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文档简介
,摘要:本文旨在介绍使用软件设计PCR引物的技巧。在PCR引物设计原则的基础上,详 TodesignPCRprimerswithOligo6andPrimerZhangXinyu,ZhuYoukang,Gao(Cancer AcademyofMedicalSciences,Beijing,100021,:TheskillofPCRprimerdesignwithsoftwareisintroducedinthispaper.BasedontheprincipalofPCR-primerdesign,theusageoftwokindsofpopularprimer-designsoftwarewasrevieweddetailedly,includingtheirmerit,demeritandusageskills.Itis mendedthattousePrimer5doestheusualautomaticprimerssearch,butOligo6primersysis.:PCRprimer;design;usage1985KarnyMullis发明了聚合酶链式反应以来,PCR技术已成为分子生物学研究中使用最多、最广泛的之一[1],而引物设计是PCR技术中至关重要的一环。使用不PCR引物容易导致实验失败:表现为扩增出目的带之外的多条带(如形成引物二聚PCR引物设计大都通过计算机软件进行。可以直接提交模板序列到特定网页,得length(productlengthTm(meltingtemperature),引物与模板形成双链的内部稳定性(internalstability,用∆G值反映),形成引物二聚体(primerdimer)及发夹结构(duplexformationandhairpin)的能值,在错配位点(falseprimingsite)的效率,引物及产物的GC含量(composition,等等。必要时还需对引物进行修饰,如增加限制性内切酶位点,伸温度大于74℃,不适于TaqDNA聚合酶进行反应[2]。引物序列在模板内应当没有相似性较高,尤其是3’端相似性较高的序列,否则容易导A3个碱基,因此应neighbormethod[6][7]。∆G值是指DNA双链形成所需的自由能,该值反映了双链结构内部碱基对的相对稳定物。引物的3’端的∆G值过高,容易在错配位点形成双链结构并DNA聚合反应[6]。降低引物有效浓度而使PCR反应不能正常进行[8]。PCR因为产商业版软件能够做到,其中以“Oligo6”最优秀;其次是引物的自动搜索功能,各种软件在“Primer”为最强且方便使用,“Oligo6”其次,其他软件如“VectorNTISuit”、Primer5.0的使用技巧简“”的主要功能分四大块,其中有三种功能比较常用,即引物设计()、限制性内切酶位点分析()和DNA基元(motif)查找()“”还具有同源最重要的是设计简并引物,另外还有序列“朗读、DNA与蛋白序列的互换(、有时需要根据一段氨基酸序列反推到DNA来设计引物,由于大多数氨基酸(20种常见结构氨基酸中的18种)的遗传不只一种,因此,由氨基酸序列反推DNA序列时,会 板DNA的来源以相应的遗传规则转换DNA和氨基酸序列。软件共给出八种生物亚结MacronuclearMchnronsmaMioconrocrandardMitochondrion)和酵母线粒体(YeastMitochondrion。能比较简单,点击该功能按钮后,选择相应的限制性内切酶或基元(如-10序列,-35序列进行引物设计时,点击按钮,界面如下进一步点 ,Primers,Primers,ProbesBoth(Pairs引物为主(CompatiblewithSense/Anti-sensePrimer。另外还可改变选择区域(SearchRanges,后按,随之出现的SearchProgress窗口中显示 pleted时,再按,这时搜索结果以表格的形式出现,有三种显示方式,上游引物(Sense),下游引物为100,即各指标基本都能达标(如下图。点击其中一对引物,如第1#引物,并把上述窗口挪开或退出,显示“Peimer PCR模板及产物位置,中间是所选的上下游引物的一些(Harpin(DimerPrimingDimer好的情况是最下面的分析栏没有,只有。值得注意的是中间一栏的末在需要对引物进行修饰编辑时,如在5’端加入酶切位点,可点击,然后修改引物序列。若要回到搜索结果中,则点击按钮。则,反推至DNA序列即可。对简并引物的分析不需像一般引物那样严格。““Oligo6.22易被其复杂的图表吓倒。Oligo5.0的初始界面是两个图:Tm图和ΔG图;Oligo6.22的界Frq图。“Oligo”的功能比“”还要单一,就是引物使用(Oligo6.22为例下角的Upper按钮,选好上游引物,此时该按钮变成,表示上游引物已选Lower。∆G值反映了序列与模板的结∆G5’端和中间值比较高,而在3’端相对低(如图:)Tm值曲线以选取72℃附近为佳,5’到3’的下降形状也有利于引物聚合反应。Frq曲线用3’端Frq值相对较低的片段。引物二聚体尤其是3’端二聚体形成的可能性。需要注意的是,引物二聚体有可能是上游或下游引物自身形成,也有可能是在上下游引物之间形成(crossdimer。二聚体形成的能值越高,越不符合要求。一般的检测(非克隆)性PCR,对引物位置、产物大小要求较低,(hairpin;PCR需要通过灵活调控退火温度以达到最好效果,对引物的发夹GC45-55%为宜。有一些模板本身的GCGC含量不能被控制在上述范围内,这时应尽量使上下游GCTmPCR的模板不是基DNAFalseprimingsite的检测。这项检查可以看出引物在非目的位点PCR反应的可能性。如果引物在错配位点的效率比较高,就可能出假阳性的PCR结果。一般在错配效率以不超过100为好,但对于特定的效率为450以上,而在错误位点的效率为130,那么这对引物也是可以接受的。置、产物大小、Tm值等参数,最有用的是还给出了推荐的最佳退火温度和简单的评价。 开发的“Primer3”等(本已引进并调试好该软件,欢迎使用。该软件的独特之处在于,对全组PCR的引物设计;可以将设计好的引物对核酸数据库进行比对,发现并排除可错配的引物。因此建议经常做全组PCR的用户试用。参考文献(References:::林万明著.PCR技术操作与应用指南.:人民军医朱平主编.PCR扩增实验操作手册.:中国科学技术,郑仲承.寡核苷酸的优化设计.生命的化学GeorgeH.KellerMarkM.Manak.DNAprobes.
医学中国Martin,F.H.,Castro,M.M.,andTinoco,Jr.I.Basepairinginvolvingdeoxyinisine,implicationsforprobedesign.NucleicAcidsRes,1985,13:8927~8938.Rychlik,W.andR
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