荧光定量PCR技术讲座

荧光定量PCR技术讲座------分子生物学实验技术系列讲座III张志坤2010、09、10大纲一、荧光定量PCR技术的基础理论二、引物及Taqman探针的设计三、内参基因的选择四、反应体系的优化五、实验方案的选择__六、误差分析及操作规范七、实验中污染的防控八、实验结果的分析，、荧光定量PCR技术的基础理论1、荧光定量PCR技术概论荧光定量PCR技术产生并成熟于上世纪90年代，由于该技术实现了PCR从定性到定量的飞跃，能够对PCR反应的全过程进行实时监控，并且自动化程度高，所以该技术从产生到现在短短的十几年时间，在科研及检验领域获得了广泛的应用，成为分子生物学领域不可或缺的一项重要技术。荧光定量PCR技术的基础理论1、荧光定量PCR技术概论荧光定量PCR技术是在PCR反应体系中加入荧光基团，利用荧光信号随着PCR反应的积累来实时监控PCR反应的进程，并通过分析软件对PCR的反应进行检测分析的技术。2、荧光定量PCR常用的三个概念扩增曲线、阈值、CT值(1)、扩增曲线及扩增曲线的两种形式3论左图反映的是随着PCR反应的进行相应的荧光信号的变化，比较直观，但是指数期很短；右图反映的是荧光信号的变化量的对数与PCR反应循环数的关系，从右图可知，指数期很明显，在确定阈值线时具有简单明了的特点，所以很多软件都采用右图的形式，当然了，这两种实时扩增曲线可以根据实验的需要相互转换。，、荧光定量PCR技术的基础理论1cie-0031ae-DLJ42、荧光定量PCR常用的三个概念(2)、阈值线__在荧光定量PCR扩增的指数期，画一条线，在此直线上，所有样品的荧光强度与其本底荧光强度的差值全部相同。106*0001=0e-0011oe-002荧光定量PCR技术的基础理论2、荧光定量PCR常用的三个概念(3)、CT值PCR过程中，各样品扩增产物的荧光信号达到设定的阈值时，所经过的扩增循环数。荧光定量PCR技术的基础理论3、荧光定量PCR的化学基础荧光定量PCR是随着PCR循环的进行，以荧光信号强度的积累来实时反映PCR反应进程的。理想的荧光物质需具备以下特占.（1）、本底低（2）、荧光强度高（3）、每轮PCR反应完成后都有荧光强度的增高，而且这种荧光强度的增高和每轮循环后PCR产物的量成线性关系（4）、没有PCR产物时，没有荧光（5）、该荧光物质的受激发后其发射光的波长范围窄，各种荧光不会产生荧光的交叉干扰荧光定量PCR技术的基础理论3、荧光定量PCR的化学基础目前常用的几种荧光物质(1)、Taqman探针类RReporterProbeQuencher5'端标记荧光基团，3'端标记淬灭基团，探针完整时，没有荧光，探针断裂后，在激发光的作用下，荧光基团产生荧光；探针本身序列与目的基因序列互补，特异性高，退火后探针与目的基因互补序列结合，随着PCR反应的进行，在Taq酶5'—3'外切酶的作用下，探针水解断裂，荧光产生。一、荧光定量PCR技术的基础理论3、荧光定量PCR的化学基础Taqman常用的荧光基团和淬灭基团荧光基团：5’端常用荧光基团FAM标记，最佳激发光波长：494-495nm，最大发射光波长：518-520nmo淬灭基团：TAMRA、BHQ、ECLIPSE等。TAMRA本身也是一种荧光基团，激发光波长范围较宽，500—560nm，最佳激发光波长在560nm附近，对FAM基团产生的发射光具有较好的吸收作用；其发射光波长较宽，560—650nm，当做多重荧光时，容易产生荧光交叉干扰，并且本底较高，故现已不常用。BHQ和ECLIPSE为非荧光物质，只是一种荧光淬灭剂，本身不会，、荧光定量PCR技术的基础理论3、荧光定量PCR的化学基础Taqman探针的特点及应用（1）、特异性强、准确性高本身具有序列特异性，保证了所检测目的基因的特异性；其结构特点保证了其所产生的荧光强度与PCR产物的量成正比关系，因此准确性极高。