色,此
反应称为双缩胭反应,双缩版反应可用来检测蛋白质水解程度。
2.苯环的黄色反应
Tyr(Trp)+浓硝酸一►黄色
Phe+少量浓硫酸+浓硝酸一>黄色
3.醋酸铅反应(半胱氨酸和胱氨酸)
R-SH+2NaOH-►R-OH+Na2S+H2O
Na2s+Pb2+―>PbS+2Na+
PbS+2HCl—►PbCb+H2s
二、实验步骤▲:
实验内1.双缩股反应(biuretreaction)
容取1支试管,加乳蛋白溶液(蛋清冰=1:9)约1mL和10%NaOH约2mL,
摇匀,再加l%CuSCU溶液2滴,随加随摇。观察现象,记录。
2.苯环的黄色反应
问6个试营中按卜表力口试剂,观祭现象开记求。鸡蛋清溶液(蚩清:水=1:9)
管号123456
材料鸡蛋清指甲头发0.5%苯酚0.3%色氨酸0.3%酪氨酸
液
(滴)4少许少许444
浓硝酸22020444
(滴)
现象
逐滴加
10%NaOH
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后现象变
化
3.醋酸铅反应
0.5%醋酸铅1mL、10%NaOHlmL、卵清蛋白1mL三样试剂混匀加热,观
察现象。然后冷却至20~30℃,加10滴浓HCL,再将湿润的醋酸铅试纸放于
管口,加热,嗅其气味同时观察试纸颜色变化。
教学过程中师生活动设计
含苯环的氨基酸有哪些?双缩版反应颜色与什么相关?
提纲、板书设计
原理及简要操作步骤
1.在实验室如何区分核酸和蛋白质?
作业
2.黄色反应中为何会出现深浅不一的黄色?
主要[1]《生物化学实验》,何幼鸾、汤文浩,华师出版社,2013
参考资
[2]《生物化学实验教程》,王金亭,方俊主编,华中科技大学出版社,2010
料
总结分1、实验过程中让学生重点观察颜色变化的过程;
析2、醋酸铅反应的每一步都要记录现象
《医学生物化学实验》教案
第5次课2学时
实验项糖的薄层层析
目
实验性基础性实验
质
教学目1.了解薄层层析的基本原理。
的和要2.熟悉薄层层析的操作过程。
求
教学重重点:掌握薄层层析的吸附原理。
点与难难点:掌握分配系数,Rf值。
/占、、、
实验材
四种糖样品、染色液、扩展剂、层析缸、层析板等
料
一、实验原理★:
薄层层析(简称TLC)是在吸附层析基础上发展起来的一种微量而快速的层析
法,它是在吸附剂或支持剂均匀涂布的薄层上进行的,故称薄层层析。为了使所
实验内要分析的样品各组分得到分离,必须选择合适的吸附剂。硅胶、氧化铝和聚酰胺
容是广泛采用的吸附剂,在吸附剂或支持剂中添加合适的粘合剂后再涂布,可使薄
层紧贴在玻璃板上。
糖是多羟基化合物在硅胶G薄层上展层时,被吸附的强弱有差异,同时在
展开剂中溶解性质也有差异。吸附力主要与糖的相对分子质量和羟基数有关,一
般为三糖〉二糖〉单糖,醛糖〉酮糖〉脱氧糖。经过适当的溶剂展开后,糖在薄
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板上的移动速度是戊糖〉己糖〉双糖〉三糖。
薄层层析与其他方法比有明显的优点:层析时间短、样品用量范围大(1圈-
0.5g)、观察结果方便、可以分离多种化合物等,其灵敏度比纸层析高10-100
倍,显色方法甚至可以用腐蚀性显色剂。而且薄层层析法操作方便,设备简单,
所以薄层层析法目前应用范围相当广泛。
二、实验步骤▲:
1.点样
选取制备好的薄板一块,在距底边1.5cm的直线上均匀选4个点。用毛细管
分别点上不同的糖样品于4个点,样品量控制在5-10隔,斑点直径不超过
3mm。点样完毕,立即用电热吹风机吹干样点。
2.展层
将薄板置于盛有层析溶剂的层折缸中,自下向上展层,当展层溶剂到达离薄
板顶端约1cm处时取出薄板,在溶剂前沿处作一记号,于80℃下烘干5min。
3.显色
除尽溶剂后,向薄层板上喷雾糖显色剂,于80℃下烘干lOmin,则各种糖分
别显出不同的颜色。
三、实验结果上・
(1)记下各斑点的位置、颜色,计算Rf值。
(2)鉴定混合糖中糖的种类,并绘出层析图谱。
教学过程中师生活动设计
还有哪些层板方法?
