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文档简介
C6胶质瘤细胞的培养和模型的建立姓名:张永煌专业:09药物制剂指导老师:徐维平实习单位:安徽省立医院药剂科
研究背景与目的实验仪器与材料细胞培养与造模实验结果观察
总结与讨论目录一、研究背景与目的二、实验仪器与材料仪器:1.MCO175型二氧化碳培养箱2.脑立体定向仪3.台式冷冻离心机4.倒置显微镜5.3.0T核磁共振仪6.25μL微量注射器材料:三、C6胶质瘤细胞培养与造模
1.C6胶质瘤细胞的培养细胞复苏细胞传代2.
脑立体定向接种C6细胞建模注射细胞准备注射前准备 接种方法
大鼠生存状况观测
MRI检查病理解剖学检查组织学检查
1.细胞复苏冻存管浸入37℃温水,融化细胞悬液加到离心管,滴加10倍培养液1000r/min,5min弃上清,加小牛血清,调整细胞密度,接种培养瓶次日更换一次培养液,继续培养细胞图片2.细胞传代吸去培养基,PBS洗涤加胰酶消化液,用枪吹打细胞显微镜下,细胞出现明显收缩、从培养皿中脱离参加含血清的完全细胞培养液,继续吹打下细胞转移该培养皿中的培养液,参加新鲜培养液,放入培养箱中培养二、脑立体定向接种C6细胞建立模型1.注射细胞准备:接种前取对数生长期C6细胞0.25%胰酶消化、收集细胞制成细胞悬液台盼蓝排斥试验鉴定细胞存活率大于95%调整细胞浓度为2.5×106/ml,置于37℃恒温摇床待用。2.注射前准备:前12h大鼠禁食和水,用10%水合氯醛麻醉立体定向仪固定,常规消毒内眦连线中点后纵向切开头皮1cm,暴露颅骨前囟冠状缝与矢状缝交1.0mm、右3.0mm处用三棱针钻一直径1.0mm的小孔,不可伤及硬脑膜3.注射细胞:微量注射器抽取25μL的C6细胞悬液,针尖调节至触及硬脑膜沿钻孔垂直进针5.5mm,后退1mm细胞悬液注入尾状核内,推注时间为10min,注射完毕后留针10min后,缓慢退针喷洒适量抗生素,缝合皮肤,切口消毒,常规饲养4.组织学检查:
HE染色常规病理检查:GFAP免疫组织化学检查:阴性对照以PBS代替一抗阳性对照片由试剂公司提供。四、实验结果1.大鼠生存状况观测:2.MR影像学变化:T1T2增强扫描3.病理解剖特征:脑组织标本,可见肿瘤〔☆示〕4.组织学检查结果b.大鼠正常脑组织〔HE,×100〕c.荷瘤鼠脑内肿瘤中心组织〔HE,×200〕d.肿瘤边缘组织〔HE,×100〕e.肿瘤组织GFAP免疫组化染色〔HE,×400〕五、实验讨论:
1.细胞数量和细胞活力:细胞数目过少模型成功率低,过高虽能保证实验动物造模成功率但动物生存状态差且生存期短,不利用于进一步实验研究;实验摸索1×106•10μL-1、2.5×106•25μL-1、4×106•25μL-1、6×106•μL-1接种数量;最适合的种体积为25μL,细胞数为2.5×106个;每次接种前轻轻摇晃吹打细胞悬液,防止细胞沉淀导致细胞接种不均匀;细胞活力应>90%;2.靶点定位:定位选择鼠脑右侧尾壳核为注射点;冠状缝前1mm,矢状缝右3mm进针,深度为距硬脑膜约5.5mm。3.进针深度和细胞注射速度C6细胞沿接种针道向颅外生长是该肿瘤模型的主要缺乏;在脑内进针后稍后退的方法,即先进针5.5~6mm,然后上提1mm,造成靶点位置的一个空隙;注射过程缓慢,防止悬浮液从脑内溢出。
4.细胞与靶点脑组织接触时间采用微量注射器精密吸取25μL,10min内匀速推注完毕,然后再原位留针10min;延长留置时间一方面有利于瘤细胞沉积在穿刺道的底部,另一方面有利于脑组织适应局部的压力增高。致谢感谢安徽中医药大学的领导、老师们四年来的教诲与帮助。在此,我要向他们深深
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