人体解剖生理学实验指导

实验一生理学实验方法与生物机能实验系统操作【目的要求】、了解生理学实验的基本操作技术；、了解生理学常用实验器械，熟悉并掌握BL-机能实验系统的使用。、学习解剖生理学实验报告的写作。【实验内容】一、生理学实验方法、实验动物的选择、常用动物的捕捉方法、常用动物的麻醉方法（）常用的麻醉剂（）常用麻醉给药途径、用动物的固定方法、常用手术的基本操作二、BL-机能实验系统的操作-0生物机能系是置微的4通大录与处理系统。它具有记录仪+示波器+放大器+剌激器+心电图仪等传统的实验仪器的全部功温度以及液滴计数等用：1．微型计算。2．0大AD。3．0。实验二坐骨神经-腓肠肌标本与坐骨神经标本的制备【目的要求】学习两栖类的毁髓经肌备。【实验原理】活条件较单易标性收备须。【材料与器械】金探。【实验步骤】1、破坏脑和脊髓（双毁髓）蟾一，自水洗净勿手蟾背大拇指或食指使俯(宜颅刺1入椎管（图2-1。然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2～3如有。捻其捣毁脊此时意持的时出，一射时针退出椎脊不新。图2-1捣毁蟾蜍脑和脊髓2、剪除躯干上部、皮肤及内脏手的腋并图2-2，然后左手握住蟾蜍的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去（注意避开坐骨神经，并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢（图2-3。图2-2横断柱图2-3剪除躯干上部脏3、剥皮不神住缘，向下剥去全部后肢的皮肤（图2-4。将标本放在干净的任氏液中。将手及使用过的探针、全洗。2图2-4剥去皮肤4、分离两后肢镊出本后中用刀柱耻合央两肢注意勿伤坐骨神经，完分。两标置盛任液养内用将中半后肢标本用于坐骨神经作经。5、制备坐骨神经腓肠肌标本（1）游离坐骨神经两神神，边剥离边剪支肌一脊脊的神腓。（2）完成坐骨神经腓肠肌标本，然后将膝关节下方并骨干个肌坐骨神经标本就制备完成了（图25（3）检查标本兴奋性弓则明标性盛皿后。图2-5经本6、制备坐骨神经干标本分腓神用主神腓本。【】31、可属械神。2、在操作过程中，应经常给神经和肌肉滴加任氏液，防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。3、标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟，使标本兴奋性稳定，再开始实验效果会较好。】1、捣毁脑脊髓后的蟾蜍应有何表现？2、制备好的神经肌肉标本为何要放在任氏液中？3、如何判断制备的神经肌肉标本的兴奋性？4、用锌铜弓刺激神经，为何会引起肌肉收缩？实验三骨骼肌的单收缩和强直收缩【目的要求】1学习神经肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法；、分析单收缩的时程，了解骨骼肌收缩的总合现象；观察不同频率的阈上刺激引起肌肉收。【实验原理】的缩肌生一连刺因的单过经每引的率某限都张缩强激增一个刺激落在前一次收缩的缩短期内，，和的的。【材料与器械】蟾蜍、板蛙术械1套、培养皿、烧杯、手术丝线、锌铜弓、张力换能器、BL－4统、任氏液。【实验步骤】．制备坐骨神经腓肠肌标本．连接实验装置及线路，并将其输出端与BL-信号采集处理系统输入通道相连。刺激器的输出线与肌槽接线柱相连（图3-A．。4图31肌图4打开计算机，进入BL能实验系统操作界面。