（2）、对引物及试剂要求不高，配套的普通引物就可以使用，普通的Taq酶就能满足实验的要求。（3）、常被用作基因含量的精确检测（精确度可达几十个拷贝）及基因表达变化的精确分析（精确度可达0.1倍的变化）。（4）、目前价格也不是太贵，2OD1000.00左右荧光定论HRM等。其共同性质为：结合于双链核酸的小沟处与双链DNA结合后受激产生荧光在变性条件下双链分开，荧光消失3、荧光定(2)、荧光染料类目前常用的荧光染料为SYBRGreenI、SYBRGreenllSYTO9(a)、(b)、(c)、量PCR技术的基础理量PCR的化学基础一、荧光定量PCR技术的基础理论3、荧光定量PCR的化学基础荧光染料的特点及应用(1)、能够与所有的核酸双链结合，受激后产生荧光，其荧光的强度与双链核酸的含量及长度成正比，因此本底较高；(2)、可做双链核酸的熔解曲线分析；(3)、SYBRGreenI染料本身价格便宜，但是做荧光定量PCR时对引物设计的要求很高；对Taq酶要求较高，最好是HotStarTaq酶，或者操作时需要严格的冷启动，冰上操作，否则引物二聚体及非特异性扩增会严重干扰结果的准确性，尤其是模板含量较低时；(4)、适合于基因含量及基因表达变化的粗略分析或初筛；(5)、在分析的基因种类很多，但是样品量很少时，尤其适用。(6)、对PCR反应的毒性，能抑制PCR反应，降低PCR反应的效率。一、荧光定量PCR技术的基础理论4、荧光定量PCR的数学原理对于普通的PCR反应来说nXn=X0(1+E)上式中，Xn为n轮PCR循环后，目的基因PCR产物的量；n为PCR循环数；Xo为目的基因的初始模板量，E为PCR的反应效率，0<E<1。，、荧光定量PCR技术的基础理论4、荧光定量PCR的数学原理由于PCR反应体系中荧光物质的荧光强度与PCR产物的量成正比，所以用荧光强度来代替PCR产物的量，我们可以得到：nRn=Rb+Xq(1+E)Rs总荧光信号强度=本底信号+分子数量x单位信号强度Rn：第n个循环时的总信号Rb：本底Rs:单位信号强度Xq：起始DNA数目E：PCR效率荧光定量PCR技术的基础理论4、荧光定量PCR的数学原理当循环数n等于CT值时，所有样品荧光信号强度变化量的对数全部一致，都达到了阈值。Rt=Rb+Xo(1+cE)Rslg(Rt-Rb)=lgX0+CTlg(1+E)+lgRsCTlg(1+E)=-lgXo+lg(Rt-Rb)

-lgRs此时，PCR反应处于指数期阶段，所有样品的反应效率E稳定且近似相等；lg(RT-Rb)、Rs也都相同，只有CT值和-lgXo为变量，且这两个变量之间成一次性方程。也就是说，所有样品的lgX0与到达阈值时的循环数n(Ct值)呈线性关系，根据样品扩增达到域值的循环数即Ct值就可计算出样品中所含的模-、荧光定量PCR技术的基础理论5、荧光定量PCR线性关系成立的条件分析CTlg(1+E)=-lgXo+lg(Rt-Rb)

-lgRs(1)、PCR效率相等，在PCR扩增的指数期，E稳定且为常数；(2)、Rt-Rb要相等；也就是说到达阈值时样品的荧光强度与样品的荧光本底之差要相等；(3)、样品的单位信号强度Rs要相等，用荧光染料做荧光基团时，Rs就是每条PCR产物结合荧光染料后所发出的荧光强度，此荧光强度和PCR产物的长短有关，PCR产物越长，结合的荧光染料越多，Rs值__越大；用探针做荧光基团时，Rs就等于PCR反应时，Taq酶水解左图横坐标是PCR循环次数，纵坐标是总的荧光强度Rn,改图反映的是各个样品随着每轮PCR反应，其总的荧光量的实时变化；右图横坐标也是PCR循环次数，纵坐标是总的荧光强度与荧光本底的差值RT-RB即ARn的对数，在右图中确定阈值线，该直线上所有样品的RT-RB的对数都相同，荧光定量PCR的线性关系才会成立。