提纲、板书设计
原理及简要操作步骤
作业何谓Rf值?Rf值与什么因素有关?
《生物化学实验》,董晓燕主编,化学工业出版社,
主要参[1]2010
⑵《生物化学实验教程》,王金亭,方俊主编,华中科技大学出版社,
考资料2010
1、点样是本实验的关键,教师在指导学生操作时,强调点样要轻、快,稳、小
总结分
并且点样点要集中;
析2、施展£时,点储点不要浸如展层溶液中
《医学生物化学实验》教案
第6次课2学时
实验项酶的特性
目
实验性基础性实验
质
教学目掌握酶促反应速度的几个主要影响因素
的和要了解淀粉水解程度的鉴定。
求
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教学重重点:唾液淀粉酶催化的酶促反应;淀粉水解程度的判断。
点与难难点:酶活性的影响因素。
点
仪器:水浴锅、电炉、白瓷板、试管、量筒、漏斗、脱脂棉。
实验材
试剂:0.2%、0.5%淀粉液、0.3%NaCl、0.85%NaCl溶液、1%CUSC)4溶液、
料
l%Na2so4、pH=5.0、pH=8.0、pH=6.8缓冲溶液。
一、实验原理★:
温度与酶促反应速度关系密切。温度降低时,酶促反应速度降低以至完全
停止;随着温度升高,反应速度逐渐加快。在某一温度时反应速度达到最大
值,此温度称酶作用的最适温度。温度继续升高,反应速度反而下降。人体内
大多数酶的最适温度在37℃左右。
pH值也会影响酶促反应速度。因为酶本身是蛋白质,pH不仅影响酶蛋白分
子某些基团的解离,也影响底物的解离程度,从而影响酶与底物的结合。当酶
促反应速度达到最大值时的溶液pH值,称为该酶的最适pH。不同的酶最适
pH值不尽相同,人体多数酶的最适pH值在7.0左右。例如唾液淀粉酶的最适
pH值为6.8。
凡是能够提高酶活性,加快酶促反应速度的物质都称为酶的激活剂。例如
cr是唾液淀粉酶的激活剂。
凡是能够降低酶的活性,使酶促反应速度减慢,又不使酶变性的物质称为
酶的抑制剂。例如C/+是唾液淀粉酶的抑制剂。
在不同温度下,淀粉被唾液淀粉酶水解的程度不同,可由水解混合物遇碘显
现的颜色不同来判断:
淀粉(蓝色)f红色糊精(红色)一无色糊精(不显色)+麦芽糖(不显色)〉葡萄糖
实验内(不显色)
容二、实验步骤:
1.制备稀释50倍的唾液淀粉酶:用蒸储水漱口清除食物残渣,再含一口蒸储水
一分钟
后使其流入量筒并稀释50倍,混匀备用。
2温.度对酶促反应速度影响实验
(1)取试管3支,编号,各管按下表依次加入各种试剂。
__________温度对酶促反应速度影响实验加样表
管号123__________________
0.1%淀粉溶液(mL)1.51.51.5
稀释唾液(ml)111
煮沸唾液一一1
摇匀
水浴温度37℃0℃37℃____________
(2)水浴8min后,向各管中各滴加1滴KI-L溶液,混匀,观察各管颜色并
解释结果上
3.pH对酶促反应速度的影响实验
(1)取试管3支,编号,按下表依次加入各种试剂。
______________pH对酶促反应速度影响实验加样表________
管号123
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0.2%淀粉液(mL)222
PH5.0缓冲液(mL)3——
PH6.8缓冲液(mL)—3
PH8.0缓冲液(mL)——3
稀释唾液酶(mL)222
(2)混匀后,将各管置于37℃水浴5分钟后,取2号管中混合液1滴于点滴
板上,加1滴KI-L溶液显色,以检验淀粉的水解程度。若不是棕黄色,则继
续保温,然后每隔Imin继续取2号管的混合液1滴于点滴板上,加1滴KI-L
溶液显色,直至变成棕黄色时,向所有试管内依次滴加2滴KI-b溶液显色。
