PCR反应引物设计方法及原理-2023修改整理

千里之行，始于足下让知识带有温度。第2页/共2页精品文档推荐PCR反应引物设计方法及原理PCR反应引物设计办法及原理

（一）设计引物前应的预备工作：

1．预备载体图谱，大致预备把片断插在那个部分

2．对片断举行酶切分析，确定一下那些酶切位点不能用

3．预备一本所买公司的酶的商品名目，便于查酶的各种数据及两种酶是否可以配用

（二）引物的结构：5’—庇护碱基+酶切位点+引物配对区—3’

1．两个酶切位点

2．酶切位点的庇护碱基

3．5’端庇护碱基

4．3’端庇护碱基

5．引物配对区

（三）设计引物所要考虑的问题

1．酶切位点

两个酶切位点应是载体上的，所衔接片断上没有这两个位点，且距离不能太近，否则往往导致两个酶都切不好。因此，两个酶切位点要紧挨在一起，只能切一个，除非恰好是与上面两个酶在一起的酶切位点，最好隔四个核苷酸。且不能有碱基的交错，比如AGATCTTAAG，这样的位点比较难切。

2．酶的挑选

最好使用双酶切效率高的，但两个酶切点最好不要是同尾酶（切下来的残基不要互补），否则效果相当于单酶切，最好使用具有共同buffer，且较常用的酶（如hind3，bamh1，ecor1等），这样可以省钱。

3．Tm的计算。

Tm是由互补的DNA区域打算的，而不互补的区域对DNA的溶解是没有作用的。因此，对于引物的Tm，惟独和模板互补的区域对Tm才有贡献。计算Tm时，

只计算互补的区域（除非你的酶切位点也与模板互补）。设计引物的时候，先不管5'端的修饰序列，把互补区的Tm控制在55度以上（我喜爱 控制在58以上，详细按照PCR的详细状况，对于困难的PCR，需要适当提高Tm），再加上酶切位点和庇护碱基，这样的引物通常都是可用的，即使有小的问题，也可以挽回。

Tm温度高的引物就比较简单克服3’发卡、二聚体及3'非特异结合等问题。容易的计算公式可以用2+4的公式。若你计算的Tm值达到了快90，不包括酶切位点。引物公司给你发的单子是包括酶切位点的。自己可以再估量一下。如你设计了带酶切位点的引物，总长分离为29、33个碱基，去掉酶切位点和庇护碱基，分离为17、21个碱基。引物公司给的单子是70多度，实际用的惟独50度，用55度扩的结果也差不多。

其它关于Tm值的计算，实用PP5.0举行评价的，需要考虑basenumber、GC%、Tm、hairpin、dimer、falsepriming、crossdimer等参数。

4．退火温度

退普通退火温度为Tm-5度，退火温度的计算可以不把加入的酶切位点及庇护碱基考虑进去，PCR几个循环后，引物外侧的序列已经参入了扩增片断中，所以你可以在预变性后多加几步，温度比你Tm值低些（这样可能会增强非特异性），Tm值是你包括酶切位点及庇护碱基的Primer计算出来的。

5．5’端庇护碱基

普通在5'端加庇护碱基,假如你扩增后把目的条带做胶回收转入T-VECTOR或者其它的载体的话,酶切时可以不需加庇护碱基

6．引物二聚体

关于引物二聚体，最好用primer或是其他设计引物的软件举行计算一下，看看引物之间的△G（自由能）的肯定值，假如小于10，普通是问题的。假如稍大，PCR时可以提高一下退火温度，普通是没有问题的。假如3’端形成二聚体，并且自由能肯定值较大，假如PCR没有条带，建议重新设计引物。此外，所加的三个核苷酸的庇护序列经过尽心设计有时也可以降低二聚体的△G。

7．引物的设计

在设计酶切位点时，最好能尽可能多的利用引物本身的碱基。这是由于，一个特异性引物普通都是20bp左右，再加上酶切位点序列和庇护性碱基，大致就是28bp左右了。而我们在设计退火温度时，与引物的长度有关，比正常的引物(20bp)的

Tm绝对要高一些。假如我们能利用引物自身的部分序列，就可以有效地削减引物的长度。

还有，有些酶是离不开末端序列的，因此，在设计一个酶位点时，最好把该酶的性质弄清晰。设计时限制性酶切位点是应当在5’端的顶端。在设计引物时，常在5’端添加酶切位点，以利于PCR产物衔接到载体。

设计引物时保证在最后5个核苷中含有3个A或T。先用软件设计出合适的引物，引物的3’端是引发延长的起点，因此一定要与模板精确     配对，应尽量避开在引