5、荧光定量PCR线性关系成立的条件分析3论未知样本标准品荧光定论PCR线性关系成立的条件分析LogXo与循环数呈线性关系，通过已知起始拷贝数的标准品可作出标准曲线，根据未知样品Ct值，就可以在标准曲线上计算出未知样品初始模板量。量PCR技术的基础理5、荧光定量一、荧光定量PCR技术的基础理论6、双链核酸的熔解曲线分析使用荧光染料作为荧光基团时，由于荧光染料的特性随着PCR反应的进行，双链PCR产物呈指数增长，SYBRGreenI与双链PCR产物结合后荧光越I'l333?3：:N#Jncr||/nani|rH：r-:JITJ?409:JUJ论IJ如下图PCR技术的基础理司，其序列相同的核酸双链全部打开，荧光6、双链核酸的熔解曲线分析对于核酸序列相同的PCR产物，其TM值也相同，而且其TM值在一个很荧光定量的温度范围内，在此温度区强度急剧降低，以荧一、荧光定量PCR技术的基础理论6、双链核酸的熔解曲线分析上图就是熔解曲线，熔解曲线反映的是一定序列长度的核酸双链，在一定的离子强度下的TM值。核酸双链的TM值由双链核苷酸之间相连接的氢键决定，不同的核酸双链，其TM值也不同，所以通过熔解曲线，我们能获知双链核酸的均一性、野生型和突变型双链之间的碱基差异等，如果采用高分辨率荧光染料，链条核酸双链哪怕只有一个碱基的差异，通过熔解曲线也能分析出来_一、荧光定量PCR技术的基础理论7、绝对定量和相对定量绝对定量相对定量f垂/繼、“600个拷贝”“增加10倍”一、荧光定量PCR技术的基础理论7、mRNA差异表达的相对定量分析研究基因表达的情况，我们只需搞清楚该基因在不同生理阶段的变化趋势如何就行了，而无需知道该基因的绝对量有多少。实验操作中，由于样品选取时样品的细胞个数不可能完全相同，RNA提取__时得率不同、RNA反转录为cDNA的效率不同等客观因素，用于定量分析的初始样品浓度不同，这就造成了比较上的混乱，因此在进行基因表达调控研究中都会用一些看内参基因来标准化，以校正因样品初始浓度不同而造成的差异。常用的内参基因是在各种生理条件下表达量恒定的基因，这些基因也常被称为看家基因，该基因表达一般不随外界的变化而变化，所以一、荧光定量PCR技术的基础理论7、mRNA差异表达的相对定量分析以上公式就是引入内参基因后相对定量分析的基本公式，并由此派生出两种相对定量的分析方法：双标准曲线法和Delta-delta以法。一、荧光定量PCR技术的基础理论7、mRNA差异表达的相对定量分析（1）、双标准曲线法所谓的双标准曲线法就是对每个样品的内参基因和目的基因都做绝对定量，求出每个样品中内参基因和目的基因的绝对数量，然后根据相对定量的基本公式来求出目的基因的差异表达。双标准曲线法的特点：（a）、考虑到了不同基因扩增效率的差异，用标准曲线来校正扩增效率，最大限度的避免了误差；（b）、思路直观、条理清晰、应用简便，操作灵活，无需像Delta¬deltaCT法那样对实验进行反复的优化；（c）、其不足之处是每次实验都必需对目的基因和看家基因做标准曲线；（d）、该方法适合样品量大，但是所分析目的基因较少的实验。荧光定量PCR技术的基础理论该方法的前提条件是目的基因和内参基因的扩增效率相同且都为1，在试验开始前必须分别对目的基因和内参基因作标准曲线，看两者扩增效率的差别，假如两者扩增效率之间的差异小于0.1，就可以用该方法分析。而且在接下来的实验中，无需再做标准品。该方法要求严格的重复，因为CT值的差异只要有很小的变化，测得的结果就会有很大的差别。该方法特别适合于样品量不大，但是检测的基因种类很多的情况。