观察各管颜色并解释结果
4.激活剂和抑制剂对酶促反应速度的影响
(1)取试管4支,编号,按下表依次加入各种试剂。
激活剂和抑制剂对酶促反应速度影响实验加样表
管号1234
0.1%淀粉液(mL)1.51.51.51.5
l%NaCl溶液(mL)2———
1%Na2s04溶液(mL)—2
1%CUSO4溶液(mL)——2
蒸储水(mL)———2
稀释唾液酶(mL)0.50.50.50.5
(2)混匀后,将各管置于37c水浴8分钟后,取1号管中混合液1滴于点滴
板上,加1滴KI%溶液显色,以检验淀粉的水解程度。若不是棕黄色,则继
续保温,然后每隔Imin继续取1号管的混合液1滴于点滴板上,加1滴KI-I2
溶液显色,直至变成棕黄色时,向所有试管依次滴加1滴KI-I2溶液显色。观
察各管颜色并解释结果
教学过程中师生活动设计
随着淀粉水解,为什么与碘有颜色反应变化?
提纲、板书设计
原理及简要操作步骤
1在作离子对酶活的影响时3、4号管有何作用?
2.在激活剂和抑制剂对酶促反应速度的影响实验中如何证明cr是唾液淀粉酶的
作业
激活剂?
3.酶的抑制剂与变性剂有何区别?
主要参[1]《生物化学实验》,董晓燕主编,化学工业出版社,2010
考资料[2]《生物化学实验教程》,王金亭,方俊主编,华中科技大学出版社,2010
1、对照实验要注意同步性;
总结分
2、不同人的唾液淀粉酶活性不尽相同,让学生注意到样本差异;
析
3、重点分析激活剂和抑制剂对酶促反应速度的影响
《医学生物化学实验》教案
第7次课2学时
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实验项目Folin-酚试剂法测蛋白质浓度
实验性质综合性实验
教学目的1.学习会用Folin-酚试剂法测蛋白质浓度的方法。
和要求2.巩固分光光度计的使用。
教学重点1、重点:分光光度计的使用
与难点2、难点:标准曲线的绘制
试剂:标准蛋白溶液,Folin-酚试剂,样品液蛋白质
实验材料
器材:分光光度计、恒温水浴锅、试管、移液管
一、实验原理支
Folin-酚试剂法测蛋白质浓度的显色原理与双缩胭方法是相同的,只是加入了第
二种试剂,即Folin-酚试剂,以增加显色量,从而提高了检测蛋白质的灵敏度。这
两种显色反应产生深兰色的原因是:在碱性条件下,蛋白质中的肽键与铜结合生成
复合物。Folin-酚试剂中的磷铝酸盐-磷鸨酸盐被蛋白质中的酪氨酸和苯丙氨酸残基
还原,产生深兰色(钥兰和鸨兰的混合物)。在一定的条件下,兰色深度与蛋白的
量成正比。
二、实验步骤上
1.曲线的测定:取16支大试管,1支作空白,3支留作未知样品,其余试管分成两
组,分别加入0,0.1,0.2,0.4,0.6,0.8,1.0毫升标准蛋白质溶液(浓度为
250mg/ml)。用水补足到1.0毫升,然后每支试管加入5毫升试剂甲,在旋涡混合
器上迅速混合,于室温(20〜25℃)放置10分钟。再逐管加入0.5毫升试剂乙
(Folin-酚试剂),同样立即混匀。这一步混合速度要快,否则会使显色程度减弱。
实验内容
然后在室温下放置30分钟,以未加蛋白质溶液的第一支试管作为空白对照,于
700nm处测定各管中溶液的吸光度值。以蛋白质的量为横座标,吸光度值为纵座
标,绘制出标准曲线。
2.样品的测定:取1毫升样品溶液(其中约含蛋白质20~250微克),按上述方法进
行操作,取1毫升蒸储水代替样品作为空白对照。通常样品的测定也可与标准曲线
的测定放在一起,同时进行。即在标准曲线测定的各试管后面,再增加3个试管。
如上表中的8、9、10试管。
根据所测样品的吸光度值,在标准曲线上查出相应的蛋白质量,从而计算出样
品溶液的蛋白质浓度
教学过程中师生活动设计
测定蛋白质浓度其他方法有哪些?
