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文档简介
一、扩增1、LB培养基5ml;2、抗生素:1000X,即1:1000比例。种类根据细菌抗性决定;3、菌体:看浑浊度,1%-5%,取500ul于其中;4、37℃摇床220转,过夜,12-16h。二、纯化质粒DNA1、1.5ml离心管,编号一定要写清楚;2、加满离心管,离心12000xg.1min,弃上清。取三次;3、加BufferS1200ul,溶解沉淀,5min;4、加S2(用完立刻盖紧瓶盖,以免CO2中和Buffer中的NaOH)200ul,不能剧烈(以免基因组DNA的污染),上下翻转4-6次,直至形成透亮的溶液,时间少于5min。目的是使蛋白包裹基因组DNA,游离质粒;5、加S3280ul,温和充分翻转混合6-8次,12000xg,10min(此步呈白色絮状);*备注:S1:S2:S3=5:5:76、取上清加入制备管(置于2ml离心管),12000xg,1min,去滤液;7、加BufferW1500ul,12000xg,1min,弃滤液;8、加BufferW2700ul,12000xg,1min,弃滤液。重复一遍;9、空管离心12000xg,1min;10、制备管移入新的1.5ml离心管,管膜中加60-80ul去离子水,静置1min,12000xg,1min。(将去离子水加热至65度,将提高洗脱效率)三、酶切体系EcoRⅠ1ul如需要6管,则先统一配7管的量,再分别加入酶的总量不宜超过总体系的10%,以防星活性的发生BamHⅠ1ulBufferEcoRⅠ5ul以此定体系,稀释成1X的就好BSA0.5ul使其终浓度为100ug/ul(1X)去离子水30.5ul定容至BufferEcoRⅠ1X的量Plasmid12ul量要足够Sum50ul37°两小时以上即可四、跑胶回收:sost回收失败1、2%浓度胶,LoadingBuffer如是6X,则加10ul到样品,全部加样到胶孔中。插入:配胶方法大块胶60ml;小块胶25ml;需要配置大块胶、大孔胶;Agarose0.6g,TAE60ml,微波中火2min;趁热但不烫手时加入goldview0.5ul/25ml;倒入槽里。2、跑胶:单位厘米/5-10v。所以大槽25cm,150v即可。小槽100v即可。3、紫外灯下切胶,纸巾吸进液体,计算凝胶重量(1mg=1ul);4、加3个凝胶体积的凝胶结合液DB(0.1ul视为100ul;如凝胶浓度大于2%,则加入6倍体积溶胶液;凝胶块最大不能超过400ul,超过可多个离心柱);5、56℃水浴放置10分钟,至完全溶解;6、每100mg最初的凝胶重量加入150ul的异丙醇,震荡混匀,回收大于4Kb的片段可不加异丙醇,加入反而降低回收效率;7、将上一步所得溶液加入吸附柱AC中(吸附柱放入收集管中),12000rpm,30-60s,弃液体;8、加700ul漂洗液WB,12000rpm,1min,弃废液;9、加500ul漂洗液WB,12000rpm,1min,弃废液;10、空离心2min,弃废液;11、晾干乙醇,以免抑制下游反应;12、将吸附柱放入新的1.5ml离心管,加入50ul(最少30ul)洗脱缓冲液EB或者去离子水(65-70水浴加热效果更好,或将得到的溶液重新加入离心柱可增加洗脱量);五、连接体系:pLXSNAmp+135pLXSNAmp+S100PNOGDKK对照Insert7ul3ul7ul0ulVector—pLXSN1ul1ul1ul1ulT4连接酶1ul1ul1ul1ulBuffer1ul1ul1ul1ul去离子水0ul4ul0ul7ulpLRES2Kana+246pLRES2Kana+S100PNOGDKK对照Insert7ul3ul7ul0ulVector—pLRES21ul1ul1ul1ulT4连接酶1ul1ul1ul1ulBuffer1ul1ul1ul1ul去离子水0ul4ul0ul7ul16℃过夜六、转化1、加感受肽:连接产物=10:1,冰浴30min;2、激活:42℃,90s,不能震动;3、加500ulLB培养基;4、37℃,150转摇床,45min;5、铺板子七、检测1、细菌长势良好,对照组不长;2、酶切检测:(1)1mlLB体系:1mlLB培养基+1ul抗生素于1.5mlEP管中;(2)15ulPcr体系:7.5ulMix(2X)5.5ulwater1ul上游引物1ul下游引物(3)用枪头挑培养皿中的菌体,吹打于1mlLB体系中,再吹打于15ulPcr体系中;(4)1mlLB体系放入37℃摇床,150rpm;(5)15ulPcr调节:360酶Promega酶步骤温度℃时间步骤温度时间1940:02:001950:02:002940:00:302950:00:30360(可调节)0:00:303600:00:304720:00:454720:00:455GOTO2REP345GOTO2REP346720:10:006720:10:007HOLD4.0°ENTER7HOLD4
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