7、mRNA差异表达的相对定量分析（2）、2-AACT法P待检做帥_靴鰣骹-J因平均_翻平均Ct價/r对照組醐_対_番J平均Ctll_因平灼Ct值/_____二、引物及Taqman探针的设计____1、染料法引物的设计原则：____(1)、序列选取应在基因的保守区段，不能有碱基变异；___(2)、避免引物自身或与引物之间形成4个或4个以上连续配对，避免引物自身形成环状发卡结构；___(3)、检测mRNA时，为避免基因组的扩增，引物设计最好能跨两个外显子；(4)、引物之间的TM相差避免超过2°C;(5)、典型的引物18到24个核苷长；(6)、目的基因和内参基因所扩增的PCR产物长度尽量一致，不大于300bp，这样有利于使两种基因PCR效率相同(7)、将设计好的引物用序列分析软件分析其二级结构并做BLAST分析其特异性二、引物及Taqman探针的设计2、Taqman探针及引物的设计原则：在Taqman探针法中，Taq酶除了5’-3’聚合酶作用之外，还要5’-3’外切酶的活性来切断探针链产生荧光，普通PCR的延伸温度为72°C，此温度为Taq酶聚合作用的最佳温度；Taqman探针法反应中，在要求Taq酶5’-3’聚合酶活性的同时，还需要Taq酶5’-3’外切酶的活性来切断探针链产生荧光，Taq酶5’-3’外切酶活性的最佳温度为60C，所以TaqmanPCR反应的一般采用两步法，即95C变性，60C复性延伸。在Taqman探针及引物的设计过程中，引物的TM值已经确定为60C左右，在每轮PCR循环的复性过程中（95—60C），为了确保探针先于引物二、引物及Taqman探针的设计2、Taqman探针及引物的设计原则：(1)、序列选取应在基因的保守区段，不能有碱基变异；(2)、检测mRNA时，为避免基因组的扩增，引物设计最好能跨两个外显子；(3)、引物TM值为60°C左右，探针的TM值为70°C左右；(4)、探针的5’端应避免使用鸟嘌呤G，因为5’G会有淬灭作用，而且即使是被切割下来还会存在淬灭作用；(5)、整条探针中，碱基C的含量要明显高于G的含量G含量高会降低反应效率，这时就应选择配对的另一条链作为探针；(6)、引物之间的TM相差避免超过2C；(7)、典型的引物长度为18-24bp，探针长度为15-45bp；(8)、PCR产物长度在50-150bp之间，这样有利于使PCR效率相同；(9)、将设计好的引物用序列分析软件分析其二级结构并做BLAST分析其:、引物及Taqman探针的设计H山mUTUi!in?i■*L*iHi_LJ_|dJ4■4..U.UH.!Ii

i1iii21：i-T3i■HIHI:1.200，0.B00,0.600，0.4000200-0.000Amplification™LI6fl6/19/96反义链：11C/3G正义链;3C/11G2、Taqman探针及引物的设计原则:-TT1^IT:.............4irl«i一IICEE-B.EWE•EIlu■•一EE-E-a■一____________________________________________--■-!-w---—-—-233S-IMB.**i;—-^-1nrs:•11j—J-n111^^—i——f探针中GC含量的差异对定量PCR反应效率的影响▲、引物及Taqman探针的设计3、Taqman探针及引物的设计举例1ATGAACTACGTTGGACAGTTAGCAGGGCAAGTGTTTGTAACTGTGAAGGAGCTCTATAAG61GGACTAAACCCAGCCACGCTGTCGGGATGTATCGATATAATTGTTGTACGTCAGCCAGAT121GGGAATCTTCAGTGTTCTCCATTCCATGTACGCTTTGGGAAAATGGGAGTTCTGCGTTCC181AGGGAGAAAGTGGTTGACATAGAAATTAATGGAGAGGCTGTAGATTTGCACATGAAGCTA241GGAGACAATGGAGAAGCCTTTTTCGTCCAGGAGATGGATAACAATCAGGAGGTAATTCCT301TATCATCTGTCTACGTCCCqlCATCCTGTCTGAGGGAACTGCGTTAATGGAAGCTCAGCTG361AAGAGAAACTCAATTGACAGGATAAGAAACCTGGACAGCAGTGTATCTTCACAAGTACCA421CCCCAAGCTCATGGATCCCAGCCTGGTACTGAAACATCTCCAGCCTGTAG经OligCW件验证A探针TM值70aC左右，上下游引物的TM值都为60°C左右，二级结构分析81引物和探絆比變理A想，A_ALA!_CTA引物和探针特异性_。八八八aAGaGaagac541ATTGGAGATACATCAGAAGATGAAGACATGTTTCCTATAGAGATTAGCTCAPAMAAPAA▲、引物及Taqman探针的设计Taqman探针及引物合成时注意事项、引物及探针设计好之后，委托一家放心的合成公司合成；、先不要急于合成探针，先引物合成，引物合成好以后，做普通PCR，电泳检测PCR产物，看是否和设计的长度吻合，再看看非特性扩增情况，必要时进行PCR产物的测序验证；__、确定引物没有问题后，再将探针送交合成，这样安排能避免很多外的损失；(4)、探针合成好后，先检测一下探针的质量，250nm的探针终浓度，25ul水，反应体系中只有水和探针，在荧光定量PCR仪上检测，95°C，2min;95°C，20s，60°C，20s，40个cycles；看荧光本底和荧光强度的变化情况，好的探针荧光本底较低，随着PCR反应，荧、110Z4cC>以3光强度不会变化，假如荧光强度变化的比较大，说明探针合成质▲、内参基因的选择2、常用内参基因的表达情况⑴、GAPDHGAPDHmRNA在不同癌组织（包括肺癌、乳腺癌、肾细胞癌等）中的表达升高，在不同个体间、怀孕期间以及细胞周期的不同阶段等变化很大，在正常的结肠上皮、人类前列腺癌的细胞周期不同阶段也呈现出显著性变化。在各种因素（例如低氧、胰岛素、地塞米松、丝裂原、表皮生长因子等）刺激下，培养细胞GAPDHmRNA的表达水平也不同。（2）、p-actin当细胞向恶性转化时，p-actinmRNA的表达水平增加。（3）、18srRNA当细胞有丝分裂时，18srRNA表达量显著上调。▲、内参基因的选择3、内参基因的选择策略根据实验的实际情况，不同组织、不同细胞、细胞的不同生理时期、不同的理化条件刺激等，查阅相关资料，选取三、四合适的内参基因，做荧光定量PCR，先以CT值最小的那条基因作为内参，其他几条内参基因与其相比，分析所得的比值，找出比值稳定的几条基因，比值稳定说明该基因表达稳定，适合作为理想的内参。也可用geNorm内参分析软件来选择合适的内参基因。对于比较精确的实验，最好采用两种或两种以上表达稳定的基因作为内参，对每种内参基因测得的基因表达变化求方差和平均值。http://medgen.ugent.be/~jvdesomp/genorm/index.php_都能影响Taq酶的活性进而荧光基团Taq酶BufferMg2+水四、反应体系的优化1、为什么要优化反应体系与普通PCR反应相比，荧光定量PCR在反应中加入了荧光物质，用以实时显示反应的进程，Taqman探针法在普通PCR反应体系中加入了与扩增片段互补的一段带荧光标记的核酸序列，Taq酶除了5’_3’聚合酶作用之外，还要发挥5'-3'外切酶的活性来水解探针链来产生荧光；SybrGreen法加入普通PCR反应体系能与》影响PCRBU反应效率Mg2+水定量PCR反应体系引链核酸结合的荧光染料，这些荧光Taq酶四、反应体系的优化1、为什么要优化反应体系普通PCR结果电泳图添加荧光基团后PCR结果电泳图四、反应体系的优化2、如何优化由上图可知，添加荧光基团后，PCR的反应效率几乎为0，所以必须对荧光定量PCR反应体系进行优化，对体系中各个反应成分的浓度进行调整。