大肠杆菌计数

关于大肠杆菌计数第1页，课件共29页，创作于2023年2月广泛存在于人和温血动物的肠道中，能够在44.5℃发酵乳糖产酸产气、IMViC生化试验(靛基质、甲基红、VP试验、柠檬酸盐)为++--或-+--的革兰阴性杆菌。大肠杆菌的定义第2页，课件共29页，创作于2023年2月大肠杆菌的某些菌株对人有致病性。相对于大肠菌群和粪大肠菌群，大肠杆菌与粪便污染的相关性最好，应用也最悠久。自1892年被提议作为粪便污染的指示菌以来，已被应用了100多年。为什么后来又有了大肠菌群和粪大肠菌群的应用？主要的原因是因为大肠杆菌的检验过于复杂。大肠杆菌是用于评价食品近期受到粪便污染的指标。随着食品卫生标准的日益科学和细化，以及对大肠杆菌检验方法的不断改进，对特定食品的大肠杆菌的检验需求肯定会越来越多，因此在本次标准修订时增加了大肠杆菌计数方法。卫生学意义第3页，课件共29页，创作于2023年2月大肠杆菌计数第一法：MPN法第二法：VRBA-MUG平板计数法第三法：Petrifilm测试片法第4页，课件共29页，创作于2023年2月第一法大肠杆菌计数MPN法第5页，课件共29页，创作于2023年2月大肠杆菌计数MPN法检验程序检样25g(ml)+225ml稀释液，均质10倍稀释选择3个连续稀释度样品匀液接种LST48±2h36℃±1℃不产气产气EC肉汤45℃±0.2℃24±2h不产气产气EMB琼脂平板36℃±1℃24±2h营养琼脂斜面培养IMViC生化试验，革兰染色查MPN表，报告第6页，课件共29页，创作于2023年2月初发酵选择适宜的三个连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液）。每个稀释度接种3管LST肉汤，每管接种1mL（如接种量需要超过1mL，则用双料LST肉汤）。36℃±1℃培养48h±2h，如所有LST肉汤管均未产气，即可报告大肠杆菌MPN结果。第7页，课件共29页，创作于2023年2月复发酵如有产气者，则转接到已提前预温至45℃的EC肉汤管中。将所有接种的EC肉汤管放于带盖的44.5℃±0.2℃水浴箱内，水浴的水面应高于肉汤培养基液面，培养24h±2h，如所有EC肉汤管均未产气，即可报告大肠杆菌MPN结果。第8页，课件共29页，创作于2023年2月分离培养与纯化如有产气者，则分别划线接种于伊红美蓝（EMB）平板，36℃±1℃培养24h±2h后检验平板上有无具黑色中心有光泽或无光泽的典型菌落。挑选典型菌落，如无典型菌落则挑取可疑菌落。用接种针接触菌落中心部位，移种到营养琼脂斜面或平板上，进行进一步的纯化分离。第9页，课件共29页，创作于2023年2月生化鉴定取培养物进行革兰氏染色和生化试验。只要有1个菌落鉴定为大肠杆菌，其所代表的LST肉汤管即为大肠杆菌阳性。查MPN表，报告每g（mL）样品中大肠杆菌MPN值。第10页，课件共29页，创作于2023年2月大肠杆菌与非大肠杆菌的生化鉴别注：如果是出现了这个表以外的生化反应类型，表明培养物可能不纯，应该重新划线分离，必要时需要重复试验。靛基质(I)甲基红(M)VP试验(Vi)枸橼酸盐(C)鉴定(型别)＋－＋＋－－－－典型大肠杆菌非典型大肠杆菌＋－＋＋－－＋＋典型中间型非典型中间型－＋－－＋＋＋＋非典型产气肠杆菌非典型产气肠杆菌第11页，课件共29页，创作于2023年2月EMB琼脂主要成分：乳糖、营养物质。指示剂系统：伊红和美监。原理：大肠菌群分解乳糖产酸，使伊红与美蓝结合而形成黑色化合物，故菌落呈黑紫色，并可产生金属光泽。黑色程度与光泽产生情况与伊红、美蓝二者的比例有关。不发酵乳糖产酸的细菌，在碱性环境中不能使伊红、美蓝结合，因而形成无色的菌落。部分大肠菌群的菌株在EMB上可形成红色或粉红色的菌落。（应注意非典型的菌落）。第12页，课件共29页，创作于2023年2月EMB琼脂上大肠杆菌的典型菌与

可疑菌落典型菌落：具黑色中心有光泽或无光泽的菌落。非典型的可疑菌落：粉红色，无黑心第13页，课件共29页，创作于2023年2月生化鉴定的注意要点靛基质试验：36℃±1℃，24h±2h；甲基红试验：36℃±1℃，4d；滴加甲基红试剂，出现红色为阳性；出现黄色为阴性结果。V-P试验：36℃±1℃，48h±2h；滴加试剂后若未出现伊红色，应再培养2h后再观察结果。柠檬酸盐试验：36℃±1℃，96h±2h；观察有无细菌生长。有细菌生长培养基可变为蓝色。第14页，课件共29页，创作于2023年2月第二法

