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文档简介
DNA重组实验原理实验仪器实验步骤实验试剂注意事项实验原理
外源DNA与载体分子的连接就是DNA重组,这样重新组合的DNA叫做重组体或重组子。重组的DNA分子是在DNA连接酶的作用下,有Mg2+、ATP存在的连接缓冲系统中,将分别经酶切的载体分子与外源DNA分子进行连接。DNA连接酶有两种:T4噬菌体DNA连接酶和大肠杆菌DNA连接酶。两种DNA连接酶都有将两个带有相同粘性末端的DNA分子连在一起的功能,而且T4噬菌体DNA连接酶还有一种大肠杆菌连接酶没有的特性,即能使两个平末端的双链DNA分子连接起来。但这种连接的效率比粘性末端的连接效率低,一般可通过提高T4噬菌体DNA连接酶浓度或增加DNA浓度来提高平末端的连接效率。重组质粒转化宿主细胞后,还需对转化菌落进行筛选鉴定。利用α互补现象进行筛选是最常用的一种鉴定方法。现在使用的许多载体诸惧有一段大肠杆菌β半乳糖苷酶的启动子及其编码。肤链的DNA序列,此结构称为lacZ'基因。lacZ'基因编码的α肽链是β半乳糖苷酶的氨基端的短片段(146个氨基酸)。宿主和质粒编码的片段各自都不具有酶活性,但它们可以通过片段互补的机制形成具有功能活性的β半乳糖苷酶分子。lacZ'基因编码的α肽链与失去了正常氨基端的β半乳糖苷酶突变体互补,这种现象称为α互补。由α互补而形成的有功能活性的β半乳糖苷酶,可以用X-gal(5-溴-4-氯-3-吲哚-β-半乳糖苷)显色测定出来,它能将无色的化合物X-gal切割成半乳糖和深蓝色的底物(5-溴-4-靛蓝。因此,任何携带着lacZ'基因的质粒载体转化了染色体基因组存在着此种β半乳糖苷酶突变的大肠杆菌细胞后,便会产生出有功能活性的β半乳糖苷酶,在IPTG(异丙基硫代β半乳糖苷)诱导后,在含有X-gal的培养基平板上形成蓝色菌落。而当有外源DNA片段插人到位于lacZ'中的多克隆位点后,就会破坏α肽链的阅读框,从而不能合成与受体菌内突变的β半乳糖苷酶相互补的活性α肽,而导致不能形成有功能活性的β半乳糖苷酶,因此含有重组质粒载体的克隆往往是白色菌落。实验仪器
1.恒温水浴器2.恒温培养箱3.台式离心机4.低温离心机实验试剂1.KAc:10g2.X-Gal(20mg/ml)5ml:需X-Gal0.1g、5mlN,N-二甲基甲酰胺、锡箔纸数张3.IPTG(50mg/ml)2ml:需IPTG0.1g4.LB培养基(1000ml液体+2000ml固体):胰蛋白胨30g酵母提取物15gNaCl30g琼脂粉30g0.1NNaOH(调pH)需固体NaOH2g(四)转化1.在200μL新制备的感受态细胞中,加人5μL连接产物,混匀,冰上放置30min。同时做两个对照管。受体菌对照:200μL感受态细胞+2μL无菌双蒸水。质粒对照:200μL0.1mol/LCaC12溶液+2μLpUC19质粒DNA溶液。2.将管放到42℃水浴,1-2min。3.冰上放置l-2min4.每管加800μLLB液体培养基(轻轻混匀),37℃温育45min,慢摇。5.在预制的LB琼脂平板上,加40μL20mg/mLXgal和4μL200mg/mLIPTG溶液,并用灭菌玻璃推之(酒精灯上烧后冷却),均匀涂布于琼脂凝胶表面。6.将适当体积(200μL)已转化的感受态细胞均匀涂在上面的培养皿上。将平皿放置37℃温箱30min,至液体被吸收。7.倒置平皿37℃培养12-16h,出现菌落。其中白色菌落为重组DNA
注意事项
1.根据试验目的和外源片段的不同可选用不同的载体,采用不同粘性末端的双酶切可实现外源片段的定向克隆。2.克隆中用到的几种工具酶:(1)限制性内切酶限制性内切酶的一个活性单位(1U):指在50l反应体系中,37℃下,经过1小时的反应将1gDNA完全切割所需要的酶量。限制性内切酶的star活性:限制酶在某些条件下使用时对DNA切割的位点特异性可能降低,即可以切割与原来识别的特定DNA序列不同的碱基序列,这种现象叫限制酶的star活性。它的出现与限制酶、底物DNA以及反应条件有关。
(2)碱性磷酸酶细菌碱性磷酸酶(BAP)和牛小肠碱性磷酸酶(CIAP)都能催化水解DNA、RNA、dNTP和NTP上的5’-磷酸残基。比较而言,CIAP更常用,其可在70℃10’内加热灭活或通过苯酚抽提而变性失活,同时CIAP的活性比BAP的高10-20倍。它主要用于:(1)克隆时去除载体的5’-P,以防载体自连;(2)在用Kinase进行5’末端标记前,去除DNA的5’-P。(3)连接酶体外催化磷酸二酯键的形成可使用两种酶:大肠杆菌连接酶和T4噬菌体连接酶,但几乎在所有的克隆中T4噬菌体连接酶都是首
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