5观察项目：为当到定刺激度时便的肌收幅强度。（2图2。（3直增频图33。（4图33。图32单缩b期c缩期cd舒期5图33不响.。【注意事项】１.。2。实验四、神经冲动传导速度与神经不应期的测定【目的要求】1. 及。. 。【实验原理】膜一作电纤经观神外已奋的带兴位电导常经一兴时兴导记个电偏波形的，图41。此外，由于坐骨神经加动而。图4-1神经干动作位干到而一导的速度取的S）与通过这的（据V=St的图2。和样生律。6神的给个一定强度“激”一个“激”以反兴奋不。图42导录图43经定线动电位记g为刺隔起动位【材料与器械】经蛙套0统液【实验步骤】（一、神经干动作电位的录1．本2验路1 2 1 2（1、将神经屏蔽盒刺激电极（S、S）与刺激器输出连接；记录电极(R、R)与0图1 2 1 27图41观神图（2入BL-420子“验。3．察电位将经用璃轻在屏内极坐经的的放纸盒盒。标个最，观围变。（二、神经冲动传导速度的测定1 3光从R传导到1 3出R到R3间S算（。、神经干兴奋不应期的测定1。2、改刺强件适调个波时间，两方激产的动，它度。3、缩两方间时间可第动电向个作靠，两时记刚时两隔。4、改两方间时间使二作位续一动位近并渐对期近相，5、剪切、打印实验结果。【注意事项】1。2。实验五、反射时的测定、反射弧的分析及搔扒反射的观察【目的要求】1. 。. 。【实验原理】在中枢神经系统参与下，机体对刺激所引起的适应性反称为反射；从皮肤接收刺激机应反过射动结构的任何一部分受到破坏，均不能实现完整的反射活动。【材料与器械】养、烧杯（0－％）硫酸溶液、2普鲁卡因。【实验步骤】、制备脊蛙：取蛙一只，单毁髓，然后用铁夹夹住下颌，悬挂在铁支架上（图5-1。2盛%当反用来上溶定时3测后反。3、围绕右肢趾皮一切将剥重骤2，结果如？为8什么？4、按步骤2的？5、取一浸有1%硫酸溶液的滤纸片，贴于蟾蜍右侧下背部皮肤上，观察搔扒反射，并记录射。6分离右侧坐骨神经在右侧大腿背侧剪开皮肤在股二头肌和半膜肌之间分离坐骨神经，用一细棉线包住分离的坐骨神经在细棉线上滴加几滴2%的普鲁卡因溶液后每隔2，重复步骤4。7、当右下肢屈反射刚刚不能出现时，立即重复步骤5。每隔2分钟重复一次步骤5，直到右下肢的再录。7、将左侧后肢最长趾再次浸入0.5%硫酸溶液中，观察反应。以探针破坏蛙的脊髓，再重复实验，观察有何反应？图5-1反射弧分析实验示意图[注意事项]1、浸入硫酸中的部位应仅限于趾尖部位，每次浸入的范围，时间要相同，趾尖不能与培养接。2、每次用硫酸刺激后，应立即用自来水洗去皮肤残存的硫酸，再用纱布擦干，以保护皮肤刺。实验六、蟾蜍心室肌的期前收缩与代偿间歇【目的要求】1.学。2.观察心室在收缩活动的不同时期对额外刺激的反应；了解心肌兴奋性的变化及代偿间隙的。【实验原理】特系有哺结9传心点。心肌每兴会变一的不约期何都奋后如心一效激兴期期后一期歇。【材料与器械】蟾蜍、蛙板蛙手术器械B－4物机能实验系统张力换能器蛙心夹铁支架、夹棉、。【实验步骤】、取蟾蜍，用探针破坏中枢神经系统，背位固定于蛙板。、自剑突向两侧嘴角方向打开胸腔，剪去胸骨，暴露心脏（图61、剪开心包膜，认清心房、心室。用带有细线的蛙心夹于心舒期夹住心尖部（图62、连接实验装置进入BL-机能实验系统（图6。、观察项目（、记录一段正常的心搏曲线。（分别于心室活动的舒张期，收缩期给于一个阈上单刺激，观察有无一额外的收缩，即期前收缩和随后出现的代偿间歇（图64、剪切、打印实验结果。