VRBA-MUG平板计数法第15页，课件共29页，创作于2023年2月制订依据美国食品药品管理局（FDA）：BacteriologicalAnalyticalManual，2002，Chapter4：EnumerationofEscherichiacoliandtheColiformBacteria第16页，课件共29页，创作于2023年2月基本原理4-甲基伞形酮-β-D-葡萄糖苷，英文缩写MUG。是一种不产生荧光的底物。由于96%的大肠杆菌都具有葡萄糖醛苷酸酶，能分解β-D葡萄糖醛苷，而使4-甲基伞形酮游离出来，在366nm紫外光下产生蓝色荧光。观察到蓝色荧光即可认为是大肠杆菌阳性。MUG对大肠杆菌的生长繁殖既没有抑制作用也没有促进作用，对菌落形态也没有影响。第17页，课件共29页，创作于2023年2月VRBA-MUG平板计数法检验程序检样25g(ml)+225ml稀释液，均质10倍系列稀释选择2~3个适宜稀释度的样液，接种VRBA-MUG平板紫外光下，计数发荧光的菌落报告结果36℃±1℃18~24h第18页，课件共29页，创作于2023年2月检验选取2～3个适宜的连续稀释度的样品匀液，每个稀释度分别取1mL注入两个无菌平皿。另取1mL样品稀释液注入一无菌平皿中，作空白对照。将预热至45℃士0.5℃的结晶紫中性红胆盐琼脂10mL～15mL倾注于每个平皿中。小心旋转平皿，将培养基与样品匀液充分混匀。待琼脂凝固后，再加3mL～4mLVRB-MUG覆盖平板表层。凝固后翻转平板，36℃±1℃培养18h～24h。注：空白对照不加VRB-MUG覆盖。第19页，课件共29页，创作于2023年2月大肠杆菌平板计数与报告选择菌落数为10～100的平板，暗室中360nm～366nm波长紫外灯照射下，计数平板上发浅蓝色荧光的菌落。两个平板上发荧光菌落数的平均数乘以稀释倍数，报告每克(或毫升)样品中大肠杆菌数，以cfu/g(mL)表示。第20页，课件共29页，创作于2023年2月注意事项在实验时要用已知MUG阳性菌株（如大肠杆菌ATCC25922）和产气肠杆菌（如ATCC13048）做阳性和阴性对照。在选择计数平板时，选择的菌落数不要太多太密，50个左右效果比较好些。原因是游离的4-甲基伞形酮有水溶性，能从菌落向培养基中扩散，菌落太多的话，尤其是阳性菌落太多时，很可能因荧光扩散，造成较大的误差。紫外灯的功率不要太大。功率大了需要做好个人防护。第21页，课件共29页，创作于2023年2月第三法PetrifilmTM测试片法

第22页，课件共29页，创作于2023年2月基本原理PetrifilmTM大肠杆菌/大肠菌群测试片是一种预先制备好的培养基系统，含有VRB培养基，冷水可溶性凝胶和葡萄糖苷酶指示剂，可增强菌落计数效果。E.coli能产生-葡萄糖苷酸酶与培养基中的指示剂反应，产生蓝色沉淀环绕在大肠杆菌菌落周围。表面覆盖的胶膜，可截留发酵乳糖的大肠菌群产生的气体。培养结束后计数蓝点带气泡的菌落即为大肠杆菌数，红点带气泡和蓝点带气泡的菌落之和为大肠菌群数。第23页，课件共29页，创作于2023年2月大肠杆菌PetrifilmTM测试片检验程序检样25g(ml)+225ml稀释液，均质10倍系列稀释选择2~3个适宜稀释度的样液，接种PetrifilmTM大肠杆菌测试纸片计数蓝色带气泡菌落报告结果36℃±1℃24±2h或48±2h第24页，课件共29页，创作于2023年2月操作要点合理稀释度的选择，每稀释度接种2张测试片；接种时将纸片置于平坦在实验台，接种后将上层膜缓慢盖下，避免气泡产生；培养基未凝固时勿挪动；对于肉、家禽和水产品，培养时间为24h2h,对于其它产品，培养时间为48h2h。培养时纸片堆叠不要超过20片。第25页，课件共29页，创作于2023年2月结果判读大肠杆菌为蓝点带气泡的菌落；不论蓝色深浅，部分蓝色带气泡的菌落均为大肠杆菌；圆形边缘上及边缘外的菌落不计数；注意样液菌量高的几种情况；蓝点带气泡菌落和红点带气泡菌落之和为大肠菌群数。第26页，课件共29页，创作于2023年2月大肠杆菌测试片的计数与结果报告选取菌落数在15~150之间的测试片作为计数标准。选择菌落数在15~150之间的稀释度，平均菌落数乘以稀释倍数报告之。如果所有稀释度测试片上的菌落数都小于15，则计数稀释度最低的测试片上的平均菌落数乘以稀释倍数报告之。如果所有稀释度的测试片上均无菌落生长，则以(<)1乘以最低稀释倍数报告之。第27页，课件共29页，创作于2023年2月如果最高稀释度的菌落数大于1