其中最关键的因素：Mg2+浓度、荧光基团浓度、引物浓度对于SYBRGreenI荧光染料定量PCR反应体系来说，Mg2+的最佳浓度为3.0-4.0mM；对于Taqman探针反应体系来说，Mg2+的最佳浓度为5.0mM左右，引物最佳浓度为500nM，探针的最佳浓度为250nM。SYBRGreenI反应体系中Mg2+浓度梯度优化PCR电泳结果四、反应体系的优化2、如何优化优化后的Taqman探针体系实验结果，Mg2+浓度为5.0mM左右，引物浓度为500nM，探针浓度为250nMo四、反应体系的优化3、自行配制荧光定量PCR试剂(1)、常用的SYBRGreenI预混酶(2X)HotStarTaqE+Buffer+Mg2其中Mg2+浓度为6〜7mM(2)、常用的Taqman预混酶(2X)TaqE+Buffer+Mg2其中Mg2+浓度为10mM五、实验方案的选择定量PCR实验方案「双标准曲线法.荧光染料法、L2-AACT法定量PCR实验方案＜f双标准曲线法-Taqman探针法乂

2-AACT法_______________________五、实验方案的选择________定量PCR实验方案（1）、染料法适合于基因含量及基因表达变化的粗略分析或初筛；在分析__的基因种类很多，但是样品量很少时，尤其适用。（2）、探针法适合常被用作基因含量的精确检测（精确度可达几十个拷贝）___及基因表达变化的精确分析（精确度可达0.1倍的变化）。_________（3）、双标准曲线法适合样品量大、检测的基因种类相对较少、精度要求__较高的实验。（4）、2-AACT法适合检测精度要求一般，样品量相对较少，检测的基___因种类相对较多的实验。根据实验的实际情况，如检测的精度要求样品数量基因数量六、误差分析及操作规范1、误差分析（1）、实验方案本身的误差荧光染料法由于染料本身的特性，不可避免的会引起误差；2-AACT法由于也是一种近似的算法，所以不可避免的也会引起误差；Taqman探针法误差相对较小；双标准曲线法误差相对较小。（2）、仪器设备引起的误差测量标准品核酸浓度时，分光光度计的误差，从光密度值到质量再到摩尔量，误差本身就很大（双标准曲线法不一定非要测标准品的浓度）；定量PCR仪的误差六、误差分析及操作规范1、误差分析(3)、相对定量时内参基因表达不稳定引起的误差(4)、操作引起的误差样品处理、选取、核酸提取、反转录、加样，操作过程中引起的误差。2、操作规范荧光定量PCR是一项对操作要求很高的实验，同时又是花费很高的一项实验，这就要求必须最大程度的减少误差或避免错误。要想达到这个目标，我们必须从样品的选取开始到上样检测，每一步都要规范操作。(1)、样品的处理及选取处理样品时，必须确保样品都得到了充分的处理。如测定一种药物到小白鼠免疫系统的影响，必须做到每次饲喂时此药品完全被小白鼠摄食；选取试验样品时，要保证选取的组织尽可能的纯，不要六、误差分析及操作规范2、操作规范(2)、核酸提取加入液氮研磨要彻底，蛋白、多糖、多酚类物质要去除干净，确保得到高质量的核酸，分光光度计检测核算质量，RNA0D260/280=2.0左右，DNA0D260/280=1.8左右，最好再做电泳检测；同一样品要提取2到3个RNA，所剩余的样品不要丢弃，继续低温保存。(3)、得到的RNA立即反转录为cDNA，RNA样品最好不要存放，反转录所得cDNA要用看家基因检测。(4)、对于精度要求较高的定量PCR，最好先在样品的所有组织类型内做内参基因的稳定性分析，找出表达恒定基因作为内参。(5)、做定量PCR时，先把除模板外的所有试剂预混，然后分装到PCR管中，分装时尽量采用排枪，加样时尽量最好采用排枪。之7»■!■>曰、n八卜士h、r/