图6-1露蟾蜍心脏 图6-用蛙心夹夹住心尖，放置刺激电极图6-3图10图64期歇【注意事项】、剪开心包时一定要仔细，以免损伤心脏和大血管；、蛙心不可夹得太多，否则影响其活动，也不可夹破心脏；、不可连续输出两个刺激，每次刺激后要有三四个正常心搏曲线作为对照；、应不断给心脏滴加任氏液，保持其湿润。实验七、离体小肠平滑肌的生理特性【目的要求】、掌握家兔离体小肠标本制作的方法和离体小肠平滑肌一般生理特性的实验方法；、观察某些因素对离体小肠活动的影响，以认识消化道平滑肌的一般生理特性。【实验原理】保节变呈同应察滑内（分酸消。【材料与器械】家兔0生物机能实物平、、1:10000肾、1:10000、1H1、00阿托品、。【实验步骤】、麦氏浴槽的准备（图71、离肠制：用木锤击头，其迷，剖腹，幽与十二指肠交界处为起点，先将肠系膜沿肠缘剪去，再剪取2～3O管。肠段取出后，置于3℃左右台氏液内轻轻漂洗，在肠管外壁用手轻轻挤压以除去肠管内容物。当肠腔内容物洗净后用℃左右的台氏液浸浴当肠管出现明显活动时将其剪成约3的肠段。实验时，取出一段长约～4肠段，用线结扎其两端，迅速将小肠一端的结扎线固定于挂紧或过松（图7。、连接系统及进入BL-实验机能系统、观察项目：（、记录正常收缩曲线。（、改变温度：将浴槽中的台氏液更换成25台氏液，观察小肠平滑肌收缩曲线的变化。再更换成38台氏液，观察小肠平滑肌收缩曲线的变化。1图7-1温灌流装置和麦氏浴槽图7氏浴槽连接示意图（、乙酰胆碱的作用：向浴槽内滴1:10碱溶液滴，观察小肠平滑肌收缩曲从乙准备好的38新鲜台氏液，重复更换～次新鲜台氏液，使残留的乙酰胆碱达到无效浓度。滑至进。（、阿托品的作用：向浴槽内滴入1:10阿托品～滴，观察小肠平滑肌收缩曲线的变化。观察到明显效应后，再加入：10酰胆碱溶液滴，观察小肠平滑肌的收缩台。（、肾上腺素的作用：在浴槽中加入1:10素溶液滴，观察小肠平滑肌收缩化后中。（、H作用：在浴槽中加1mol液观察小肠平滑肌收缩曲线的变化。观察到明显效应后，同上法将浴槽中的台氏液换掉。12（、NaOH用：在浴槽中加1mLNa溶液滴，观察小肠平滑肌收缩曲线的变察应将台。（、B用：在浴槽中加1%B滴。观察小肠平滑肌收缩曲线的的变化。（、剪切、打印实验结果。图7-3分实验结果【注意事项】求通02度恒定实验中可根曲台肌逆。实验八、家兔颈部的精细解剖【目的要求】、学习和掌握家兔颈部气管、血管和神经分离术；、辨认气管、食道、颈总动脉、迷走神经、减压神经和交感神经的相互位置关系。【材料与器械】家兔、手术台、常用手术器械、气管插管、棉球、丝线、注射器、20%氨基甲酸乙酯【实验步骤】、麻醉动物：动物称重，麻醉。注射剂量：20%氨基甲酸乙酯1g/kg；注射部位：耳缘静脉；深。2、固定与剪毛：定手；：。3、手术（1）皮肤切口：沿颈部正中切开皮肤，切口长5-7厘；（）分皮组；（）分。13（）气管分离与插管术用血钝性分气在甲状软骨以剪开管入Y将。（）神到色定由迷经线。（6）总外。【注意事项】、耳缘静脉注射麻醉时应注意不要过于紧张。、注意肌肉钝性分离的要点。、分离神经时一定要先确定三根神经的位置，由细至粗分别分离。实验九、家兔呼吸运动的影响因素【目的要求】1。2呼。【实验原理】性节过种动吸的节张感射外以用于中枢或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。【材料与器械】家兔、哺乳类动物手术器械、兔手术台、气管插管、注射器（20mll只、50cm长橡皮管一条、BL-机能实验系统、呼吸换能器、纱布、线、刺激电极、2基甲酸乙酯溶液、％乳酸溶液、生理盐水。【实验步骤】、手术（）麻醉和固定：同实验六。