标准解读
《GB/T 17999.10-2008 SPF鸡 微生物学监测 第10部分:SPF鸡 间接免疫荧光试验》与《GB/T 17999.9-1999 SPF鸡 间接免疫荧光试验》相比,主要在以下几个方面进行了更新和调整:
-
标准适用范围细化:新标准更具体地界定了其适用对象为无特定病原体(SPF)鸡的微生物学监测,特别是针对间接免疫荧光试验这一检测方法,明确了该方法在SPF鸡疾病监测中的应用细节。
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技术方法更新:考虑到科技进步和实验室实践的发展,2008版标准可能引入了新的或优化的间接免疫荧光试验技术步骤、试剂选择或操作流程,以提高检测的灵敏度、特异性和重复性。这可能包括抗体标记物的选择、荧光染料的更新或是样本处理方法的改进。
-
质量控制和质控标准提升:新标准加强了对实验过程的质量控制要求,可能增设了更多的内部对照、外部质控标准或建立了更严格的结果判读准则,以确保试验结果的准确性和可靠性。
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检测项目与病原体范围扩展:随着对SPF鸡群中潜在病原体认识的深入,2008版标准可能扩大了间接免疫荧光试验覆盖的病原体种类,增加了对新发现或新重视病原的检测指南,以适应SPF鸡群健康管理的最新需求。
-
标准结构与表述优化:新标准在文档结构、表述清晰度及可操作性方面进行了改进,旨在使读者更容易理解和遵循,可能包括增加图表、流程图、更明确的操作指导语句以及修订后的术语定义,以减少执行过程中的歧义。
-
参考文献与国际接轨:考虑到生物安全和动物健康监测的国际发展趋势,2008版标准可能引用了更多国际标准或先进国家的实践指南,促进了检测方法与国际标准的一致性,有利于提升检测结果的国际认可度。
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- 现行
- 正在执行有效
- 2008-12-31 颁布
- 2009-05-01 实施
文档简介
犐犆犛11.220
犅41
中华人民共和国国家标准
犌犅/犜17999.10—2008
代替GB/T17999.9—1999
犛犘犉鸡微生物学监测
第10部分:犛犘犉鸡间接免疫荧光试验
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20081231发布20090501实施
中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局
发布
中国国家标准化管理委员会
书
犌犅/犜17999.10—2008
前言
GB/T17999《SPF鸡微生物学监测》分为10个部分:
———第1部分:SPF鸡微生物学监测总则;
———第2部分:SPF鸡红细胞凝集抑制试验;
———第3部分:SPF鸡血清中和试验;
———第4部分:SPF鸡血清平板凝集试验;
———第5部分:SPF鸡琼脂扩散试验;
———第6部分:SPF鸡酶联免疫吸附试验;
———第7部分:SPF鸡胚敏感试验;
———第8部分:SPF鸡鸡白痢沙门氏菌检验;
———第9部分:SPF鸡试管凝集试验;
———第10部分:SPF鸡间接免疫荧光试验。
本部分为GB/T17999的第10部分。
本部分代替GB/T17999.9—1999《SPF鸡间接免疫荧光试验》。
本部分与GB/T17999.9—1999相比主要变化如下:
———增加了规范性附录A“试剂的配制”和资料性附录B“细胞计数方法”;
———详细界定了试验成立条件和待检样品的判定标准。
本部分的附录A为规范性附录,附录B为资料性附录。
本部分由中华人民共和国农业部提出。
本部分由全国动物防疫标准化技术委员会(SAC/TC181)归口。
本部分起草单位:中国农业科学院哈尔滨兽医研究所、中国动物卫生与流行病学中心、济南斯帕法
斯家禽有限公司。
本部分主要起草人:曲连东、刘家森、韩凌霞、邵卫星、朱果、单忠芳、姜骞、司昌德、于海波、孟庆文。
本部分所代替标准的历次版本发布情况为:
———GB/T17999.9—1999。
Ⅰ
书
犌犅/犜17999.10—2008
犛犘犉鸡微生物学监测
第10部分:犛犘犉鸡间接免疫荧光试验
1范围
GB/T17999的本部分规定了间接免疫荧光试验的技术要求等。
本部分适用于对SPF鸡进行鸡传染性贫血病毒(ChickenInfectiousAnaemiaVirus,CIAV)抗体的
检测。
2原理
间接免疫荧光试验,以病毒感染细胞作抗原,与待检血清中的特异抗体结合,再与荧光色素标记的
抗抗体结合,形成抗原—抗体—抗抗体复合物。荧光色素在紫外光或蓝紫光的作用下,激发出可见的荧
光,因此出现荧光就说明标记物的存在,同时也反映了特异性抗体的存在。常采用已知抗原及荧光色素
标记的抗抗体检测相应的抗体。
3试剂和器材
3.1试剂
3.1.1CIAV病毒DELROSE株。
3.1.2阴性、阳性血清。
3.1.3被检血清。
3.1.4磷酸盐缓冲液(PBS)(见附录A)。
3.1.5异硫氰荧光素(FITC)标记抗鸡IgG(按说明稀释使用)。
3.1.6缓冲甘油或封片剂(见附录A)。
3.1.7丙酮。
3.2器材
3.2.1抗原片。
3.2.2湿盒。
3.2.337℃培养箱。
3.2.4荧光显微镜。
4操作程序
4.1感染细胞的制备
用含15%新生牛血清的DMEM培养基在39℃和5%二氧化碳环境中培养MDCCMSB1细胞。
细胞长至每毫升5×106个时(细胞计数参见附录B),接种CIAV,并换成含5%新生牛血清的DMEM
培养基,继续培养36h~48h。
4.2抗原片的制备
4.2.1细胞病变(细胞体积增大2倍~3倍)约达50%~75%时,收集细胞培养物,以1500r/min离心
10min,弃上清液,用PBS洗涤细胞沉淀物3次,并细胞计数,用PBS重悬细胞浓度。
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