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文档简介

研究生实验一、T细胞表型测定(一)二、小鼠脾细胞分离技术邸大林Tel:2608468Email:实验一、T细胞表型测定(一)

---免疫细胞的分离、细胞涂片、固定及保存原理:

T细胞是一个复杂的,不均一的整体,根据其发育的不同阶段,表面标记以及功能,可将其分为不同的亚群。T细胞介导细胞免疫应答,并且对B细胞介导的体液免疫应答起到辅助和调节作用。正常值:正常人外周血中:

CD3为60%~80%;CD4为35%~55%;CD8为20%~30%CD4/CD8的正常值约1.4~2.0。CD4/CD8<1.4:①免疫缺陷病,如艾滋病的比值常小于0.5;②恶性肿瘤;③再生障碍性贫血;④某些病毒感染。CD4/CD8>2.0:自身免疫性疾病,如SLE、类风湿关节炎等。T淋巴细胞表面标志的检测,有助于了解机体的细胞免疫功能,对免疫缺陷病、肿瘤、自身免疫性疾病、病毒感染、移植排斥反应等疾病的诊断、分型、预后和疗效观察有着重要的意义。Tcell待测T细胞CD分子(???)一抗二抗底物实验基本流程实验材料肝素、淋巴细胞分层液、Hank’s液、PBS等;一次性注射器、试管、滴管、离心机、微量移液器、玻片、显微镜,温箱等。鼠抗人CD3、CD4、CD8单克隆抗体(1抗);羊抗鼠IgG(生物素化2抗);SABC-AP;底物(BCIP/NBT磷酸甲苯胺蓝盐)等。标本制备:淋巴细胞悬液的制备(1)取肝素抗凝血5ml与5mlHank’s液稀释混匀,每组取2ml,用滴管贴管壁轻轻叠加于2ml分离液上,配平后1500rpm离心10mins。(2)洗涤细胞:用滴管仔细吸出位于血浆和分离液之间乳白色的淋巴细胞,放入盛有2mlHank’s液的试管,1500rpm离心10mins,弃上清,将沉淀的淋巴细胞轻弹混匀后加入Hank’s液重复洗涤一次,最后一次用PBS洗涤。(3)弃去上清,淋巴细胞沉淀用200μlPBS溶解,取20μl细胞涂片,下一次实验检测T细胞亚群用。标本染色细胞涂片用记号笔划圈,滴固定液1滴,室温固定2~3分钟。滴加鼠抗人CD3、CD4、CD8抗体15μL,轻轻摇晃,使单抗均匀铺在细胞表面,37℃孵育2~3h,PBS洗3次。滴加生物素标记羊抗小鼠抗体15μL,37℃孵育30~45分钟,PBS洗3次。滴加SABC15μL,37℃孵育30~45分钟,PBS洗3次。滴加显色剂30~50μL,室温显色20~40分钟。可在显微镜下观察,待细胞膜上出现红色标记物时,用PBS淋洗。滴加细胞核复染液1滴,30秒后自来水淋洗。显微镜下观察结果。观察结果高倍镜下计数100~200个单个核细胞。计算阳性率。

阳性细胞:细胞表面呈红色。

①标准阳性:细胞表面呈红色,可见深蓝色细胞核;

②强阳性:细胞周缘及中央均呈红色,看不见细胞核;

③弱阳性:细胞表面呈淡红色,可见淡兰色细胞核;

④阴性细胞:细胞表面无着色反应,呈淡兰色。注意事项:为防止试剂受到污染,加样器吸头最好为一次性使用。分离单个核细胞中,将稀释血液加于分层液上时,务必要使之形成良好的界面,否则影响分离结果。孵育过程中,应将涂片置于湿盒中,操作中始终要注意保持涂片的湿润,以确保得到完美的实验结果。淋洗时不要直接对着细胞冲,避免细胞脱落。淋洗后,加试剂前须擦干细胞圈外水分,以免试剂流散。实验材料:实验动物:小鼠。细胞培养液。试管,滴管,离心机,培养皿,100目细胞筛等。选择小鼠,拉脱颈椎处死,用碘酒、酒精消毒皮毛。剪开皮肤,打开腹腔。找到红色的脾脏,用镊子分离后摘除。将脾脏放入盛有5-10ml培养液的平皿中轻轻漂洗,并细心剥除脾脏周围的结缔组织。将脾脏移入另一个盛有5-10ml培养液的平皿中,轻轻漂洗后置于100目细胞筛中,轻轻挤压使脾细胞通过筛孔进入培养液中,反复冲洗,以取得脾细胞悬液。1、分离小鼠脾细胞收集分离出的脾细胞,置于10ml离心管内加入培养液吹打,取10μl细胞,与10μl胎盘蓝染液混匀后染色并观察细胞活力,同时进行细胞计数。细胞活力观察(台盼蓝染色):细胞损伤或死亡时,台盼蓝可穿透变性的细胞膜,与解体的DNA结合,被染成淡蓝色,而活细胞能阻止染料进入细胞内,可以鉴别死细胞与活细胞。细胞计数:采用细胞计数板。2、细胞活力观察及计数细胞计数:

步骤:①用乙醇清洁计数板及专用盖玻片,然后用绸布轻轻拭干;②用微量移液器取少许细胞悬液(10μl),将细胞样本从室的一个口注入,液体在室中扩散,空气从另一个口排除;③观察计数板四角大方格中的细胞数,并计算细胞

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