（）气管插管：同实验六。（）分离迷走神经：同实验六。、连接实验装置及进入BL-机能实验系统将呼吸换能一能与BL-0系统的CH1；极相图1。图91呼置、观察项目14（）。（）窒息对呼吸运动的影响夹闭气管插管两侧管，此时动物虽用力呼吸，但不能呼出肺吸憋态对。（）增加无效腔对呼吸运动的影响：将50的橡皮管用小玻璃管联接在侧管上，家兔此行明去掉橡皮管，待呼吸运动恢复正常后再进行下项观察。（）酸对呼吸运动的影响：用5射器，由耳缘静脉较快地注入％乳酸2观察此吸的。（）迷走神经在呼吸运动中的作用：描记一段对照呼吸曲线后切断侧走神，观等刺中运。（）实。图9-2吸）【注意事项】．气管插管时，应注意止血，并将气管分泌物清理干净。．每项观察项目前均应有正常描记曲线作为对照。每项观察时间不宜过长，出现效应后应施吸后察。．经耳缘静脉注射乳酸时，注意不要刺穿静脉，以免乳酸外漏，引起动物躁动。电极刺激神端调激激而身肉生果。实验十、眼球、心脏和肾脏的解剖【目的要求】、了解心的位置、形态及大体解剖结构，掌握心房、心室与出入心的大血管之间的联系；、掌握肾的大体解剖构造；、掌握眼球的大体解剖结构。【实验原理】模心体。【观察项目】一、心脏的解剖一)心脏的形态结构观察1心脏位置的观察。取人体有胸腔解剖标本或人体半身模型，观察心脏位于胸腔纵隔内、膈之上，左、右两肺之间，整个心的／位于正中线的右侧，／居正中线的左侧。15到。2心脏形态的观察。取心脏标本或心脏放大模型，可观察到心外形呈前后稍偏的圆锥体，锥底即心底，朝向后上方，锥尖即心尖，朝向左前下方，用右侧手指指腹在左侧第5肋间隙可摸到心尖搏动在心脏模型上辨认心的胸肋面即前面膈面即后面左右缘即肺面。近心底处可看到环形沟，即冠状沟，此沟为心房与心室的表面分界标志；在胸肋面别下室沟界主、脉。二)观察心脏各腔的结构1观察右心房取心脏放大模型，将右心耳取下，观察辨认后上、下部分的上腔静脉口房。标内右型楚。2观察右心室将心脏放大模型的右心室前壁取下，或在心脏标本右心室中，观察、辨认右房室口周围纤维环上附着的个三角形瓣膜即三尖瓣仔细观察三尖瓣借腱索连于乳头肌的情况思考三尖瓣的结构对心脏内血流方向的作用在右心室左上方观察肺动脉口，见周纤附有3个半月形的肺动脉瓣，把心脏标本的肺动脉纵行剪开处用镊子翻开，可见肺动脉瓣的个袋口朝上。思考肺动脉瓣结构对血流方向的作用。。3观察左心房在心脏放大模型上可见左心房的后部较大，壁光滑，两侧有左、右肺静脉的个开口前部左前方为左心耳，将左心耳取下，可见其内有发达的梳状肌腔内可见左裂左。。4观察左心室将房口周环的观周其。二、肾脏的解剖（一、位置和形态1.的位置第1胸椎下缘，下端平第腰椎下缘。右肾比左肾低半个锥体。2肾的形态包的。（二）、肾的大体解剖肾质呈红竭色，颗粒状，髓质由1余个肾锥体组成，肾锥体呈浅红色条纹状。锥体尖端钝圆，突管于液肾肾底质相于迷。线路肾相组于体质称。三、眼球的解剖一)观察眼球外形标似方。二)取水平切的眼球模型或标本的下半部，观察眼球的如下结构：1、观察眼球壁的三层结构，用眼球模型或标本进行观察。2、观察眼球的屈光装置。取眼球标本下半部观察、辨认角膜、前房水、后房水、晶状体和璃。16实验十一、神经系统的形态结构观察【目的要求】小构叶。【材料与器械】模多。【观察项目】一、脊髓与脊神经（一、脊髓的外部形态端在平齐枕骨大孔处与延髓相连下端平齐第一腰椎下缘长约40～45cm脊髓的末端变细，下是水脊下面。第。前后中前后经纤维组成；后根经神成构。1灰质或“，灰右灰在灰角贯走胞。2白质主后索部分。三、脊神经脊神经共3对，计有