提纲、板书设计
原理及简要操作步骤
作业简述Folin-酚试剂法比较其他蛋白质测定方法的优点。
主要[1]《生物化学实验》,何幼鸾、汤文浩,华师出版社,2013
参考资料[2]《生物化学实验》,董晓燕主编,化学工业出版社,2010
1、强调Folin-酚试剂法测蛋白质浓度的显色原理;
总结分析
2、巩固分光光度计的使用
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《医学生物化学实验》教案
第8次课2学时
实验项血清蛋白的醋酸纤维薄膜电泳
目
实验性基础性实验
质
教学目1.了解电泳技术的一般原理。
的和要2.掌握醋酸纤维薄膜电泳的操作。
求
教学重重点:掌握醋酸纤维薄膜电泳的操作方法。
点与难难点:电泳技术的原理。
点
器材:DYY-HI6型常压电泳仪、醋酸纤维薄膜(2cmx8cm)、.培养皿、盖玻
片、滤纸、镜子。
试齐
1.巴比妥缓冲液(pH8.6,离子强度0.07):巴比妥2.76g,巴比妥钠15.45g,用
实验材蒸储水定容至1000mL。
料2.染色液:氨基黑10B0.25g,用甲醇50mL、冰醋酸10mL、水40mL溶解(可重
复使用)。
3.漂洗液:甲醇或乙醇45mL,冰醋酸5mL,水50mL,混匀。
4.透明液(仅在定量分析时使用):无水乙醇7份,冰醋酸3份,混匀。
一、实验原理★:
电泳是带电颗粒在电场作用下,向着与其电性相反的电极移动的现象。醋酸
纤维薄膜电泳(CAME)是一种区带电泳技术,将血清样品点样于醋纤膜上,在
pH8.6的缓冲液中电泳时,血清蛋白质均带负电荷移向正极。由于血清中各蛋
白组分等电点不同而致表面净电荷量不等,加之分子大小和形状各异,因而电泳
迁移率不同,彼此得以分离。
影响电泳迁移率的外界因素:电场强度、溶液的pH值、溶液的离子强度和电
渗现象。
影响电泳迁移率的内在因素:质点所带净电荷的量、质点的大小和形状。
实验内
本实验以醋酸纤维素为电泳支持物,它是纤维素的羟基乙酰化所形成的纤维
容
素醋酸酯,将它溶于有机溶剂(如:丙酮、氯仿、氯乙烯、乙酸乙酯等)后,涂
抹成均匀的薄膜则成为醋酸纤维素薄膜。该膜具有均一的泡沫状的结构,厚度约
为120nm,有很强的通透性,对分子移动阻力很小。醋酸纤维素薄膜电泳具有
微量、快速、简便、分辨力高,对样品无拖尾和吸附现象等优点。
本实验中用于电泳分离各种血清蛋白。血清中含有清蛋白、a-球蛋白、p-球
蛋白、丫-球蛋白和各种脂蛋白等,各种蛋白质在电场中的迁移速度不同。正常人
血清在pH8.6的缓冲体系中电泳,染色后可显示5条区带。其中清蛋白的泳动速
度最快,其余依次为al-、a2-、(3-及y-球蛋白。
二、实验步骤:1)预处理;2)点样:3)电泳;4)染色;5)漂洗,吸干。
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1预.处理:用镜子取醋酸纤维薄膜2张,识别出光泽面与粗糙面,将粗糙面朝上
放在电泳槽中的缓冲液中浸泡20mino
2点.样:事先用点样器在滤纸上点几个样,熟悉一下点样器的用法。然后把膜条
从缓冲液中取出,夹在两层滤纸内用手指快速捋一下,以吸干表面多余的液体,
随即将粗糙面朝上平铺在玻璃板上。注意,切勿将膜条长时间放在滤纸上,以免
膜条中的缓冲液过度吸出。用盖玻片蘸一点血清,使血清均匀地分布在盖玻片切
面。将盖玻片在膜条一端2~3cm处轻轻地垂直落下并随即提起,这样即在膜条上