人、『/工口绝工n小单AA/白绝_六、误差分析及操作规范2、操作规范⑺、重复操作让重复操作最大的修正偏差？最有意义的重复是在提取样品RNA时就重复，同一个样品，分别提取3份RNA，3份RNA都做反转录，所得的3份cDNA都做定量PCR检测，这样的重复之所以最有意义是因为我们是把RNA提取、反转录、上机检测三步做了重复，这样得出的平均值要比只在上机检测时对同一cDNA样品做三个重复要有意义的多。同一个cDNA样品做三个重复定量检测求平均值主要是消除加样时的误差，排枪加样时，误差很小，加样时的误差可以通过设几个重复检测出来。六、误差分析及操作规范1.0e*0011.06*0001oe-ooi1.0e-0021.0e-003I0e-00410e-0052、操作规范UCE同一cDNA样品的三个重复42.04532.U4Lr；??|'I4R:12呵2.045557560806670Tempei抽ure(*C)1224G7E911131517T9212225^72931Cycle-xMeltin■P■ak^23253739六、误差分析及操作规范模板浓度越低，染料法的误差越大。如图一系列梯度稀释的模板，理论上它们在扩增曲线上的CT值之差，应该相等，但是后边几个浓度低的样品CT值明显提前了，由熔解曲线可知对于浓度低的样品，引物二聚体引起的误差非常严重。七、实验中污染的防控1、荧光定量PCR实验中污染源的分析（1）、PCR产物引起的污染在检测过程中，荧光定量PCR产物都是封闭在PCR管中的，不存在开管检测，所以有污染的话，最有可能是因为电泳检测荧光定量PCR产物时引起的污染，只要将电泳室与PCR加样室隔离开，就能有效的避免PCR产物的污染。（2）、标准品引起的污染常用的标准品有含有目的基因的质粒、纯化后的PCR产物等，由于标准品的浓度是一系列从高到低梯度稀释的，所以在稀释过程中，有可能引起污染。（3）、高浓度的样品引起的污染房(2)样操(3)能七、买验中污染的防控荧光定量PCR实验中污染的防控、对于PCR产物引起的污染最简单有效地办法就是将电泳室与加样室彻底隔离开，做到每个间都有专属的移液器，做到移液器专用；或者采用dU代替dT配合UNG酶，是解决PCR产物污染的有效办法，但是成本较高。、对于标准品引起的污染目前只能是以预防，加标准品时最好采用专用移液器，不要和加的移液器交叉使用，加标准品时最好在通风厨中进行，和加样的作台隔离开。、对于样品间的检查污染样品间的交叉污染往往是因为高浓度的样品在加样室形成了气溶胶，因为样品的cDNA链较长，经常开紫外灯，把长链cDNA打断，r1有效避免此类污染的发生，另外保持加样室空气流通也有助于防七、实验中污染的防控2、荧光定量PCR实验中污染的防控(4)、对于未知污染源的顽固的污染的防控这类污染也经常出现，找不到明确的污染源，而且此类污染又非常顽固，对于这种情况，最好的办法就是不去管它，在采用绝对定量和双标准曲线法时，污染的初始模板量可由阴性对照检测出来，知道了污染的初始模板量后，我们可以把测得样品的初始模板量减去污染的初始模板量，在分析时就避免了污染造成的误差。4污染的防控七、实验图中最后一个样品为阴性对照，本来应该是一直线，但是仪器也检测到了荧光信号Rn朽Cycle1030.930830J30630.530430.331234567B9101112131415W171819202122232425262728293031323334353637303940CycleNumber七、实验中污染的防控电泳结果显示，该阴性对照确实有PCR产物