点上了细条状的血清样品,每张膜点一个样。(要求:轻、匀、直、细)
3.电泳:预先要在电泳槽内加入缓冲液,使两个电极槽内的液面等高,做好滤
纸桥。用镶子将膜条平悬于电泳槽支架的滤纸桥上,要平直。膜条光面朝上,点
样端靠近负极、且悬空(可用镜子再将膜条两端压服帖一些)。盖严电泳室,检
查一下电泳槽和稳压电源是否已经连接好。通电,调节电压至110V,电泳时间
约为30min。
4.染色:电泳完毕后,关上电源开关,用镜子将薄膜条取下并放在装有染色液
的培养皿中浸泡3~4min(注意盖好培养皿的盖子,以免溶剂挥发)。
5.漂洗:将膜条从染色液中取出,在培养皿的边缘上沥去表面多余的染色液,
依次放入装有漂洗液的培养皿(共有2套)中漂洗2次(未漂洗时注意盖好培养皿
的盖子,以免溶剂挥发),至色带清晰的电泳图谱。
三、分析结果▲:
实验采用小牛血清故出现三条色带:清蛋白;四球蛋白;aa球蛋白,且清蛋
白颜色最深。
(本实验由于时间有限,授课时间安排首先由教师简单讲解实验步骤并向学生演
示操作方法后指导学生操作,在电泳的30min里教师给学生详尽讲解实验原理,
操作步骤及其注意事项。)
教学过程中师生活动设计
蛋白质颗粒为什么能电泳?依据什么性质?
提纲、板书设计
原理及简要操作步骤
1电.泳时,醋酸纤维薄膜点样的一端应靠近哪一极?为什么?
作业2血.清醋酸纤维薄膜电泳可将血清蛋白依次分为哪几条区带?
主要[1]《生物化学实验》,何幼鸾、汤文浩,华师出版社,2013
参考资[2]《生物化学实验》,董晓燕主编,化学工业出版社,2010
料
1、需要强调点样方法,避免点样过多,重复点样等;
总结分
2、重点讲解迁移速率的因素;
析
3、结合血清电泳在医学检验领域的应用,便于学生更好的理解
《医学生物化学实验》教案
第9次课2学时
实验项血清ALT活性测定
目
实验性综合性实验
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质
教学目掌握血清谷丙转氨酶活性测定的基本原理、具体操作方法
的和要了解其临床意义。
求
教学重重点:血清谷丙转氨酶活性测定的原理。
点与难难点:血清谷丙转氨酶活性测定的方法。
点
试剂:O.lmol/L磷酸盐缓冲溶液、0.4mol/L氢氧化钠溶液、lmol/L氢氧化钠溶液、ALT底
实验材
物液、2,4-二硝基苯肺溶液、丙酮酸标准液。
料
材料:分光光度计、恒温水浴锅、试管、移液管、容量瓶、量筒。
一、实验原理★:
丙酮酸可与2,4-二硝基苯肿在酸性溶液中反应形成相应的2,4-二硝基苯腺,呈黄
色,后者在碱性条件下呈红棕色。通过测定其在520nm波长处的光吸收来了解丙酮酸的生
成量,借此测定血清ALT的活力,故该类方法又称比色测定法。该法虽然也有缺点,但
操作简便,不需要特殊仪器和试剂,故在临床上被广泛应用。
★该法的单位定义是:每1mL血清在pH7.4,37c保温条件下与底物作用30分钟,每
生成2.5%丙酮酸为一个单位。人血清的丙氨酸氨基转移酶正常值为2~40U«
二、实验步骤:
1.酶活反应体系的配制
试剂测定管测定对照管(2)标准管标准对照管
(1)(3)(4)
ALT底物(mL)0.50.50.5
37度保温5min(预热,可略)
血清(mL)
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